Controle de Infecção e Biossegurança em Cirurgia BMF

1. Controle de Infecção em
Cirurgia BMF
Prof. Ms. Guilherme Terra
Disciplina de Cirurgia BMF
Terra, G.

2. Introdução
 A prática da odontologia abrange uma
grande variedade de procedimentos.
 Contato com secreções da cavidade oral e
aerossóis.
 Possibilidade de transmissão de
infecções.
Terra, G.

3. Introdução
 As medidas de controle de infecção visam
erradicar ou minimizar o risco de
transmissão de infecções na prática
odontológica.
(Jorge, 2002)
Terra, G.

4. Introdução
 As principais razões para se desenvolver o
controle de microrganismos são prevenir:
1. A transmissão de doença e infecção;
2. A contaminação ou crescimento de
microrganismos nocivos;
3. A deterioração e dano de materiais por
microrganismos.
(Jorge, 2002)
Terra, G.

5. Lavagem e anti-sepsia das mãos
 A lavagem das mãos é, isoladamente, a ação
mais importante para a prevenção e controle
das infecções.
(Larson, 1995)
 As mãos devem ser lavadas com sabão neutro
sempre antes de calçar as luvas e após retirá-
las, antes e após qualquer procedimento com
pacientes e após contato com qualquer material,
equipamento ou superfície potencialmente
contaminados.
(Hoefel, 1996 )
Terra, G.

6. Equipamentos
de proteção
individual - EPIs
Terra, G.

7. Luvas
 Devem ser utilizadas:
1. Em todos os procedimentos com todos
pacientes.
2. Contato com materiais, instrumentos e
equipamentos contaminados.
3. Durante o processo de limpeza de
materiais e ambiente.
(Nash, 1992)
Terra, G.

8. Máscaras
 Representam uma barreira física de proteção de
transmissão de infecções.
 Devem ser utilizadas pelos profissionais durante
procedimentos realizados em pacientes.
 Devem ter filtro duplo, descartáveis e avalizadas
pela Anvisa.
(Nash, 1992)
Terra, G.

9. Óculos de proteção
 Representam uma barreira de proteção de
transmissão de infecções para os
profissionais, diante do risco de
espirramento de secreções ou contato
com aerossóis.
(Nash, 1992)
Terra, G.

10. Toucas e gorros
 Evitar queda de cabelos na área do
procedimento.
 Serve de barreira mecânica para a
possibilidade de contaminação dos
cabelos através do espirramento de
secreções e aerossóis.
(Nash, 1992)
Terra, G.

11. Vestimentas
 Devem ser limpas, de material de fácil
lavagem e secagem e confortáveis.
 Devem ser trocadas sempre que sujidade
aparente.
 Devem ser usadas exclusivamente no
trabalho.
(Nash, 1992)
Terra, G.

12. Uso de adornos
 Deve ser evitado o uso de adornos, tais como
brincos, colares, correntes, pulseiras, relógios,
anéis e alianças, já que representam materiais
de difícil descontaminação.
 Estudo comprovam que as mãos de
profissionais que usavam anéis apresentavam-
se mais colonizadas antes e após lavagem das
mãos quando comparadas com grupo que não
usava anéis.
(Kolstad, 1994)
Terra, G.

13. TRATAMENTO DE
MATERIAIS E
INSTRUMENTAIS
Terra, G.

14. Classificação dos artigos
 Críticos.
 Semi críticos.
 Não críticos.
(Spaulding, 1968; Miller, 1993)
Terra, G.

15. Materiais críticos
 Artigos pérfuro-cortantes ou que entrem
em contato com tecidos cruentos e
sangrantes.
 Ex: Material cirúrgico, brocas, fios de
sutura, etc...
(Rutala, 1999)
Terra, G.

16. Materiais semi críticos
 Entram em contato com pele não íntegra e
mucosas íntegras.
 Ex: Espelhos intra-bucais, afastadores
labiais, moldeiras, etc...
(Rutala, 1999)
Terra, G.

17. Materiais não críticos
 Entram em contato apenas com pele
íntegra ou não entrem em contato direto
com o paciente.
 Ex: Arco facial, Compasso de
Willis, equipamentos em geral, etc...
(Rutala, 1999)
Terra, G.

18. Assepsia
 Métodos empregados para impedir a
contaminação de determinado material ou
superfície.
 Limpeza feita pelo próprio paciente.
(Associação Paulista de Estudos e Controle de Infecção Hospitalar, 2000)
Terra, G.

19. Assepsia
 Realizada com substâncias detergentes.
 Detergentes, sabonetes, etc...
(Associação Paulista de Estudos e Controle de Infecção Hospitalar, 2000)
Terra, G.

20. Anti-sepsia
 Eliminação de microrganismos da
pele, mucosa ou tecidos vivos.
 Feita pelo profissional.
(Associação Paulista de Estudos e Controle de Infecção Hospitalar, 2000)
Terra, G.

21. Anti-sepsia
 Realizada com o auxílio de substâncias
anti-sépticas, microbicidas ou
microbiostáticas.
 Clorexidina 0,12% à 0,2% para mucosas.
 Clorexidina 2% ou Iodo-povidine (PVP-I)
para pele.
(Associação Paulista de Estudos e Controle de Infecção Hospitalar, 2000)
Terra, G.

22. Descontaminação
 Eliminação parcial ou total de
microrganismos de materiais ou
superfícies inanimadas.
(Associação Paulista de Estudos e Controle de Infecção Hospitalar, 2000)
Terra, G.

23. Descontaminação
 Previamente e após qualquer
procedimento.
 Álcool 70º.
(Associação Paulista de Estudos e Controle de Infecção Hospitalar, 2000)
Terra, G.

24. Limpeza
 Remoção mecânica e/ou química de
sujidades em geral, (oleosidade, umidade,
matéria orgânica, poeira, entre outros) de
determinado local.
(Associação Paulista de Estudos e Controle de Infecção Hospitalar, 2000)
Terra, G.

25. Limpeza de materiais
 Realizada antes da desinfecção ou
esterilização.
 Qualquer matéria orgânica na superfície dos
materiais prejudicaria a desinfecção ou
esterilização.
 Pode ser realizada através de métodos
mecânicos (escovação), físicos (ultra som) ou
químicos (soluções enzimáticas).
(Rutala, 1999; Miller, 1992)
Terra, G.

26. Desinfecção
 Eliminação de microrganismos, exceto
esporulados, de materiais ou artigos
inanimados, através de processo físico ou
químico, com auxílio de desinfetantes.
(Associação Paulista de Estudos e Controle de Infecção Hospitalar, 2000)
Terra, G.

27. Desinfecção de materiais
 Recomendada para os materiais
termossensíveis.
 Se resumem na desinfecção química, através
de desinfetantes líquidos.
 Os agentes químicos comumente utilizados são
os álcoois, compostos clorados, glutaraldeído e
ácido peracético.
(Molinari, 1987)
Terra, G.

28. Desinfecção de materiais
 Glutaraldeído 2% por, no mínimo, 30
minutos.
 Ácido peracético por 10 minutos.
(Kunigk, 1998)
Terra, G.

29. Esterilização
 Destruição de todos os
microrganismos, inclusive
esporulados, através de processo químico
ou físico.
(Associação Paulista de Estudos e Controle de Infecção Hospitalar, 2000)
Terra, G.

30. Esterilização de materiais
 Pode ser realizada através de métodos
químicos ou físicos.
 Químicos: Soluções esterilizantes.
 Físicos: calor seco (estufa), calor úmido sob
pressão (autoclave) e radiação ionizante.
 Físico-Químicas: Óxido de Etileno (ETO).
(Anvisa, 2000; Howard, 1991)
Terra, G.

31. Esterilização
química
Terra, G.

32. Esterilização química
 Risco de recontaminação do material.
 Dificuldade de armazenamento e de
controle de qualidade.
 Dificuldade do monitoramento do
processo.
(Howard, 1991)
Terra, G.

33. Esterilização química
 Mesmos agentes utilizados no processo
de desinfecção, porém com maior tempo
de exposição.
(Howard, 1991)
Terra, G.

34. Esterilização em Glutaraldeído 2 %
 Imersão por, no mínimo, 10 horas.
 Mycobacterium chelonae apresentou,
comprovadamente resistência.
 Deve ser descartado de 14 a 28 dias após a
ativação.
(Howard, 1991)
Terra, G.

35. Esterilização em Glutaraldeído 2%
 Deve ser armazenado e recolhido por
empresas especializadas em transporte e
descarte de resíduos químicos.
 Tóxico.
 Carcinogênico???
(Howard, 1991)
Terra, G.

36. Esterilização em Ácido Peracético
 Imersão por 30 minutos.
 Nenhum Microrganismo apresentou resistência.
 Deve ser descartado 24 horas após a diluição.
(Kunigk, 1998)
Terra, G.

37. Esterilização em Ácido Peracético
 Por ser biodegradável pode ser
descartado diretamente na rede de esgoto
sem qualquer tratamento adicional.
 É considerado atóxico , não alergênico e
um irritante leve.
 Carcinogênico???
(Kunigk, 1998)
Terra, G.

38. Esterilização
física
Terra, G.

39. Esterilização em estufa
 60 minutos a 170° C.
 120 minutos a 160° C.
 Deve ser acondicionado em caixas
metálicas abertas.
(Molinari, 1987)
Terra, G.

40. Esterilização em autoclave
 Tem se apresentado como o método que reúne
mais vantagens.
 Maior segurança.
 Menor dano aos materiais.
 Menor tempo despendido.
(Costa & Funari, 1997; Miller, 1992; Howard, 1991)
Terra, G.

41. Esterilização em autoclave
 Diversos ciclos de esterilização.
 15 minutos a 134° C e 30 minutos a 121° C.
 Os materiais devem ser embalados em papel
grau cirúrgico, papel crepado ou tecido de
algodão.
(Costa & Funari, 1997; Miller, 1992; Howard, 1991)
Terra, G.

42. Esterilização por radiação
 Alternativa segura na esterilização de
artigos termossensíveis.
 Método disponível em escala industrial
devido aos elevados custos.
(Anvisa, 2000; APECIH, 1998)
Terra, G.

43. Esterilização por radiação
 Não danifica artigos termossensíveis ou
não.
 Conhecida como radiação ionizante gama.
(Anvisa, 2000; APECIH, 1998)
Terra, G.

44. Esterilização
Físico-Químicas
Terra, G.

45. Óxido de Etileno (ETO)
 É um gás inodoro, sem cor, inflamável e
explosivo.
 Necessária a adição de estabilizantes
para reduzir o risco de explosão e de
fogo.
(Rutala et al., 1996; Alfa et al., 1996; MS, 1999)
Terra, G.

46. Óxido de Etileno (ETO)
 Método confiável e não danifica materiais.
 Desvantagens: alto custo, toxicidade, e
tempo longo do ciclo.
(Rutala et al., 1996; Alfa et al., 1996; MS, 1999)
Terra, G.

47. Monitoramento e
validação dos
processos de
esterilização
Terra, G.

48. Indicadores físicos
 O monitoramento físico em autoclaves
consiste em verificar se a autoclave atinge
os parâmetros físicos de tempo /
temperatura e pressão de acordo com o
ciclo escolhido.
 Na estufa, monitora-se apenas tempo e
temperatura.
(Lewis, 1992)
Terra, G.

49. Indicadores químicos
 Representam maior segurança em relação ao
monitoramento físico.
 Realizada utilizando indicadores químicos que, de
acordo com a ISO 11140, possuem 4 classes:
 Classe 1;
 Classe 4;
 Classe 5;
 Classe 6.
Terra, G.

50. Indicadores Químicos Classe 1
 Os indicadores de passagem são normalmente
encontrados em fitas zebradas.
 Indicam se um determinado pacote passou pelo
processo, não garantindo, porém a sua
esterilidade.
 Devem ser utilizados em todos os pacotes
externamente.
Terra, G.

51. Indicadores Químicos Classe 4
 São indicadores multiparamétricos que
devem ser usado em cada pacote.
 Mostram que houve penetração de calor e
vapor, mas não garantem a esterilização.
 São fitas que devem ser colocadas dentro
dos pacotes.
Terra, G.

52. Indicadores Químicos Classe 5
 Integrador químico de uso interno, indicado para
utilização em pacotes que serão esterilizados a
vapor.
 Tem boa confiabilidade, porém se a temperatura
for acima de 140°C o indicador “aprova” o
ciclo, independente da presença de vapor.
Terra, G.

53. Indicadores Químicos Classe 6
 Emuladores para temperatura específica, 121º C ou
134º C.
 Prático, fácil de usar, de armazenar com leitura
imediata.
 Tem grande confiabilidade e demonstram se o ciclo
apresentou todas as condições (temperatura em
presença de vapor por tempo suficiente) para que a
esterilização tenha ocorrido.
Terra, G.

54. Indicadores Biológicos
 Fornecem maior segurança em relação à
qualidade de esterilização.
 Consistem na colocação de microrganismos
vivos dentro da autoclave e seu posterior
cultivo, para controle de sua eliminação.
 Não existem métodos comerciais para
monitoramento biológico em estufas.
(Lewis, 1992)
Terra, G.

55. Indicadores Biológicos
 É o monitoramento mais confiável, pois é feita com
microorganismos tecnicamente preparados –
indicadores biológicos – para demonstrar a
esterilização.
 São testes que vêm em tubos plásticos com tampa
permeável ao vapor, com uma fita impregnada com
uma população conhecida de esporos, separada do
meio nutriente (líquido roxo), por uma ampola de
vidro.
Terra, G.

56. Indicadores Biológicos
 A leitura deve ser realizada após 24 e 48 horas de
incubação.
 Os esporos utilizados são de Geobacillus
stearotermophilus, altamente resistentes ao calor
úmido e não são patogênicos. São utilizados como
desafio, pois uma vez tendo sido eliminados, todos
os outros esporos e formas vegetativas também
serão.
Terra, G.

57. NORMAS PARA O
ATENDIMENTO
CLÍNICO
Terra, G.

59. Antes do procedimento
 Desinfetar as superfícies com álcool 70° ou spray
desinfetante.
 Desinfetar e desinfeccionar as peças de mão com
clorhexidina 2 a 5%.
 Proteger toda a área de trabalho e equipamentos com
filme PVC.
 As luvas não deverão tocar artigos não estéreis e/ou
desprotegidos.
(Belasco et al., 2001)
Terra, G.

60. Após o procedimento
 Calçar luvas grossas para limpeza, remover as
barreiras, e descartar o material descartável que
foi utilizado.
 Imergir o instrumental contaminado em
recipientes contendo solução de glutaraldeído a
2%, por um mínimo de 10 minutos.
(Belasco et al., 2001)
Terra, G.

61. Após o procedimento
 Artigos pérfuro-cortantes, como agulhas
utilizadas para anestesia, lâminas de
bisturi e agulhas para sutura, deverão ser
dispensados em caixas de papelão tipos
Descarpack.
(Belasco et al., 2001)
Terra, G.

62. JAMAIS DESCARTAR AGULHAS
E LÂMINAS CONTAMINADAS
NAS LIXEIRAS
CONVENCIONAIS, POIS OS
SERVIDORES DA LIMPEZA
PODERÃO SE FERIR E ASSIM
SEREM CONTAMINADOS!
Terra, G.

63. Após o procedimento
 Após desinfecção em solução de
glutaraldeído a 2% ou ácido peracético, lavar
e secar o instrumental, utilizando luvas
grossas para limpeza doméstica.
 Após secagem os artigos deverão ser
embalados para proceder a esterilização.
(Belasco et al., 2001)
Terra, G.

64. ACIDENTES
OCUPACIONAIS
Terra, G.

65. Acidentes Ocupacionais
 Segundo o Ministério da Saúde (1999), os
acidentes de trabalho com sangue e outros
fluidos potencialmente contaminados devem ser
tratados como casos de emergência médica.
(MS,1999)
Terra, G.

66. Acidentes Ocupacionais
 A profilaxia da infecção pelo HIV e pelo vírus da
hepatite B, para sua maior eficácia necessitam
ser iniciados logo após a ocorrência do
acidente.
(MS,1999)
Terra, G.

67. Acidentes Ocupacionais
 O risco médio de se adquirir o HIV é de,
aproximadamente, 0,3% após exposição
percutânea, e de 0,09% após exposição
mucocutânea.
 O uso profilático do AZT , demonstrou a redução
de 81% do risco de soroconversão após
exposição ocupacional.
(MS,1999)
Terra, G.

68. Acidentes Ocupacionais
 O risco de infecção pelo vírus da hepatite
B após exposição percutânea em
pacientes contaminados é de 30%.
 Para o vírus da hepatite C, o risco médio é
de 10%.
(MS,1999)
Terra, G.

69. Conduta frente a acidentes
 Comunicar o Professor responsável pela
Clínica.
 Lavagem da região acidentada em água
corrente, evitando friccionar para não aumentar
a “ferida”.
(Manual de Biossegurança da FOB, 2000)
Terra, G.

70. Conduta frente a acidentes
 Aplicação de Povidine ou Clorexidina na região
acidentada.
 Encaminhamento ao serviço de controle de
infecções quando se julgar necessário (Hospital
Emílio Ribas).
(Manual de Biossegurança da FOB, 2000)
Terra, G.

71. Prevenção de acidentes
 Não reencapar as agulhas para anestesia.
 Manusear com o máximo cuidado objetos
pérfuro-cortantes.
 Evitar deixar gazes, campos, etc, em cima dos
instrumentais no campo cirúrgico.
(Manual de Biossegurança da FOB, 2000)
Terra, G.

72. Vacinas
 Recomenda-se a todo corpo docente e
discente as imunizações contra
tétano, difteria e hepatite.
Terra, G.

73. Terra, G.