Este documento fornece instruções detalhadas sobre técnicas de necropsia e coleta de amostras para diagnóstico em suínos. Ele descreve os seis passos principais para realizar uma necropsia sistemática, incluindo a seleção do animal, preparação do material, realização da necropsia, remoção e exame dos órgãos, coleta de amostras e envio adequado ao laboratório.

1. T É C N I C A S D E N E C R O P S I A E C O L E T A D E
M A T E R I A I S P A R A D I A G N Ó S T I C O
Prof. Marília Gomes

2. NECROPSIA
OBJETIVO:
chegar ao diagnóstico do real
problema sanitário do plantel

3. É I M P O R TA N T E C O N S I D E R A R
Q U AT R O P O N T O S

4. S E L E Ç Ã O D O S U Í N O PA R A
N E C R O P S I A
1 °

5. • O suíno deve apresentar:
 Sinais típicos de fase aguda da doença
(preferencialmente com febre)
 Não ter sido medicado
 Não ser refugo

6. P R E PA R A Ç Ã O D O M AT E R I A L
PA R A N E C R O P S I A
2 °

7. • Ter à mão todos os
materiais
necessários para a
realização da
necropsia

8. • Ter à mão todos os
materiais necessários
para a colheita e
envio das amostras

9. • Assegurar sua proteção
individual
e biosseguridade

10. R E A L I Z A Ç Ã O D E T É C N I C A
D E N E C R O P S I A S I S T E M Á T I C A
C O M C O L H E I TA A D E Q U A D A
D E A M O S T R A S
3 °

11. 1 ° PA S S O • Anamnese da granja incluindo
sistema de produção, protocolo
de vacinação, etc. A associação
entre a queixa do produtor, a
idade, os sinais clínicos, a taxa
de morbidade/mortalidade e o
manejo sanitário da granja é
essencial para a elaboração da
suspeita clínica.

12. 2 ° PA S S O
• Realizar o exame externo da
carcaça

14. 3 ° PA S S O
• Realizar o exame interno da
carcaça
• Decúbito lateral esquerdo

15. • Rebater os membros
esquerdos, cortando
pele, músculos e ligamento
da articulação coxofemoral
• Incisionar linearmente a pele,
do queixo ao
abdômen ventral (tracejado)

16. • Rebater a pele do tórax e do
abdômen
• Localizar o arco da
última costela e cortar
os músculos abdominais
(tracejados)

17. • Cortar as inserções
do diafragma e os músculos
do dorso
• Com a ajuda
de um costótomo, remover as
costelas como um bloco
(tracejados)

18. • Separar uma costela do bloco
e tentar quebrá-la
para determinar a integridade
óssea
• Observar a cor dos músculos
e examinar todos os órgãos
quanto à cor, posição e
tamanho

20. Se houver fluido ou fibrina na pleura, saco
pericárdico ou abdômen, colher amostras
com seringa ou suabe estéril
A colheita para exame microbiológico
dessas amostras e de fragmentos de órgãos
que apresentam lesão deve ser feita antes
de manipulá-los para evitar contaminação

21. 4 ° PA S S O
• Remover os órgãos em
monoblocos
• Colocar em uma superfície
limpa para exame

22. • Rebater a pele do pescoço
• Examinar os linfonodos
retrofaríngeos e
mandibulares e o timo
(animais jovens)
• Inserir a faca entre os ramos
da mandíbula e a língua e
cortar os músculos da sínfise
M O N O B L O C O T O R Á C I C O

23. • Puxar a ponta da língua para
trás
• Cortar articulações do hioide
• Examinar as tonsilas do palato
mole (asterisco)
• Puxar a língua para baixo e
para trás, liberando a traqueia
e esôfago ao dissecar os
músculos da região cervical

24. • Cortar o saco pericárdico e,
na altura do diafragma, cortar
as três estruturas (aorta,
esôfago e veia cava caudal)
para liberar o
monobloco torácico

25. • Remover o baço seccionando
o omento próximo ao
estômago
• Remover o estômago, o
pâncreas e os intestinos
delgado
• Remover o fígado
seccionando as inserções
com o diafragma
M O N O B L O C O A B D O M I N A L

26. • Remover as glândulas adrenais
e o trato urinário
• Em fêmeas, o útero e os
ovários são removidos com
a bexiga
• Em machos, as glândulas
sexuais acessórias
são removidas com a bexiga
• Abra o escroto e retire os
testículos

27. • Localizar a articulação atlanto-
occipital pelo aspecto ventral
• Seccionar os músculos do
pescoço, atrás dos arcos da
mandíbula
• Inserir a ponta da faca na
articulação e desfazê-la
(tracejado)
• Seccionar a medula espinhal
cervical (asterisco)
• Separar a cabeça do pescoço
D E S A R T I C U L A Ç Ã O D A C A B E Ç A

28. 5 ° PA S S O
• Examinar os órgãos
• Colher amostras

29. RESPEITAR UMA SEQUÊNCIA LÓGICA
* Primeiro os órgãos menos contaminados
e parenquimatosos
* Depois os mais contaminados (potencialmente patogênico)
OBS: se o suíno tiver diarreia, deve-se priorizar o exame dos
intestinos para evitar a autólise

31. • Órgãos parenquimatosos
Coração, pulmão, fígado, baço, rim, testículo...
Deve-se avaliar a superfície capsular e de corte
• Órgãos ocos
Traqueia, esôfago, intestino, útero...
Deve-se examinar serosa e mucosa em vários pontos
Examinar o conteúdo existente

32. C A B E Ç A
• Para remoção do encéfalo,
dissecar a pele e remover os
músculos da parte caudal da
cabeça
• Remover os ossos do crânio
com serra ou cutelo
(tracejados)

33. • Foçar a calota craniana para
trás e expor o encéfalo
envolto pela dura-máter
• Cortar a dura-máter
com tesoura e observar a
superfície do encéfalo
recoberta pelas
leptomeninges

34. • Se necessário, coletar amostra das
leptomeninges com suabe
• Seccionar os nervos cranianos na base
do encéfalo e removê-los da cabeça
• Dividir o encéfalo em duas metades
iguais
• Colocar uma sob refrigeração e a outra
em formol 10%

35. • Para examinar os cornetos
nasais, serrar o nariz na altura
da comissura labial e observar
a superfície de corte

36. E X A M E M I C R O B I O L Ó G I C O
• Selecionar uma porção grande do órgão (Ex.: um lobo
pulmonar, um terço do baço) ou o órgão inteiro (Ex.: rim,
linfonodo)

37. Colher porções de alças
intestinais com fezes e as
extremidades amarradas

38. • As amostras devem ser colhidas assepticamente e
refrigeradas imediatamente para evitar contaminação
• Os materiais devem ser identificados e acondicionados
separadamente
• Conserve as amostras sob refrigeração (2°C-8°C)

39. E X A M E H I S T O PAT O L Ó G I C O
• Selecionar uma porção representativa, com no máximo 1cm
de espessura Ex. fragmento de rim com camadas cortical,
medular e pelve

40. • Antes de colocar os fragmentos de intestino no formol é
necessário remover as fezes sem danificar a mucosa
• Os intestinos devem ser fixados até 20 minutos após a
eutanásia/morte do animal para evitar a autólise
• Todos os órgãos podem ser colocados juntos no mesmo
frasco com formol
• Conserve as amostras em formol tamponado a 10% na
proporção de uma parte de tecido para 10 ou mais partes de
formol (1:10).
• Manter em temperatura ambiente (21-23°C)

41. 6 ° PA S S O
• Descrever as alterações
encontradas na necropsia

42. Anote as alterações macroscópicas e as
amostras colhidas em uma ficha de necropsia
para envio ao laboratório
Lembre-se de incluir na descrição das lesões
aspectos como localização, distribuição, cor,
tamanho, forma e consistência

43. E M PA C O TA M E N T O A D E Q U A D O E
E N V I O R Á P I D O A O L A B O R AT Ó R I O ,
S E G U I N D O S E I S PA S S O S :
4 °

44. Envie uma ficha de necropsia com as informações
sobre o animal, histórico clínico e achados de
necropsia em envelope impermeável

45. Utilize gelo gel para manter as amostras refrigeradas
por mais tempo

46. Antes de enviar as amostras entre em contato com o
laboratório e informe-se sobre os horários de
recebimento das amostras para evitar possíveis
deterioração das mesmas

47. RECORDANDO

48. Obtenha o
histórico
clínico
Realize o
exame externo
da carcaça
Realize o
exame interno
da carcaça
Remova os
órgãos em
monoblocos
Examine os
órgãos
Colha
amostras
Descreva as
alterações da
necropsia
Embale as
amostras
corretamente
Envie ao
laboratório
rapidamente

49. O B R I G A D A !