O documento descreve as características do líquido cefalorraquidiano (LCR), incluindo sua composição, formação, circulação e exames realizados no LCR coletado por punção lombar para diagnóstico de doenças neurológicas.

1. P R O F ª M S C . M A Y A R A C A R N E I R O
Líquido Cerebrospinal

2.  Também chamado de líquor ou líquido
cefalorraquidiano
 O que é?
 Um líquido de aparência clara
 Para que serve?
 Lubrificar e proteger o córtex cerebral
 Promover troca de nutrientes e produtos metabólicos

3.  Onde se encontra?
 No espaço entre a membrana aracnóide e a pia-
máter
 Também envolve o cérebro e a medula espinal

6.  Como se forma?
 O LCS origina-se a partir dos plexos coroides
ventriculares (70%)
 Células ependimais dos ventrículos (revestimento)

7.  Do que é composto?
 Plasma ultrafiltrado e poucas células
 Água, glicose, gás carbônico, creatinina, ureia
 Álcool e drogas
 Comparação com concentrações plasmáticas

8.  Circulação:
 Formado nos ventrículos
 Circula pelos hemisférios
 Circula pela medula espinal

9. Coleta
 Indicações: neoplasia maligna, doenças
desmielinizantes, infecções nas meninges e
hemorragia subaracnóide.
 Punção lombar (desde que não haja infecção no
setor)
 Espaço entre a L3 e a L4 (adultos)
 L4 e L5 (crianças)

12.  Higienização
 Anestesia local
 Dura-máter
 Pressão do LCS medida por manômetro
 Se estiver normal, extrai-se o líquor (4 a 15 mmHg)
 10 a 20 mL em 3 ou 4 tubos sequenciais

14. Protocolo
 Tubo 1: Análise química e imunológica
 Tubo 2: Análise microbiológica
 Tubo 3: Contagem celular
 Exame laboratorial: Análise macroscópica, análise
microscópica de contagem e tipo celular, análise
química, culturas microbiológicas, análise
imunológica e molecular

15. Exames físicos
 Cor e turbidez
 Viscosidade similar à água
 4º tubo: formação de película (meningite
tuberculosa)
 Turbidez anormal pode indicar: células sanguíneas,
microrganismos e resíduos protéicos
 Presença de células (pleocitose)
 Aspecto oleoso (contrastes radiológicos)

16.  Avermelhado, róseo: hemácias, hemoglobina
 Xantocrômico: hemorragia mais antiga (billirrubina,
caroteno e melanina)
 Diferenciação entre a punção traumática e
hemorragia
 Hemorragia subaracnoide
 2 a 4 semanas

17.  LCS coagulação> punção traumática
 Coagulação> neurossífilis e meningite tuberculosa

18. Exame microscópico
 Contagem de células (hemocitômetro) Cap.8
 Amostras não diluídas em solução salina
 Exceto amostras sanguinolentas
 Adição de HCl
 Mononucleares e polimorfonucleares
 Leucócitos (o a 5 por microlitro, células ependimais,
células do plexo coroide, células tumorais

19.  Contagem diferencial
 Esfregaço corado
 Normal: linfócitos e monócitos
 Porcentagens:
 28% a 96% de linfócitos
 16% a 56% de monócitos
 0 a 7% de neutrófilos
 Anormal: eosinófilos, células ependimais e histócitos

20.  Pleocitose
 Definição
 Tipos de células encontrados: além dos linfócitos,
células do SNC e células malignas
 Neutrófilos:
 Meningite bacteriana, abscesso cerebral, empiema
subdural, hemorragia do SNC e pós-convulsões

21.  Linfócitos
 Estágios tardios de meningite viral, tuberculosa,
fúngica ou sifilítica
 Plasmócitos
 Esclerose múltipla

22.  Eosinófilos
 Infecções por parasitas e fungos ou reações alérgicas
a contrastes e medicamentos
 Monócitos e macrófagos
 Meningite bacteriana, meningite fúngica, ou ruptura
de abscesso cerebral
 Podem ser encontrados com hemácias, ou como
lipófagos (hemorragia e infarto cerebral)

23.  Outras células
 Células ependimais, células coroides
 Após lesão cerebral traumática, mielografia, infarto
isquêmico cerebral, injeções intratecais
 Células malignas: carcinoma de mama, pulmão,
leucemia e melanoma

24. Análises químicas
 Proteínas:
 As totais variam de 15mg/dL a 45mg/dL
 Neonatos e adultos acima de 40 anos possuem
aumento
 Mais altos em punção lombar e mais baixos nos
ventrículos
 Distúrbios endócrinos, hemorragia, infecção,
obstrução, punção traumática e condições tóxicas

25.  Níveis reduzidos: perda de fluido a partir de ruptural
dural, hipertireoidismo
 Albumina: barreira hematoencefálica
 Proporção entre níveis séricos e o LCS
P=A LCS/A Sérica
• 1:230
• 15 a 30 comprometimento moderado
• >30 comprometimento grave
• >100 completa ruptura da barreira

26.  Imunoglobulina:
 P= IgG do LCS/IgG sérica
 1:369
 0, 30 a 0, 70
 Aumentado: esclerose múltipla, distúrbios
neurológicos inflamatórios
 Reduzido: comprometimento da barreira

27.  Eletroforese de proteínas:

28.  Bandas oligoclonais:
 Essas bandas são imunoglobulinas sintetizadas por
um ou poucos clones de plasmócitos, derivados de
linfócitos B, em resposta à presença contínua de um
antígeno único e altamente específico
 Esclerose aguda, neurossífilis, meningite
criptocóccica, meningite bacteriana e viral, encefalite
necrotizante, infecções por HIV

30.  Proteína básica da mielina (PBM)
 Inferiores a 4ng/mL
 Esclerose múltipla, mielopatia, trauma cefálico
 Glicose:
 50 a 80mg/dL
 Hipoglicemia, atividade glicolítica e carcinoma
metastático

31.  Lactato:
 Independe dos níveis séricos
 11 a 22mg/dL
 Aumentado pode indicar trauma encefálico, edema
cerebral, meningite, hidrocefalia
 Importante na classificação da meningite:
 Viral: menor que 30mg/dL
 Bacteriana, fúngica, tuberculosa: acima de 35mg/dL

32.  Corantes:
 Gram e Wright
 Culturas:
 Tioglicolato ou ágar sangue, chocolate e Macconkey
 Sabouraud

33. Correlações clínicas
 Meningite bacteriana:
 Presença de bactérias, altas concentrações de
proteínas e pouca glicose
 Muitos leucócitos (neutrófilos)
 Meningite viral:
 Linfocitose, monócitos e macrófagos, muitas
proteínas

34.  Meningite fúngica:
 Níveis normais ou reduzidos de glicose, muitas
proteínas, linfócitos
 Células malignas
 Quimioterapia não alcança a barreira

35. Bons estudos!!