Verificar as atividades terapêuticas da própolis no controle de mastite bovina

1. Júlia Gazzoni Jardim
Orientação: Profª DSc. Regina Conceição Garcia
UNIVERSIDADE ESTADUAL DO OESTE DO PARANÁ - UNIOESTE
CENTRO DE CIÊNCIAS AGRÁRIAS
CURSO DE ZOOTECNIA
MARECHAL CÂNDIDO RONDON – PR
2009

2. INTRODUÇÃO
O que é mastite?
IN 51;

4. Mastite Clínica Mastite Subclínica

5. Microrganismos Contagiosos
Staphylococcus aureus;
Streptococcus agalactiae;
Streptococcus
dysgalactiae;
Mycoplasma bovis.
CCS
Mastite
Clínica

6. Microrganismos Ambientais
Streptococcus uberis ;
Pseudomonas aeruginosa;
Escherichia coli.
Mastite
Clínica
CCS

7. PRÓPOLIS
Composição:Composição:
55% resinas e bálsamos;
30% cera;
10% óleos voláteis;
5% pólen
Propriedades :Propriedades :
Atividade anti-inflamatória,antibacteriana,
antifúngica,analgésica, cicatrizante,anestésica

8. OBJETIVO
Avaliar as atividades terapêuticas e anti-sépticas
da própolis no controle da mastite bovina.

9. MATERIAL E MÉTODOS

10. MATERIAL E MÉTODOS
72 fêmeas bovinas da raça Holandês Preto e Branco;
Foram utilizadas somente fêmeas com mastite
subclínica;

11. Diagnóstico de situação de mastite
Mastite Clínica Mastite Subclínica

12. Identificação da bactéria
causadora

13. Preparação dos meios de cultura
Agar Sangue MacConkey Agar BHI

14. Inoculação dos meios de cultura

15. Estudo morfológico da colônia
CAMP TEST

16. Preparo do Extrato de Própolis
Coleta de própolis: raspagem manual e posterior
remoção de impurezas;
Armazenamento: seca , ao abrigo da luz, calor
excessivo, predadores, poeiras e umidade.
Estocada a uma temperatura de -4° C à -10°C;
Solvente : Álcool de cereais a 70° GL ;
EAP 30%: 30g de própolis bruta para cada 100mL de
solvente, na proporção peso a peso

17. Preparo do Extrato de Própolis

18. Separação e filtração do extrato

19. PERÍODO DE INFUSÃO
 Duração: 30 dias;
O frasco foi protegido do calor e luz solar direta a fim
de se prevenir fotodegradação
Realizou-se agitação diariamente, por 30 segundos,
uma vez ao dia;
Última agitação, deixar decantar por três dias ou mais
e remover por meio de sifão, o sobrenadante

20. ANÁLISE DO EXTRATO DE
PRÓPOLIS
Análises Físico-químicas:Análises Físico-químicas:
Extrato Seco (%);
Compostos Fenólicos (%);
Teor de Flavonóides em Quercetina (%);
pH;
• Propriedade Antioxidante:
Solubilidade ao Acetato de Chumbo
Solubilidade ao Hidróxido de Sódio

21. TRATAMENTOSTRATAMENTOS
Grupo 1 ( Oral): 5mL de extrato alcoólico de própolis
(EAP) a 30%, via oral, durante 7 dias consecutivos,
após cada ordenha;
Grupo 2 ( Álcool): 5 mL de álcool de cereais a 70o
GL ,
via oral, durante 7 dias consecutivos, após cada
ordenha;

22. Grupo 3:Grupo 3:
Imersão + OralImersão + Oral
Pré-dipping: 5mL EAP via oral + 5mL água filtrada e
fervida com EAP
Pós-dipping: 5ml EAP via oral + 5mL glicerina líquida

23. Grupo 4Grupo 4
Grupo controle: não
receberam tratamento

24. Análise dos
dados
Teste não paramétrico Qui-quadrado
em nível de 5% de probabilidade.

26. Medidas descritivas (média aritmética, desvio padrão e mediana
com seus respectivos valores mínimos e máximos) do CMT
segundo o grupo e o momento de avaliação
Grupo T 0 T 7 T 14
3,25 ± 0,89 3,00 ± 1,15 2,60 ± 1,37
4,00 (2,00-4,00) aA 3,00 (1,00-4,00) aA 2,00 (1,00-4,00) aA
3,25 ± 0,88 3,62 ± 1,03 2,81 ± 1,28
3,50 (1,00-4,00) aA 4,00 (1,00-6,00) aA 3,50 (1,00-4,00) aA
3,32 ± 0,85 3,04 ± 1,09 2,56 ± 1,22
4,00 (2,00-4,00) aA 3,00 (1,00-4,00) aA 2,00 (1,00-4,00) aA
3,46 ± 0,71 3,30 ± 0,92 2,84 ± 1,12
4,00 (2,00-4,00) aA 4,00 (1,00-4,00) aA 3,00 (1,00-4,00) aA
Oral
Álcool
Controle
Oral e Imersão
Momentos de avaliação
Maiúsculo: comparação de momento dentro do grupo;
Minúsculo: comparação de grupo fixado o momento;

27. Medidas descritivas da contagem de células somáticas
CCS segundo o grupo e o momento de avaliação
Grupo T 0 T 7 T 14
583,60 ± 668,61 574,67 ±693,74 134,32 ± 168,76
395,50 (2,00-2927,00) aB 314,50 (1,00-2980,00) aB 67,00 (1,00-664,00) a A
514,00 ± 677,01 886,53 ± 1087,64 141,37 ± 190,60
263,50 (1,00-3229,00) aB 482,50 (48,00-5442,00) aC 41,00 (1,00-686,00) a A
543,08 ± 547,59 589,68 ± 696,91 158,64 ± 426,59
394,00 (2,00-1977,00) aB 0394,00 (2,00-2306,00) aB 49,00 (1,00-2133,00) a A
535,03 ± 511,93 528,46 ± 510,03 97,96 ± 111,71
402,50 (4,00-2090,00) aB 445,50 (1,00-2229,00) aB 65,00 (2,00-526,00) a A
Oral
Álcool
Controle
Oral e Imersão
Momentos de avaliação

28. Correlação CMT x CCS
Escores do CMT Viscosidade da mistura CCS (10³ cels/mL)
Negativo e traços Ausente à leve até 500
+ Leve-moderada 500 à 1.000
++ Moderada 1.000 à 5.000
+++ Intensa > 5.000
Fonte: Adaptado de Barbosa, et al., 2002.

29. Correlação do CMT e CCS nos momentos avaliados: imediatamente
anterior ao tratamento (T0), sete dias (T7) e 14 dias (T14) após o
início dos tratamentos
A correlação foi de 0,71, 0,61 e 0,32 para os momentos
imediatamente anterior à aplicação dos tratamentos, 7 e 14 dias
após, respectivamente.
Associação Geral (111) Oral (28) Oral+Imersão (32) Alcool (25) Controle(26)
CMTT0xCCST0 0,818 (P<0,001) 0,839 (P<0,001) 0,814 (P<0,001) 0,823 (P<0,001) 0,856 (P<0,001)
CMTT7xCCS T7 0,850 (P<0,001) 0,839 (P<0,001) 0,580 (P<0,001) 0,721 (P<0,001) 0,838 (P<0,001)
CMTT14xCCST14 0,394 ( P<0,001) 0,532 (P<0,005) 0,588 (P<0,001) 0,265 (P>0,05) 0,124 (P>0,05)

30. Principais microrganismos isolados
das amostras de leite
Microrganismos T0 T7 T14
Staphylococcus ssp (%) 21(20,19) 25(24,03) 21(20,19)
Staphylococcus aureus (%) 44(42,30) 35(33,65) 42(40,38)
Streptococcus agalctiae (%) 2(19,23) 4(3,84) 4(3,84)
Streptococcus dysgalactiae(%) 9(8,65) 13(12,50) 9(8,65)
Streptococcus uberis (%) 15(14,42) 9(8,65) 4(3,84)
Streptococcus intermedius (%) 0(0,00) 2(1,92) 0(0,00)
Corynebacterium bovis (%) 7(6,73) 11(10,57) 9(8,65)
Momentos Avaliados

31. Principais microrganismos isolados
das amostras de leite

32. Análise Físico-química da Própolis
Variáveis Valores MAPA
Peso Seco (mg/mL) 121,7 não estabelece
Extrato Seco (%) 13,7 não estabelece
Compostos fenólicos (%) 55,5 no mínimo 0,50
Flavonóides (%) 11,92 no mínimo 0,25
pH 5,08 não estabelece
Propriedade Antioxidante + +

33. CONCLUSÃO
Não foi possível observar diferenças entre os
tratamentos;
Outros ensaios são necessários a fim de determinar
dose, dosagem e vias da administração capazes de
determinar seus benefícios terapêuticos in vivo.

34. OBRIGADA