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38 Revista Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento - Edição nº 31 - julho/dezembro 2003
Pesquisa
Biofertilizantes
Líquidos
Marcos Barros de Medeiros
Doutor em Entomologia - ESALQ/USP
Professor Adjunto Centro de Formação de
Tecnólogos / UFPB - Campus de Bananeiras.
barros@iwpb.com.br;
ciagra@cft.ufpb.br
Paulo Alves Wanderley
Doutor em Agronomia - FCAV/UNESP,
Professor nível E do Centro de Formação de
Tecnólogos / UFPB - Campus de Bananeiras
Maria José Araújo Wanderley
Doutora em Agronomia - FCAV/UNESP,
Bolsista de Desenvolvimento Científico Regional
CNPq, UFPB Departamento de Ciências Básicas e
Sociais, Campus de Bananeiras
Ilustrações cedidas pelos autores
Processo trofobiótico para proteção de plantas em cultivos orgânicos
1 - Introdução
Nos países desenvolvidos e em
vários outros em desenvolvimento,
como o Brasil, os organoclorados fo-
ram proibidos para o uso agrícola.
Porém, essa foi apenas uma medida
isolada, uma vez que tais produtos
circulam hoje por toda a biosfera
(Paschoal, 1995). O uso de produtos
químicos sem a observação da com-
plexidade de fatores que interagem
nos agroecossistemas tem sido a mai-
or causa de desequilíbrio nesses siste-
mas, tais como o desenvolvimento de
resistência ao pesticida, ressurgimen-
to e desencadeamento de pragas se-
cundáriasequebradecadeiasalimen-
tares a partir da eliminação de seus
inimigos naturais (parasitóides e pre-
dadores) (Medeiros, 1998).
Até1945osácarosfitófagoseram
tidos como pragas secundárias da
agricultura. No entanto, o desenvol-
vimento destas espécies nocivas vem
atingindo, cada vez mais, uma eleva-
da significação econômica, ao mes-
mo tempo em que sua lista não pára
de crescer. Antes de 1946, havia
apenas 10 espécies de insetos e car-
rapatos resistentes, todas a produtos
inorgânicos minerais. Em 1969 a re-
sistência foi confirmada para 424 es-
pécies, sendo 97 de importância
médica ou veterinária e 127 de im-
portância agrícola e florestal e de
produtos armazenados (Paschoal,
1979; Chaboussou 1980). Na década
de 90, pelo menos 504 espécies de
insetos e ácaros foram dadas como
resistentesapelomenosumpesticida.
Destas, 23 espécies são benéficas e
481 são nocivas, sendo 283 de impor-
tância agrícola e 198 de importância
médico-veterinária (Georghiou &
Lagunes-Tejeda, 1991).
Uma nova teoria, hoje ampla-
mente difundida, converge ao expli-
car que, além destes fatores, estes
desequilíbrios também estão forte-
mente associados ao estado de
proteólise dominante nos tecidos da
planta. Estudos comprovam que pro-
dutos químicos sintéticos, tais como
agrotóxicos e fertilizantes minerais
solúveis, contêm substâncias que in-
terferemnaproteossíntese,provocam
o acúmulo de aminoácidos livres e
açúcaresredutoresnostecidosdaplan-
ta, reduzindo sua resistência às pragas
e doenças (Alves et al., 2001;
Chaboussou, 1999; Tokeshi, 2002).
Segundo Primavesi (1998), três
condições são necessárias para que
uma planta seja atacada por pragas e
doenças: 1) a planta deve ser defici-
entemente nutrida, oferecendo algu-
ma substância utilizável para o agen-
te; 2) o agente possa se multiplicar
livremente sem controle biológico, o
que ocorre mais facilmente em
monoculturas; 3) o sistema de auto-
defesa da planta deve estar desequi-
librado, em função da nutrição e do
uso de agrotóxicos. Estes princípios
convergem com os fundamentados
por Francis Chaboussou, então dire-
tor do “Institut National de la
Recherche Agronomique” (INRA) na
França, que em 1979 formulou a
Teoria da Trofobiose. Segundo essa
teoria, todo processo vital está na
dependência da satisfação das ne-
cessidades dos organismos vivos,
sejam eles vegetais ou animais. Des-
sa forma, a planta, ou mais precisa-
Revista Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento - Edição nº 31 - julho/dezembro 2003 39
mente o órgão vegetal, será atacado
somente quando seu estado bioquí-
mico, determinado pela natureza e
pelo teor de substâncias nutritivas
solúveis, corresponder às exigências
tróficas (de alimentação) da praga ou
do patógeno em questão.
Estudando-se a relação entre o
estado nutricional de plantas e sua
resistência às doenças constatou-se
que toda circunstância desfavorável
ao crescimento celular tende a pro-
vocar um acúmulo de compostos
solúveis não utilizados, como açú-
cares e aminoácidos, diminuindo a
resistência da planta ao ataque de
pragas e doenças (Dufrenoy, 1936).
Comprovou-se mais tarde que a ação
dos agrotóxicos na planta resulta na
inibição da proteossíntese, resultan-
do num aumento de ácaros, pulgões
e lepidópteros e de doenças
(Chaboussou, 1999; Tokeshi, 2002).
Espécies de pulgões, cochonilhas,
cigarrinhas, cigarras, tripes, outros
insetos sugadores e várias espécies
de ácaros fitófagos, não são capazes
de desdobrar proteínas em aminoá-
cidos para serem posteriormente
recombinados à conveniência de
cada um. Por isso, eles dependem
de aminoácidos livres existentes na
seiva das plantas ou suco celular e
de microrganismos simbiontes
(Chaboussou, 1980; Panizzi & Parra,
1991; Pinheiro & Barreto, 1996; Gallo
et al., 2002) Os adubos minerais
solúveis, especialmente os nitroge-
nados, e os agrotóxicos orgânicos
sintéticos, que quando absorvidos
pelas plantas e translocados em seu
interior, são capazes de interferir
com a fisiologia vegetal, reduzem a
proteossíntese, desencadeando pro-
cesso de acúmulo de aminoácidos
livres e açúcares redutores, substân-
cias prontamente utilizáveis pelas
pragas e agentes fitopatogênicos, o
que foi correlacionado positivamen-
te com o aumento populacional des-
ses organismos (Chaboussou, 1985).
Na agricultura orgânica o uso de
biofertilizantes líquidos, na forma de
fermentados microbianos enriqueci-
dos, têm sido um dos processos mais
empregados no manejo trofobiótico
de pragas e doenças. Essa estratégia
é baseada no equilíbrio nutricional
da planta (trofobiose), onde a resis-
tência é gerada pelo melhor equilí-
brio energético e metabólico do ve-
getal (Chaboussou, 1985; Pinheiro &
Barreto,1996).Osbiofertilizantesfun-
cionam como promotores de cresci-
mento (equilíbrio nutricional) e como
elicitores na indução de resistência
sistêmica na planta. Além disso, aju-
dam na proteção da planta contra o
ataque de doenças, por antibiose
(Bettiol et al, 1998) e contra o ataque
de pragas, por ação repelente,
fagodeterrente (inibidores de alimen-
tação) ou afetando o seu desenvolvi-
mento e reprodução.
2 - Biofertilizantes líquidos
e sua aplicação na
proteção de plantas
Osbiofertilizantespossuemcom-
postos bioativos, resultantes da
biodigestão de compostos orgânicos
de origem animal e vegetal. Em seu
conteúdo são encontradas células vi-
vas ou latentes de microrganismos
demetabolismoaeróbico,anaeróbico
e fermentação (bactérias, leveduras,
algas e fungos filamentosos) e tam-
bém metabólitos e quelatos organo-
minerais em soluto aquoso. Segundo
Santos & Akiba (1996), os metabólitos
sãocompostosdeproteínas,enzimas,
antibióticos, vitaminas, toxinas,
fenóis, ésteres e ácidos, inclusive de
ação fitohormonal produzidos e libe-
rados pelos microrganismos.
Na citricultura paulista, os bio-
fertilizantes vêm sendo produzidos
pelo método de compostagem líqui-
da contínua em “piscinas” escavadas
no solo, revestidas de lona plástica
de polietileno, com capacidade de
até 50 mil litros. No processo são
utilizados água não clorada e o
inoculante à base de esterco fresco
bovino, e posteriormente enriqueci-
do com um composto orgânico nutri-
tivo. O Microgeo é um composto
orgânico, com registro no Ministério
da Agricultura e certificado pelo IBD,
preparado à base de diversas fontes
orgânicas e inorgânicas, sendo enri-
quecido com rochas moídas que con-
têm cerca de 48% de silicatos de
magnésio, cálcio, ferro e outros
oligoelementos, fundamentais para
estimulação do metabolismo primá-
rio e secundário das plantas. Segun-
do Alves et al. (2001) biofertilizantes
obtidos com o Microgeo vêm sendo
utilizados, em pulverização sobre as
plantas, em mais de 8 milhões de pés
de laranja no estado de São Paulo.
A potência biológica de um bio-
fertilizante é expressa pela grande
quantidade de microrganismos ali
existentes, responsáveis pela libera-
ção de metabólitos e antimetabólitos,
entre eles vários antibióticos e
hormônios vegetais. Castro et al.
(1992) e Bettiol et al. (1998) isolaram
Figura 01. Simulação da cinética de crescimento celular e da produção de metabólitos
ao longo da fermentação aeróbica do biofertilizante no processo de CLC. Metabólitos
primários: (Etapas de anabolismo e catabolismo): Açúcares, aminoácidos, ácidos
graxos, proteínas, lipídeos, bases nitrogenadas (nucleotídeos e ácidos nucleicos),
precursores moleculares etc. Metabólitos secundários: (Biossíntese de macro-
moléculas de elevado peso molecular): toxinas, antibióticos, fitoreguladores (IAA
e giberelinas), ácidos graxos de cadeia longa, fosfolipídeos, polissacarídeos, terpenos
fenóis, polifenois, citoquininas, etc.
40 Revista Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento - Edição nº 31 - julho/dezembro 2003
várias leveduras e bactérias, desta-
cando Bacillus subitilis, reconhecido
produtor de antibióticos. Atualmente
os biofertilizantes vêm sendo aplica-
dos em diversas culturas associadas
com o fungo entomopatogênico
Beauveria bassiana, importante ini-
migo natural de pragas.
Os efeitos do biofertilizante no
controledepragasedoençasdeplantas
têm sido bem evidenciados. Efeitos
fungistático, bacteriostático e repelente
sobreinsetosjáforamconstatados.San-
tos & Sampaio (1993) verificaram uma
propriedade coloidal do biofertilizante
que provoca a aderência do inseto
sobre a superfície do tecido vegetal. Os
autores destacaram também o efeito
repelente e deterrente de alimentação
contra pulgões e moscas-das-frutas.
Medeiros et al. (2000b) verificaram que
o biofertilizante à base de conteúdo de
rúmen bovino e o composto orgânico
MicrogeoÒ
reduziuafecundidade,perí-
odo de oviposição e longevidade de
fêmeas do ácaro-da-leprose dos citros,
Brevipalpusphoenicis, quando pulveri-
zado em diferentes concentrações. Es-
ses mesmos autores comprovaram que
este biofertilizante agiu sinergicamente
com Bacillusthuringiensis e o fungo B.
bassiana, reduzindo a viabilidade dos
ovos e sobrevivência de larvas do bi-
cho-furão-dos-citros (Ecdytolopha
aurantiana) (Medeiros et al. 2000c).
Estudos recentes comprovaram a redu-
çãodeaté95%dafecundidadedoácaro
rajado Tetranychus urticae, de hábito
polífago, em concentrações entre 5 e
50% (Medeiros etal.,2000a;Berzaghi et
al., 2001). Também verificou-se redu-
çãodeaté64%dapopulaçãodopulgão
Aphis sp., quando utilizado o biofertili-
zante (10%) associado aos inseticidas
Boveril®
eMetarril®
,5kg/ha,emcultivo
de acerola (Medeiros et al., 2001). Apli-
cações do biofertilizante associadas à
calda viçosa ou com o Bacillus
thuringiensis reduziram significativa-
menteoataquedatraça(Tutaabsoluta)
e a broca pequena (Neoleucocinodes
elegantalis) em tomateiros (Picanço et
al.,1999;Nunes&Leal,2001).Também
foi constatado menor severidade de
oídio e de cigarrinha verde em plantas
de feijoeiro pulverizadas com diferen-
tes misturas de biofertilizantes (Cunha
et al., 2000). Trabalhos conduzidos por
Medeiros (2002) no Laboratório de Pa-
tologia e Controle Microbiano de Inse-
tosdaESALQ/USPcomprovaramqueo
biofertilizante líquido reduziu de modo
crônico e significativamente a fecundi-
dade e o potencial de crescimento po-
pulacional e o tempo de desenvolvi-
mento de descendentes dos ácaros da
leprosedoscitrosBrevipalpusphoenicis,
criados sobre plantas tratadas com bio-
fertilizantes. O estudo comprovou que
o biofertilizante testado agiu por conta-
todiretoeresidualetambémfuncionou
de forma sistêmica na planta.
A ação antibiótica e indução de
resistência sistêmica da planta são
provavelmente os principais meca-
nismos de ação do biofertilizante
sobre a praga (D´Andréa & Medeiros,
2002). Os fenômenos podem estar
diretamente associados à complexa
e pouco conhecida composição quí-
mica e biológica dos biofertilizantes.
Compostos metabólitos (micro e
macromoléculas), tais como enzimas,
antibióticos,vitaminas,toxinas,fenóis
e outros voláteis, ésteres e ácidos,
inclusive de ação fitohormonal têm
sido identificados nos biofertilizan-
tes (Santos, 1992). Um composto
coloidal, de consistência mucilagino-
sa (goma) e de composição ainda
não conhecida, foi observado por
Medeiros (2002) causando a imobili-
zação e morte do ácaro B. phoenicis
sobre a folha devido à obstrução de
seu sistema digestivo.
3 - Processos envolvidos na
produção de
biofertilizantes
Não existe uma fórmula padrão
para produção de biofertilizantes.
Receitas variadas vêm sendo testadas,
utilizando-se componentes minerais
para o enriquecimento do meio de
cultivo (Santos, 1992; Magro, 1994).
O processo de fermentação é
complexo e os microrganismos exis-
tentes passam quatro fases distintas
de crescimento celular: 1) Latência -
Compreende o período de adaptação
dos microrganismos, após o qual as
células dão início à fermentação. 2)
Crescimentoexponencial–Nessafase
ocorre elevado processo de divisão
celular, com a produção de biomassa
e liberação dos metabólitos primári-
os: carboidratos, aminoácidos,
lipídeos, nucleotídeos, vitaminas e
proteínas e enzimas. 3) Fase estacio-
nária – As células param de se dividir
e as colônias, após juntarem-se, inici-
am um processo de diferenciação
celular produzindo metabólitos se-
cundários como forma de defesa (an-
tibióticos, toxinas, fenóis, ácidos or-
gânicos e outras proteínas de cadeia
longa, de alto interesse biotecnológi-
co). 4) Morte Celular-Esgotadas to-
Figura 2. Produção de biofertilizantes pelo sistema de compostagem líquida contínua
a céu aberto, em recipientes plásticos.
Revista Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento - Edição nº 31 - julho/dezembro 2003 41
das as reservas de energia, as células
começam a morrer numa velocidade
exponencial.
Cada microrganismo participan-
te degrada alimento para outro, numa
relação de interdependência mútua e
harmônica e, assim, o processo de
fermentação acaba sendo contínuo,
desde que seja alimentado com meio
nutritivo, o que fundamentou o pro-
cesso de compostagem líquida des-
critoporD’Andréa&Medeiros(2002).
4 - Produção do
biofertilizante pelo
processo de Compostagem
Líquida Contínua (CLC)
4.1 - Dimensionamento da
Produção
Tanques para compostagem do
biofertilizante podem ser utilizados
para volumes de até 1.000 litros, cai-
xas de fibrocimento ou plásticas. Para
volumes maiores constrói-se direta-
mente no solo, ‘piscinas’ com as di-
mensões do volume pretendido, e
com a profundidade máxima de um
metro, as quais são revestidas com
lona plástica. A localização do tanque
deve ser em área ensolarada, manten-
do-o descoberto. Para o dimensiona-
mento do volume do tanque, deverá
ser considerado um consumo diário
máximo de 10% de biofertilizante, da
sua capacidade. Exemplo: Para um
consumo diário de 100 litros de bio-
fertilizante, o tanque deverá ter o
volume de 1.000 litros.
4.2- CLC com uso de esterco e
composto orgânico enriquecido
Início da CLC: Para início da
produção do biofertilizante, adiciona-
se no tanque o esterco fresco de gado
(inoculante), um composto orgânico
enriquecido com minerais (Ex.:
MICROGEO MCO) e água (não
clorada). No caso do Microgeo,
pesquisado e desenvolvido pela equi-
pe do Laboratório de Patologia e Con-
troleMicrobianodaESALQ,opreparo
é feito nas seguintes proporções:1,0
quilo do composto orgânico / 4,0
litrosestercodegado/20,0litroságua
(completando o volume ). Exemplo:
Para a produção de 1.000 litros de
biofertilizante, adiciona-se no tanque
50 quilos do composto,mais 200 litros
de esterco de gado de qualquer ori-
gem, completando com água o
volume de 1.000 litros do tanque.
Agitar duas vezes ao dia manualmen-
te com um ‘rodo’, que também permi-
tirádeterminaraespessuradacamada
orgânica (biomassa) depositada no
fundodotanque,comoobjetivodese
quantificar a reposição do esterco de
gado no processo CLC. Iniciar o uso
do biofertilizante com aproximada-
mente 15 dias, após a mistura inicial
dos insumos. Manutenção da CLC:
Para manter a compostagem em meio
líquidodeformacontínua,contabilizar
diariamente os volumes de biofertili-
zanteconsumidosrepondonotanque
os insumos nas seguintes proporções:
a) Reposição do composto orgânico:
para cada 30,0 a 40,0 litros de biofer-
tilizante usado, repor 1,0 quilo do
composto/inoculante. O intervalo de
reposição poderá ser semanal até
mensal, ou seja, intervalos menores
quanto maior o volume de biofertili-
zanteutilizado.b)Reposiçãodoester-
co de gado: adicionar um volume de
esterco de gado (fresco) suficiente
para manter a mesma proporção
biomassa/ água do início do proces-
so, sempre quando se verificar com
ajuda do ‘rodo’ a diminuição da cama-
da orgânica no fundo do tanque. c)
Reposição da água:está em função do
volume de biofertilizante consumido,
da evaporação e das chuvas. O volu-
me de água a ser adicionado deverá
ser o suficiente para a manutenção do
nível inicial do tanque. A freqüência
de reposição poderá ser diária, usan-
do-se registro bóia ou até mensal,
também em função do volume de
biofertilizanteusado.Nosperíodosde
chuvas, recomenda-se fechar os tan-
ques de até 1.000 litros nos momentos
deocorrênciadelas.Manterdescober-
tos os tanques maiores de 1.000 litros,
retirando para uso posterior o volume
do biofertilizante que eventualmente
poderá transbordar, armazenando-o
em tambores. É importante sempre
manter as proporções de composto
inoculante e esterco de gado, descri-
tas acima, evitando o uso do bioferti-
lizantemuitodiluído(Microbiol,2001;
D’Andréa & Medeiros, 2002).
5 - Recomendações de uso
Segundo Pinheiro & Barreto
(1996), devido aos elevados efeitos
hormonais e altos teores das substân-
cias sintetizadas, o uso de biofertili-
zantes em pulverizações foliares nor-
malmente são feitos com diluições
entre 0,1 e 5%. Concentrações maio-
res, entre 20 e 50%, foram utilizadas
por Santos & Akiba (1996) com o
Figura 3. Detalhes do experimento utilizando-se ácaros de B. phoenicis criados em
arena, sobre a folha a planta de Canavalia ensiformis. Fonte: Medeiros (2002)
42 Revista Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento - Edição nº 31 - julho/dezembro 2003
biofertilizante “Vairo”. Porém, em
concentrações muito elevadas, o bi-
ofertilizante pode causar estresse fi-
siológico na planta retardando seu
crescimento, floração ou frutificação.
Isso se deve provavelmente ao ex-
cessivo desvio metabólico para pro-
dução de substâncias de defesa. Para
hortaliças recomendam-se pulveriza-
ções semanais, utilizando entre 0,1 e
3 % de concentração do biofertilizan-
te, considerando que as plantas são
de ciclo vegetativo curto e possuem
maiorvelocidadedecrescimento,com
demanda constante de nutrientes.
Em fruteiras, pulverizações entre 1 e
5% do biofertilizante com Microgeo
produziram resultados significativos
na sanidade na cultura. Este bioferti-
lizante também vem sendo emprega-
do sobre o solo em concentrações de
até 20%. Este quando aplicado sobre
o mato roçado, como “input”
microbiano, é capaz de aumentar a
compostagem laminar, isto é direta-
mente no campo, acelerando os pro-
cessosbioquímicosepotencializando
maior atividade microbiana sobre o
solo (D’Andréa & Medeiros, 2002).
As aplicações de biofertilizantes
deverão ser realizadas durante as
fases de crescimento e/ou produção,
evitando-se no florescimento. Deve-
se dar preferência pelos dias de chu-
va ou irrigação e os horários vesper-
tino ou noturno, evitando-se os perí-
odos secos e as horas mais quentes
do dia. Altas concentrações do bio-
fertilizante podem provocar na plan-
ta demanda de água muito maior
para o seu equilíbrio. Mesmo assim,
pulverizações com o biofertilizante,
na diluição de 1%, nos períodos se-
cos são possíveis. Apesar de estarem
sob os efeitos do estresse hídrico, as
plantas estarão recebendo energia
entrópica (não utilizável pelos inse-
tos) e outros fatores de proteção.
6 - Biofertilizantes,
bioinseticidas e
biorremediação
O aumento da população e a
maioratividadeindustrialfizeramcom
que o problema da poluição do am-
biente atingisse níveis alarmantes.
Além de contaminação por detritos
pouco biodegradáveis, como plásti-
cos e detergentes, soma-se o proble-
ma dos resíduos de industrias e, prin-
cipalmente, dos resíduos agroindus-
triais, como a vinhaça ou o vinhoto,
resultante da produção de etanol em
grande escala. Estes problemas po-
dem ser atacados pelo desenvolvi-
mento de linhagens microbianas ca-
pazes de degradar ou assimilar esses
compostos para uso como agentes
de biorremediação.
O processo da biorremediação
consiste na descoberta e procriação
de bactérias capazes de “comer” os
agrotóxicosqueficampormuitosanos
no solo e na água. Estas bactérias
devoram os componentes químicos
existentes nos venenos, fazendo com
que o produto perca sua capacidade
de poluir o solo, a água e até mesmo
o organismo humano. Estas bactérias
também não são prejudiciais ao meio
ambiente. Caso os resultados da pes-
quisa sejam confirmados, será um
grande avanço para a preservação do
meio ambiente, pois o uso do veneno
é um grande vilão que prejudica o
solo, a água, os animais e o homem
(Azevedo, 1998). Uma saída promis-
sora para esses problemas seria a
multiplicação em massa desses agen-
tes de biodegradação de agentes quí-
micos,emtanquesabertos,adotando-
se a técnica de cultura em composta-
gem líquida contínua. A produção de
biofertilizantes líquidos, à base de
resíduos oriundos da agricultura e da
indústria,modificadospormicroorga-
nismos,gerarãosubstratosúteiscomo
fertilizantes de solo e como bioprote-
tores de plantas para a agricultura.
A partir de compostos ricos em
nutrientes, facilmente acessíveis e de
baixo custo operacional, como os
resíduos sólidos e líquidos oriundos
da agricultura e da indústria, é possí-
vel a adição de microrganismos (le-
veduras, bactérias e actinomicetos,
por exemplo) previamente selecio-
nadas, com as condições necessárias
de ecologia nutricional, que promo-
verem o rápido crescimento popula-
cional, resultando em alta produção
de massa microbiana.
Técnicassofisticadas,porémcom
o mesmo princípio, têm sido utiliza-
das em laboratórios, sob condições
controladas em biofermentadores, na
produçãolíquidadeinseticidasàbase
de microrganismos entomo patogê-
nicos (fungos, vírus, bactérias e
nematóides) capazes de controlar as
pragas em níveis aceitáveis, econô-
micos e ecológicos (Alves, 1998).
A preocupação em se gerar alter-
nativas ecológicas ao problema dos
rejeitos líquidos e sólidos na agricultu-
ra, transformá-los em insumos de bai-
Figura 4. Caracterização de cadáveres do ácaro da leprose dos citros Brevipalpus
phoenicis: (a) control, (b) Ácaro morto por ação de contato do biofertilizante; (c) e (d)
Foco microbiano e vista ventral e dorçal do gnatosoma e pernas anteriores aderidas
por uma substancia coloidal (goma). Fonte: Medeiros (2002).
Revista Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento - Edição nº 31 - julho/dezembro 2003 43
Figura 5. Crescimento do fungo entomopatogênico Beauveria bassiana em meio
de biofertilizante líquido
Figura 6. Leveduras isoladas de um biofertilizante produzido por compostagem
líquida contínua
xo custo e capazes de serem aplicados
na atividade produtiva primária, em
cultivosorgânicos,representaumgran-
de avanço na preservação do meio
ambiente. Contudo, serão necessários
alguns anos de investigação e desen-
volvimento, para que se produzam
metodologias de elevado alcance soci-
al, e grandes esforços no sentido de se
consolidar o emprego desses proces-
sos bioquímicos como forma de se
promoverasustentabilidadedosambi-
entes agrícolas.
7 - Referências
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Microbiano dos Insetos. 2a
ed.
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M. A.; LOPES, R. B. Trofobiose e
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de plantas: Biofertilizantes e
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Desenvolvimento, v. 21. p. 16-21.
2001.
AZEVEDO, J. L. Genética de mi-
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FEALQ, 1998. 490p.
BERZAGHI, L. M; MEDEIROS, M. B.;
GARCIA, M. O. TAMAI, M. A.;
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INTERNACIONAL DE INICIA-
ÇÃO CIENTÍFICA DA USP, 9.
Anais. ESALQ/USP: Piracicaba
2001
BETTIOL, W.; TRATCH, R.; GALVÃO,
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Jaguariúna: EMBRAPA-CNPMA.
1998. 22p (EMBRAPA-CNPMA:
Circular Técnica, 02).
CASTRO, C.M. DE; SANTOS, A.C.V.
DOS; AKIBA, F. Bacillus subtilis
isolado do biofertilizante “Vairo”
com ação fungistática e
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  • 1. 38 Revista Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento - Edição nº 31 - julho/dezembro 2003 Pesquisa Biofertilizantes Líquidos Marcos Barros de Medeiros Doutor em Entomologia - ESALQ/USP Professor Adjunto Centro de Formação de Tecnólogos / UFPB - Campus de Bananeiras. barros@iwpb.com.br; ciagra@cft.ufpb.br Paulo Alves Wanderley Doutor em Agronomia - FCAV/UNESP, Professor nível E do Centro de Formação de Tecnólogos / UFPB - Campus de Bananeiras Maria José Araújo Wanderley Doutora em Agronomia - FCAV/UNESP, Bolsista de Desenvolvimento Científico Regional CNPq, UFPB Departamento de Ciências Básicas e Sociais, Campus de Bananeiras Ilustrações cedidas pelos autores Processo trofobiótico para proteção de plantas em cultivos orgânicos 1 - Introdução Nos países desenvolvidos e em vários outros em desenvolvimento, como o Brasil, os organoclorados fo- ram proibidos para o uso agrícola. Porém, essa foi apenas uma medida isolada, uma vez que tais produtos circulam hoje por toda a biosfera (Paschoal, 1995). O uso de produtos químicos sem a observação da com- plexidade de fatores que interagem nos agroecossistemas tem sido a mai- or causa de desequilíbrio nesses siste- mas, tais como o desenvolvimento de resistência ao pesticida, ressurgimen- to e desencadeamento de pragas se- cundáriasequebradecadeiasalimen- tares a partir da eliminação de seus inimigos naturais (parasitóides e pre- dadores) (Medeiros, 1998). Até1945osácarosfitófagoseram tidos como pragas secundárias da agricultura. No entanto, o desenvol- vimento destas espécies nocivas vem atingindo, cada vez mais, uma eleva- da significação econômica, ao mes- mo tempo em que sua lista não pára de crescer. Antes de 1946, havia apenas 10 espécies de insetos e car- rapatos resistentes, todas a produtos inorgânicos minerais. Em 1969 a re- sistência foi confirmada para 424 es- pécies, sendo 97 de importância médica ou veterinária e 127 de im- portância agrícola e florestal e de produtos armazenados (Paschoal, 1979; Chaboussou 1980). Na década de 90, pelo menos 504 espécies de insetos e ácaros foram dadas como resistentesapelomenosumpesticida. Destas, 23 espécies são benéficas e 481 são nocivas, sendo 283 de impor- tância agrícola e 198 de importância médico-veterinária (Georghiou & Lagunes-Tejeda, 1991). Uma nova teoria, hoje ampla- mente difundida, converge ao expli- car que, além destes fatores, estes desequilíbrios também estão forte- mente associados ao estado de proteólise dominante nos tecidos da planta. Estudos comprovam que pro- dutos químicos sintéticos, tais como agrotóxicos e fertilizantes minerais solúveis, contêm substâncias que in- terferemnaproteossíntese,provocam o acúmulo de aminoácidos livres e açúcaresredutoresnostecidosdaplan- ta, reduzindo sua resistência às pragas e doenças (Alves et al., 2001; Chaboussou, 1999; Tokeshi, 2002). Segundo Primavesi (1998), três condições são necessárias para que uma planta seja atacada por pragas e doenças: 1) a planta deve ser defici- entemente nutrida, oferecendo algu- ma substância utilizável para o agen- te; 2) o agente possa se multiplicar livremente sem controle biológico, o que ocorre mais facilmente em monoculturas; 3) o sistema de auto- defesa da planta deve estar desequi- librado, em função da nutrição e do uso de agrotóxicos. Estes princípios convergem com os fundamentados por Francis Chaboussou, então dire- tor do “Institut National de la Recherche Agronomique” (INRA) na França, que em 1979 formulou a Teoria da Trofobiose. Segundo essa teoria, todo processo vital está na dependência da satisfação das ne- cessidades dos organismos vivos, sejam eles vegetais ou animais. Des- sa forma, a planta, ou mais precisa-
  • 2. Revista Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento - Edição nº 31 - julho/dezembro 2003 39 mente o órgão vegetal, será atacado somente quando seu estado bioquí- mico, determinado pela natureza e pelo teor de substâncias nutritivas solúveis, corresponder às exigências tróficas (de alimentação) da praga ou do patógeno em questão. Estudando-se a relação entre o estado nutricional de plantas e sua resistência às doenças constatou-se que toda circunstância desfavorável ao crescimento celular tende a pro- vocar um acúmulo de compostos solúveis não utilizados, como açú- cares e aminoácidos, diminuindo a resistência da planta ao ataque de pragas e doenças (Dufrenoy, 1936). Comprovou-se mais tarde que a ação dos agrotóxicos na planta resulta na inibição da proteossíntese, resultan- do num aumento de ácaros, pulgões e lepidópteros e de doenças (Chaboussou, 1999; Tokeshi, 2002). Espécies de pulgões, cochonilhas, cigarrinhas, cigarras, tripes, outros insetos sugadores e várias espécies de ácaros fitófagos, não são capazes de desdobrar proteínas em aminoá- cidos para serem posteriormente recombinados à conveniência de cada um. Por isso, eles dependem de aminoácidos livres existentes na seiva das plantas ou suco celular e de microrganismos simbiontes (Chaboussou, 1980; Panizzi & Parra, 1991; Pinheiro & Barreto, 1996; Gallo et al., 2002) Os adubos minerais solúveis, especialmente os nitroge- nados, e os agrotóxicos orgânicos sintéticos, que quando absorvidos pelas plantas e translocados em seu interior, são capazes de interferir com a fisiologia vegetal, reduzem a proteossíntese, desencadeando pro- cesso de acúmulo de aminoácidos livres e açúcares redutores, substân- cias prontamente utilizáveis pelas pragas e agentes fitopatogênicos, o que foi correlacionado positivamen- te com o aumento populacional des- ses organismos (Chaboussou, 1985). Na agricultura orgânica o uso de biofertilizantes líquidos, na forma de fermentados microbianos enriqueci- dos, têm sido um dos processos mais empregados no manejo trofobiótico de pragas e doenças. Essa estratégia é baseada no equilíbrio nutricional da planta (trofobiose), onde a resis- tência é gerada pelo melhor equilí- brio energético e metabólico do ve- getal (Chaboussou, 1985; Pinheiro & Barreto,1996).Osbiofertilizantesfun- cionam como promotores de cresci- mento (equilíbrio nutricional) e como elicitores na indução de resistência sistêmica na planta. Além disso, aju- dam na proteção da planta contra o ataque de doenças, por antibiose (Bettiol et al, 1998) e contra o ataque de pragas, por ação repelente, fagodeterrente (inibidores de alimen- tação) ou afetando o seu desenvolvi- mento e reprodução. 2 - Biofertilizantes líquidos e sua aplicação na proteção de plantas Osbiofertilizantespossuemcom- postos bioativos, resultantes da biodigestão de compostos orgânicos de origem animal e vegetal. Em seu conteúdo são encontradas células vi- vas ou latentes de microrganismos demetabolismoaeróbico,anaeróbico e fermentação (bactérias, leveduras, algas e fungos filamentosos) e tam- bém metabólitos e quelatos organo- minerais em soluto aquoso. Segundo Santos & Akiba (1996), os metabólitos sãocompostosdeproteínas,enzimas, antibióticos, vitaminas, toxinas, fenóis, ésteres e ácidos, inclusive de ação fitohormonal produzidos e libe- rados pelos microrganismos. Na citricultura paulista, os bio- fertilizantes vêm sendo produzidos pelo método de compostagem líqui- da contínua em “piscinas” escavadas no solo, revestidas de lona plástica de polietileno, com capacidade de até 50 mil litros. No processo são utilizados água não clorada e o inoculante à base de esterco fresco bovino, e posteriormente enriqueci- do com um composto orgânico nutri- tivo. O Microgeo é um composto orgânico, com registro no Ministério da Agricultura e certificado pelo IBD, preparado à base de diversas fontes orgânicas e inorgânicas, sendo enri- quecido com rochas moídas que con- têm cerca de 48% de silicatos de magnésio, cálcio, ferro e outros oligoelementos, fundamentais para estimulação do metabolismo primá- rio e secundário das plantas. Segun- do Alves et al. (2001) biofertilizantes obtidos com o Microgeo vêm sendo utilizados, em pulverização sobre as plantas, em mais de 8 milhões de pés de laranja no estado de São Paulo. A potência biológica de um bio- fertilizante é expressa pela grande quantidade de microrganismos ali existentes, responsáveis pela libera- ção de metabólitos e antimetabólitos, entre eles vários antibióticos e hormônios vegetais. Castro et al. (1992) e Bettiol et al. (1998) isolaram Figura 01. Simulação da cinética de crescimento celular e da produção de metabólitos ao longo da fermentação aeróbica do biofertilizante no processo de CLC. Metabólitos primários: (Etapas de anabolismo e catabolismo): Açúcares, aminoácidos, ácidos graxos, proteínas, lipídeos, bases nitrogenadas (nucleotídeos e ácidos nucleicos), precursores moleculares etc. Metabólitos secundários: (Biossíntese de macro- moléculas de elevado peso molecular): toxinas, antibióticos, fitoreguladores (IAA e giberelinas), ácidos graxos de cadeia longa, fosfolipídeos, polissacarídeos, terpenos fenóis, polifenois, citoquininas, etc.
  • 3. 40 Revista Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento - Edição nº 31 - julho/dezembro 2003 várias leveduras e bactérias, desta- cando Bacillus subitilis, reconhecido produtor de antibióticos. Atualmente os biofertilizantes vêm sendo aplica- dos em diversas culturas associadas com o fungo entomopatogênico Beauveria bassiana, importante ini- migo natural de pragas. Os efeitos do biofertilizante no controledepragasedoençasdeplantas têm sido bem evidenciados. Efeitos fungistático, bacteriostático e repelente sobreinsetosjáforamconstatados.San- tos & Sampaio (1993) verificaram uma propriedade coloidal do biofertilizante que provoca a aderência do inseto sobre a superfície do tecido vegetal. Os autores destacaram também o efeito repelente e deterrente de alimentação contra pulgões e moscas-das-frutas. Medeiros et al. (2000b) verificaram que o biofertilizante à base de conteúdo de rúmen bovino e o composto orgânico MicrogeoÒ reduziuafecundidade,perí- odo de oviposição e longevidade de fêmeas do ácaro-da-leprose dos citros, Brevipalpusphoenicis, quando pulveri- zado em diferentes concentrações. Es- ses mesmos autores comprovaram que este biofertilizante agiu sinergicamente com Bacillusthuringiensis e o fungo B. bassiana, reduzindo a viabilidade dos ovos e sobrevivência de larvas do bi- cho-furão-dos-citros (Ecdytolopha aurantiana) (Medeiros et al. 2000c). Estudos recentes comprovaram a redu- çãodeaté95%dafecundidadedoácaro rajado Tetranychus urticae, de hábito polífago, em concentrações entre 5 e 50% (Medeiros etal.,2000a;Berzaghi et al., 2001). Também verificou-se redu- çãodeaté64%dapopulaçãodopulgão Aphis sp., quando utilizado o biofertili- zante (10%) associado aos inseticidas Boveril® eMetarril® ,5kg/ha,emcultivo de acerola (Medeiros et al., 2001). Apli- cações do biofertilizante associadas à calda viçosa ou com o Bacillus thuringiensis reduziram significativa- menteoataquedatraça(Tutaabsoluta) e a broca pequena (Neoleucocinodes elegantalis) em tomateiros (Picanço et al.,1999;Nunes&Leal,2001).Também foi constatado menor severidade de oídio e de cigarrinha verde em plantas de feijoeiro pulverizadas com diferen- tes misturas de biofertilizantes (Cunha et al., 2000). Trabalhos conduzidos por Medeiros (2002) no Laboratório de Pa- tologia e Controle Microbiano de Inse- tosdaESALQ/USPcomprovaramqueo biofertilizante líquido reduziu de modo crônico e significativamente a fecundi- dade e o potencial de crescimento po- pulacional e o tempo de desenvolvi- mento de descendentes dos ácaros da leprosedoscitrosBrevipalpusphoenicis, criados sobre plantas tratadas com bio- fertilizantes. O estudo comprovou que o biofertilizante testado agiu por conta- todiretoeresidualetambémfuncionou de forma sistêmica na planta. A ação antibiótica e indução de resistência sistêmica da planta são provavelmente os principais meca- nismos de ação do biofertilizante sobre a praga (D´Andréa & Medeiros, 2002). Os fenômenos podem estar diretamente associados à complexa e pouco conhecida composição quí- mica e biológica dos biofertilizantes. Compostos metabólitos (micro e macromoléculas), tais como enzimas, antibióticos,vitaminas,toxinas,fenóis e outros voláteis, ésteres e ácidos, inclusive de ação fitohormonal têm sido identificados nos biofertilizan- tes (Santos, 1992). Um composto coloidal, de consistência mucilagino- sa (goma) e de composição ainda não conhecida, foi observado por Medeiros (2002) causando a imobili- zação e morte do ácaro B. phoenicis sobre a folha devido à obstrução de seu sistema digestivo. 3 - Processos envolvidos na produção de biofertilizantes Não existe uma fórmula padrão para produção de biofertilizantes. Receitas variadas vêm sendo testadas, utilizando-se componentes minerais para o enriquecimento do meio de cultivo (Santos, 1992; Magro, 1994). O processo de fermentação é complexo e os microrganismos exis- tentes passam quatro fases distintas de crescimento celular: 1) Latência - Compreende o período de adaptação dos microrganismos, após o qual as células dão início à fermentação. 2) Crescimentoexponencial–Nessafase ocorre elevado processo de divisão celular, com a produção de biomassa e liberação dos metabólitos primári- os: carboidratos, aminoácidos, lipídeos, nucleotídeos, vitaminas e proteínas e enzimas. 3) Fase estacio- nária – As células param de se dividir e as colônias, após juntarem-se, inici- am um processo de diferenciação celular produzindo metabólitos se- cundários como forma de defesa (an- tibióticos, toxinas, fenóis, ácidos or- gânicos e outras proteínas de cadeia longa, de alto interesse biotecnológi- co). 4) Morte Celular-Esgotadas to- Figura 2. Produção de biofertilizantes pelo sistema de compostagem líquida contínua a céu aberto, em recipientes plásticos.
  • 4. Revista Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento - Edição nº 31 - julho/dezembro 2003 41 das as reservas de energia, as células começam a morrer numa velocidade exponencial. Cada microrganismo participan- te degrada alimento para outro, numa relação de interdependência mútua e harmônica e, assim, o processo de fermentação acaba sendo contínuo, desde que seja alimentado com meio nutritivo, o que fundamentou o pro- cesso de compostagem líquida des- critoporD’Andréa&Medeiros(2002). 4 - Produção do biofertilizante pelo processo de Compostagem Líquida Contínua (CLC) 4.1 - Dimensionamento da Produção Tanques para compostagem do biofertilizante podem ser utilizados para volumes de até 1.000 litros, cai- xas de fibrocimento ou plásticas. Para volumes maiores constrói-se direta- mente no solo, ‘piscinas’ com as di- mensões do volume pretendido, e com a profundidade máxima de um metro, as quais são revestidas com lona plástica. A localização do tanque deve ser em área ensolarada, manten- do-o descoberto. Para o dimensiona- mento do volume do tanque, deverá ser considerado um consumo diário máximo de 10% de biofertilizante, da sua capacidade. Exemplo: Para um consumo diário de 100 litros de bio- fertilizante, o tanque deverá ter o volume de 1.000 litros. 4.2- CLC com uso de esterco e composto orgânico enriquecido Início da CLC: Para início da produção do biofertilizante, adiciona- se no tanque o esterco fresco de gado (inoculante), um composto orgânico enriquecido com minerais (Ex.: MICROGEO MCO) e água (não clorada). No caso do Microgeo, pesquisado e desenvolvido pela equi- pe do Laboratório de Patologia e Con- troleMicrobianodaESALQ,opreparo é feito nas seguintes proporções:1,0 quilo do composto orgânico / 4,0 litrosestercodegado/20,0litroságua (completando o volume ). Exemplo: Para a produção de 1.000 litros de biofertilizante, adiciona-se no tanque 50 quilos do composto,mais 200 litros de esterco de gado de qualquer ori- gem, completando com água o volume de 1.000 litros do tanque. Agitar duas vezes ao dia manualmen- te com um ‘rodo’, que também permi- tirádeterminaraespessuradacamada orgânica (biomassa) depositada no fundodotanque,comoobjetivodese quantificar a reposição do esterco de gado no processo CLC. Iniciar o uso do biofertilizante com aproximada- mente 15 dias, após a mistura inicial dos insumos. Manutenção da CLC: Para manter a compostagem em meio líquidodeformacontínua,contabilizar diariamente os volumes de biofertili- zanteconsumidosrepondonotanque os insumos nas seguintes proporções: a) Reposição do composto orgânico: para cada 30,0 a 40,0 litros de biofer- tilizante usado, repor 1,0 quilo do composto/inoculante. O intervalo de reposição poderá ser semanal até mensal, ou seja, intervalos menores quanto maior o volume de biofertili- zanteutilizado.b)Reposiçãodoester- co de gado: adicionar um volume de esterco de gado (fresco) suficiente para manter a mesma proporção biomassa/ água do início do proces- so, sempre quando se verificar com ajuda do ‘rodo’ a diminuição da cama- da orgânica no fundo do tanque. c) Reposição da água:está em função do volume de biofertilizante consumido, da evaporação e das chuvas. O volu- me de água a ser adicionado deverá ser o suficiente para a manutenção do nível inicial do tanque. A freqüência de reposição poderá ser diária, usan- do-se registro bóia ou até mensal, também em função do volume de biofertilizanteusado.Nosperíodosde chuvas, recomenda-se fechar os tan- ques de até 1.000 litros nos momentos deocorrênciadelas.Manterdescober- tos os tanques maiores de 1.000 litros, retirando para uso posterior o volume do biofertilizante que eventualmente poderá transbordar, armazenando-o em tambores. É importante sempre manter as proporções de composto inoculante e esterco de gado, descri- tas acima, evitando o uso do bioferti- lizantemuitodiluído(Microbiol,2001; D’Andréa & Medeiros, 2002). 5 - Recomendações de uso Segundo Pinheiro & Barreto (1996), devido aos elevados efeitos hormonais e altos teores das substân- cias sintetizadas, o uso de biofertili- zantes em pulverizações foliares nor- malmente são feitos com diluições entre 0,1 e 5%. Concentrações maio- res, entre 20 e 50%, foram utilizadas por Santos & Akiba (1996) com o Figura 3. Detalhes do experimento utilizando-se ácaros de B. phoenicis criados em arena, sobre a folha a planta de Canavalia ensiformis. Fonte: Medeiros (2002)
  • 5. 42 Revista Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento - Edição nº 31 - julho/dezembro 2003 biofertilizante “Vairo”. Porém, em concentrações muito elevadas, o bi- ofertilizante pode causar estresse fi- siológico na planta retardando seu crescimento, floração ou frutificação. Isso se deve provavelmente ao ex- cessivo desvio metabólico para pro- dução de substâncias de defesa. Para hortaliças recomendam-se pulveriza- ções semanais, utilizando entre 0,1 e 3 % de concentração do biofertilizan- te, considerando que as plantas são de ciclo vegetativo curto e possuem maiorvelocidadedecrescimento,com demanda constante de nutrientes. Em fruteiras, pulverizações entre 1 e 5% do biofertilizante com Microgeo produziram resultados significativos na sanidade na cultura. Este bioferti- lizante também vem sendo emprega- do sobre o solo em concentrações de até 20%. Este quando aplicado sobre o mato roçado, como “input” microbiano, é capaz de aumentar a compostagem laminar, isto é direta- mente no campo, acelerando os pro- cessosbioquímicosepotencializando maior atividade microbiana sobre o solo (D’Andréa & Medeiros, 2002). As aplicações de biofertilizantes deverão ser realizadas durante as fases de crescimento e/ou produção, evitando-se no florescimento. Deve- se dar preferência pelos dias de chu- va ou irrigação e os horários vesper- tino ou noturno, evitando-se os perí- odos secos e as horas mais quentes do dia. Altas concentrações do bio- fertilizante podem provocar na plan- ta demanda de água muito maior para o seu equilíbrio. Mesmo assim, pulverizações com o biofertilizante, na diluição de 1%, nos períodos se- cos são possíveis. Apesar de estarem sob os efeitos do estresse hídrico, as plantas estarão recebendo energia entrópica (não utilizável pelos inse- tos) e outros fatores de proteção. 6 - Biofertilizantes, bioinseticidas e biorremediação O aumento da população e a maioratividadeindustrialfizeramcom que o problema da poluição do am- biente atingisse níveis alarmantes. Além de contaminação por detritos pouco biodegradáveis, como plásti- cos e detergentes, soma-se o proble- ma dos resíduos de industrias e, prin- cipalmente, dos resíduos agroindus- triais, como a vinhaça ou o vinhoto, resultante da produção de etanol em grande escala. Estes problemas po- dem ser atacados pelo desenvolvi- mento de linhagens microbianas ca- pazes de degradar ou assimilar esses compostos para uso como agentes de biorremediação. O processo da biorremediação consiste na descoberta e procriação de bactérias capazes de “comer” os agrotóxicosqueficampormuitosanos no solo e na água. Estas bactérias devoram os componentes químicos existentes nos venenos, fazendo com que o produto perca sua capacidade de poluir o solo, a água e até mesmo o organismo humano. Estas bactérias também não são prejudiciais ao meio ambiente. Caso os resultados da pes- quisa sejam confirmados, será um grande avanço para a preservação do meio ambiente, pois o uso do veneno é um grande vilão que prejudica o solo, a água, os animais e o homem (Azevedo, 1998). Uma saída promis- sora para esses problemas seria a multiplicação em massa desses agen- tes de biodegradação de agentes quí- micos,emtanquesabertos,adotando- se a técnica de cultura em composta- gem líquida contínua. A produção de biofertilizantes líquidos, à base de resíduos oriundos da agricultura e da indústria,modificadospormicroorga- nismos,gerarãosubstratosúteiscomo fertilizantes de solo e como bioprote- tores de plantas para a agricultura. A partir de compostos ricos em nutrientes, facilmente acessíveis e de baixo custo operacional, como os resíduos sólidos e líquidos oriundos da agricultura e da indústria, é possí- vel a adição de microrganismos (le- veduras, bactérias e actinomicetos, por exemplo) previamente selecio- nadas, com as condições necessárias de ecologia nutricional, que promo- verem o rápido crescimento popula- cional, resultando em alta produção de massa microbiana. Técnicassofisticadas,porémcom o mesmo princípio, têm sido utiliza- das em laboratórios, sob condições controladas em biofermentadores, na produçãolíquidadeinseticidasàbase de microrganismos entomo patogê- nicos (fungos, vírus, bactérias e nematóides) capazes de controlar as pragas em níveis aceitáveis, econô- micos e ecológicos (Alves, 1998). A preocupação em se gerar alter- nativas ecológicas ao problema dos rejeitos líquidos e sólidos na agricultu- ra, transformá-los em insumos de bai- Figura 4. Caracterização de cadáveres do ácaro da leprose dos citros Brevipalpus phoenicis: (a) control, (b) Ácaro morto por ação de contato do biofertilizante; (c) e (d) Foco microbiano e vista ventral e dorçal do gnatosoma e pernas anteriores aderidas por uma substancia coloidal (goma). Fonte: Medeiros (2002).
  • 6. Revista Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento - Edição nº 31 - julho/dezembro 2003 43 Figura 5. Crescimento do fungo entomopatogênico Beauveria bassiana em meio de biofertilizante líquido Figura 6. Leveduras isoladas de um biofertilizante produzido por compostagem líquida contínua xo custo e capazes de serem aplicados na atividade produtiva primária, em cultivosorgânicos,representaumgran- de avanço na preservação do meio ambiente. Contudo, serão necessários alguns anos de investigação e desen- volvimento, para que se produzam metodologias de elevado alcance soci- al, e grandes esforços no sentido de se consolidar o emprego desses proces- sos bioquímicos como forma de se promoverasustentabilidadedosambi- entes agrícolas. 7 - Referências bibliográficas ALVES, S. B. (Ed.). Controle Microbiano dos Insetos. 2a ed. Piracicaba: FEALQ, 1998. 1163p. ALVES,S.B.;MEDEIROS,M.B.;TAMAI, M. A.; LOPES, R. B. Trofobiose e microrganismos na proteção de plantas: Biofertilizantes e entomopatógenos na citricultura orgânica. Biotecnologia Ciência e Desenvolvimento, v. 21. p. 16-21. 2001. AZEVEDO, J. L. Genética de mi- crorganismos. Piracicaba: FEALQ, 1998. 490p. BERZAGHI, L. M; MEDEIROS, M. B.; GARCIA, M. O. TAMAI, M. A.; ALVES, S. B. Efeito do bioferti- lizante na fecundidade do ácaro T. urticae. In: SIMPÓSIO INTERNACIONAL DE INICIA- ÇÃO CIENTÍFICA DA USP, 9. Anais. ESALQ/USP: Piracicaba 2001 BETTIOL, W.; TRATCH, R.; GALVÃO, J. A. H. Controle de doenças de plantas com biofertilizantes. Jaguariúna: EMBRAPA-CNPMA. 1998. 22p (EMBRAPA-CNPMA: Circular Técnica, 02). CASTRO, C.M. DE; SANTOS, A.C.V. DOS; AKIBA, F. Bacillus subtilis isolado do biofertilizante “Vairo” com ação fungistática e bacteriostática em alguns fitopatógenos. In: SIMPÓSIO DE CONTROLE BIOLÓGICO, 3., 1992, Águas de Lindóia. Anais. Jaguariúna: EMBRAPA-CNPDA. 1992. p.291. CHABOUSSOU, F. Les Plantes Malades des Pesticides. Paris: Editions Débard, 1980. 265p.
  • 7. 44 Revista Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento - Edição nº 31 - julho/dezembro 2003 CHABOUSSOU, F. Plantas doentes pelo uso de agrotóxicos: A te- oria da trofobiose. 2a ed. Trad. de M. J. GUAZZELLI. Porto Alegre: L&MP, 1999. 256p. CHABOUSSOU,F.Santédescultures, une revolution agronomique. Pa- ris: Flammarion, 1985. 296p. CUNHA, A. O.; SILVA, V. F.; SILVA, A. P.; ALMEIDA, F. A.; ARAÚJO, G. B.; BRUNO, G. B. Intensida- de de pragas e doenças em feijão macassar cultivado em sistemas orgânicos e conven- cionais. Horticultura Brasileira, v.18, p.440-442, 2000. D’ANDRÉA, P. A.; MEDEIROS, M. B. Biofertilizantes biodinâmicos na nutrição e proteção de hor- taliças. In: AMBROSANO E. (Coord.) CONGRESSO BRASILEI- RO DE AGRICULTURA ORGÂNI- CA, NATURAL, ECOLÓGICA E BIODINÂMICA, 1. Anais. Piracicaba: Agroecológica, 2002. DUFRENOY, J. 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