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REVISTA DE BIOLOGIA E CIÊNCIAS DA TERRA ISSN 1519-5228 
9 
Volume 15 - Número 2 - 2º Semestre 2015 
ESTUDO FITOQUÍMICO, ATIVIDADE MICROBIOLÓGICA E CITOTÓXICA EM 
Artemia salina DA PERIDERME DE Sclerolobium paniculatum VOGEL 
(CAESALPINIOIDEAE) 
Gian Braian Silva Furtado1; Sheylla Susan Moreira da Silva de Almeida2 
RESUMO 
Esta pesquisa objetivou avaliar a citotoxidade, atividade antibacteriana e composição 
farmacognóstica dos extratos etanólicos da periderme de Sclerolobium paniculatum. Realizou-se a 
triagem fitoquímica, foram realizadas reações testes, dos quais oito foram positivos: ácidos orgânicos, 
fenóis/taninos, açúcares redutores, alcaloides, saponinas espumídicas, saponinas hemolíticas, 
depsídeos/depsidonas e antraquinonas; e os negativos para: flavonoides, resinas, 
esteroides/triterpenoides e polissacarídeos. O ensaio de letalidade com Artemia salina L. foi realizado 
e apresentou nenhuma morte, sugerindo nenhuma toxidade. Para o estudo antimicrobiano por difusão 
em discos, foram utilizadas cepas de bactérias Gram positiva: Staphylococcus aureus (ATCC25923) 
e Gram negativas: Escherichia coli (ATCC25922) Klebsiella pneunomiae (ATCC13883), no qual 
foram submetidas aos antibióticos e ao extrato diluído, nas seguintes concentrações: 25, 50 e 
100mg/mL. A espécie S. paniculatum apresentou atividade contra em todas as cepas, considerando 
as seguintes concentrações inibitórias a partir de: 50mg/mL para S. aureus; 25 mg/mL para E. coli e 
100 mg/mL para K. pneunomiae que pode estar relacionada pela presença de fenóis, taninos e 
alcaloides, devido a ação antimicrobiana. 
Palavras-chave: Fitoquímica, atividade microbiológica, ação citotóxica, periderme, Sclerolobium 
paniculatum. 
PHYTOCHEMICAL STUDY, CYTOTOXIC ACTIVITY AND MICROBIOLOGICAL IN 
Artemia salina PERIDERM OF THE Sclerolobium paniculatum VOGEL 
(CAESALPINIOIDEAE) 
ABSTRACT 
This research aimed to evaluate the cytotoxicity, antibacterial activity and pharmacognostic 
composition of ethanol extracts of the periderm Sclerolobium paniculatum. Held the phytochemical 
screening, reaction tests were performed, eight of which were positive: organic acids, 
phenols/tannins, reducing sugars, alkaloids, sparkling saponins, haemolytic saponins, 
depsides/depsidones and anthraquinones; and negative to: flavonoids, resins, steroids/triterpenoids 
and polysaccharides. The lethality assay with Artemia salina L. was performed and showed no death, 
suggesting no toxicity. To study antimicrobial for the disc diffusion, strains of bacteria were used 
Gram positive: Staphylococcus aureus (ATCC25923) e Gram negative: Escherichia coli 
(ATCC25922) Klebsiella pneunomiae (ATCC13883), in which underwent antibiotic and the extract 
diluted, the following concentrations: 50 mg / mL for S. aureus; 25 mg/mL for E. coli and 100 mg/mL 
for K. pneunomiae which may be related to the presence of phenols, tannins and alkaloids, due to 
antimicrobial action. 
Keywords: Phytochemical, microbiological activity, cytotoxic activity, periderm, Sclerolobium 
paniculatum.
9 
INTRODUÇÃO 
Sclerolobium paniculatum Vogel 
pertence à família Leguminosae- 
Caesalpinioideae (LORENZI, 2008), perenifólia 
com 8 a 30 m de alturade altura na idade adulta 
(RIZZINI, 1976;). Conhecida popularmente 
como taxi-branco-da-terra-firme, madeira de 
boa reputação para produção de lenha e de 
carvão vegetal, sendo também recomendada 
para produção de álcool e coque (PAULA, 
1980). O uso medicinal pela decocção de sua 
casca é relatado pela população para tratamento 
de feridas (OLIVEIRA, 2006). Por isso, fez-se 
uma pesquisa preliminar da casca deste vegetal, 
determinando de forma qualitativa os 
metabólicos secundários, por meio de uma 
triagem fitoquímica, que é de extrema 
importância para descoberta de novos agentes 
com atividade farmacológica. A análise 
citotóxica com Artemia salina, método 
experimental alternativo, simples e barato, para 
a determinação da atividade biológica de 
compostos ou extratos naturais, toxinas 
contaminantes do meio ambiente (MAYER et 
al., 1982); e como também atividade 
antimicrobiana do extrato bruto etanólico da 
periderme do Sclerolobium paniculatum Vogel, 
faz-se necessário, devido ao surgimento de 
novos agentes antimicrobianos se faz necessária 
devido ao surgimento de microrganismos 
resistentes e de infecções oportunistas fatais, 
associadas a AIDS, quimioterapia 
antineoplásica e transplantes (PENNA et al., 
2001). Desta forma, tais pesquisas contribuem, 
significativamente, no desenvolvimento do 
campo da saúde em nível mundial, encontrando 
substâncias mais eficazes e menos tóxicas na 
corrida contra a resistência e o surgimento de 
microrganismos patogênicos (LEITÃO et al., 
2006; BARBOSA-FILHO et al., 2007). 
MATERIAL E MÉTODOS 
Coleta e identificação do material vegetal 
Foram coletadas cascas de S. 
paniculatum, encontradas no município de 
Pedra Branca do Amapari-AP, setembro de 
2011. A planta foi identificada pelo Profa. Dra. 
Wegliane Campelo da Silva Aparício, do 
Laboratório de Botânica da Universidade 
Federal do Estado do Amapá (UNIFAP), onde 
uma exsicata foi depositada no Herbário cujo 
voucher 438. 
Preparação e caracterização dos extratos 
As partes da periderme do vegetal foram 
inicialmente secas em uma estufa de ar não 
circulante, e fragmentada mecanicamente em 
um moinho de facas. Os fragmentos (120 g) 
foram submetidos a um processo de extração 
etanólica a ar quente sob refluxo, 45 min. a 45º, 
sendo este processo repetido 3 vezes. Em 
seguida, os materiais foram filtrados e os 
extratos etanólicos obtidos concentrados em 
evaporador rotatório, sob pressão reduzida, 
obtendo-se assim, aproximadamente 12,2g o 
Extrato Bruto de Etanólico da periderme S. 
paniculatum (EBEPS) (SIMÕES 2007; 
FARMACOPEIA BRASILEIRA, 2010;). 
Avaliação da atividade citotóxica 
A atividade citotóxica dos extratos foi 
avaliada através do teste de letalidade contra A. 
salina Leach, de acordo com o método proposto 
por McLaughlin e Rogers, (1998) e por Mayer 
et al. (1982). Cerca de 25mg de cistos de A. 
salina L., provenientes do Laboratório de 
Farmacognosia e Fitoquímica, sob refrigeração 
a 50C. Inicialmente, foram preparados 500mL de 
solução de sal marinho. Foram encubados em 
um recipiente que possui dois compartimentos 
separados por uma parede vazada no centro, 
contendo água do mar artificial à temperatura de 
20 a 300C. Fez-se o uso de uma bomba de 
aquário para saturar de oxigênio o meio salino, 
além do uso de uma lâmpada de 40 watts 
(lâmpada incandescente) incidindo em apenas 
um dos compartimentos para onde migrarão os 
náuplios, obtidos com a eclosão dos cistos, após 
24 horas de incubação. Os ensaios foram 
realizados em triplicata, buscando-se a 
determinação da relação dose-resposta. Houve 
um grupo controle, apenas com a solução marina 
artificial, e os grupos teste: água do mar artificial 
com EBEPS nas concentrações de 1000, 750, 
500, 300, 100, 30, 10, 3 e 1 μg/mL. A solução 
mãe foi feita com 20mg do extrato. Em cada 
tubo foi colocados dez larvas de A. salina L., 
incluindo o controle, sendo completado até o 
volume final de 1mL com solução marinha 
artificial e solução mãe a cada concentração.
10 
Após 24 horas sobre o efeito do meio e sob 
incidência de luz, foram contabilizados os 
números de mortos e vivos e calculada a 
concentração letal média (CL50), determinada 
pelo método estatístico de Probits (PARRA et 
al., 2001; MCLAUGHLIN; ROGERS, 1998) 
Prospecção fitoquímica 
Os extratos brutos foram submetidos a 
uma série de reações de caracterização 
fitoquímica para detecção da presença de 
metabólitos secundários como compostos 
fenólicos e taninos (reação de precipitação com 
cloreto férrico), caracterização de flavonoides 
(solução etanólica com limalha de magnésio e 
ácido clorídrico fumegante), determinação de 
alcaloides (reação com Mayer, Dragendorff, 
Bouchardt e Bertrand), caracterização de 
antraquinonas (reação com solução de benzeno 
e hidróxido de amônio); determinação de 
saponinas espumídicas por agitação 
(determinação do índice de espuma), e 
hemolíticas por hemólise de sangue bovino com 
anti-coagulante; identificação de ácidos 
orgânicos (reação com reativo pascová); 
açúcares redutores identificados pelo reativo de 
Fehling A e B; polissacarídeos determinados 
pelo Lugol; esteroides e triterpenoides (reação 
com solução de clorofórmio, anidrido acético e 
ácido sulfúrico); depsídios e depsidonas (reação 
com solução de éter dietílico, metanol e cloreto 
férrico); resinas ( material botânico em banho-maria, 
depois dissolvido em etanol), segundo 
metodologia descrita por Simões (2007) e pela 
Farmacopeia, (2010). 
Amostras bacterianas 
Foi utilizado no presente trabalho cepas 
de bactérias Gram positiva: Staphylococcus 
aureus (ATCC25923) e Gram negativas: 
Escherichia coli (ATCC25922) Klebsiella 
pneunomiae (ATCC13883), oriundas do 
Laboratório Central do Amapá (LACEN-AP). 
Determinação da atividade antimicrobiana 
O teste de difusão em disco é aceito pelo 
Food and Drug Administration (FDA) e 
estabelecido como padrão pelo National 
Committe for Clinical Laboratory Standards 
(NCCLS) (BARRY; THORNSBERRY, 1991). 
O teste de difusão em disco sugerido por 
Voravunthikunchai et al. (2004), porém com 
algumas alterações. A metodologia consiste em 
determinar de forma qualitativa dos extratos 
etanólicos e aquosos de plantas medicinais que 
produziam zonas de inibição utilizando o 
método de difusão em ágar em colocar os discos 
sobre o meio de cultura sólido, 1 μL de cada 
cultura de bactérias foi colocado em Mueller 
Hinton Agar (MHA), previamente inoculado em 
placas de Petri de carga microbiana 108 UFC 
(Unidade Formadora de Colônia)/mL para 
bactérias, (CHATTOPADHYAY et al., 2002; 
KARAMAN et al., 2003). A disposição dos 
discos deve ser tal que sua distância até a lateral 
da placa seja maior que 15 mm e de modo a não 
sobrepor as zonas de inibição. O pH do meio de 
cultura deve estar entre 7,2 e 7,4, e a 
profundidade recomendada é de 
aproximadamente 4 mm (BARRY; 
THORNSBERRY, 1991). Os discos de papel de 
filtro de 6 mm de diâmetro foram embebidos por 
três concentrações: 25, 50 e 100mg/mL do 
extrato bruto etanólico da periderme de S. 
paniculatum em solução metanólica. Utilizou-se 
como controle positivo: Cefotaxina (CTX30), 
Ceftazidina (CAZ30), Ceftriaxona (CRO30), 
Norfloxacina (NOR10), e Levofloxacina 
(LVX05). Após incubação por 24 h a 35 ºC 
observou-se as zonas de inibição. 
RESULTADOS 
A triagem fitoquímica preliminar do 
extrato etanólico da periderme de Sclerolobium 
paniculatum L. revelou a presença de compostos 
fenólicos; taninos; alcaloides; saponinas 
espumídicas e hemolíticas; ácidos orgânicos; 
açúcares redutores; antraquinonas onde os 
resultados encontra-se na Tabela.1.
11 
Tabela 1. Resultados das análises fitoquímicas 
Metabólicos EBEPS 
Ácidos orgânicos +++ 
Áçúcares redutores +++ 
Alcalóides +++ 
Antraquinonas ++ 
Bases Quarternária 0 
Cumarina 0 
Depsídeos/Depsidonas + 
Fenóis +++ 
Flavonoides S 
Esteroides - 
Heterosídeo Cardíaco 0 
Polissacarídeos - 
Resinas - 
Saponina Espumídicas +++ 
Saponinas Hemolíticas +++ 
Triterpernoides - 
Taninos +++ 
PARÂMETROS: ausente (-), não realizado (0), fraco (+), 
médio (++), forte (+++), Suspeita (S). 
Para o estudo antimicrobiano, verificou-se 
atividade contra todas as cepas, considerando 
as seguintes concentrações inibitórias a partir 
de: 50mg/mL para S. aureus; 25 mg/mL para E. 
coli e 100 mg/mL para K. pneunomiae. 
Quanto o teste de letalidade frente à A. 
salina L., verificou-se nenhum óbito dos 
crustáceos nas diferentes concentrações das 
frações testadas, como também os do controle, 
sugerindo nenhuma toxidade para a 
concentração menor/igual a 1000 μg/mL. Não se 
obteve a CL50. 
DISCUSSÃO 
A ausência de citoxicidade do extrato no 
teste de letalidade contra Artemia salina é um 
indicador de que a planta pode ser bem tolerada 
frente ao sistema biológico. Entretanto, estudos 
mais detalhados para a avaliação da toxicidade 
dos extratos bioativos, empregando-se outros 
modelos (in vitro e in vivo), se fazem 
necessários. 
Quanto ao estudo fitoquímico, deve-se 
fazer algumas observações. Há suspeita da 
existência de flavonoides no vegetal, por isso, 
faz-se necessário o uso da cromatografia. Antes 
da identificação de esteroides/triterpenoides, 
fez-se primeiro a determinação de resinas, como 
este último foi ausente, foi sugerido à ausência 
também dos mesmos na forma livre, pois a 
composição molecular das resinas é baseada 
principalmente em terpenóides e compostos 
fenólicos (LANGENHEIM, 1990), hipótese 
confirmada com o teste, apesar de presentes na 
constituição das saponinas (SIMÕES, 2007). 
Devido à presença forte de fenóis, suspeitou-se 
da presença de antraquinona, pois ela pode ser 
considerada produto da oxidação de fenóis 
(CARVALHO; ALMANÇA 2003). 
As drogas antimicrobianas podem 
funcionar de cinco modos: inibição da síntese de 
parede celular, inibição da síntese de proteínas, 
inibição da síntese de ácidos nucleicos, dano à 
membrana plasmática ou inibição da síntese de 
metabólicos essenciais (Tortora et al., 2012). Os 
agentes antimicrobianos naturais são uma 
alternativa atrativa para oferecer produtos 
saudáveis e seguros. 
A atividade antimicrobiana do vegetal 
está relacionada a presença de fenóis: por 
causarem lesão nas membranas plasmáticas 
lipídicas, o que resulta no vazamento do 
conteúdo celular; taninos: pela inibição de 
enzimas; saponinas: pela ação sobre as 
membranas celulares, alterando a 
permeabilidade ou a destruição da mesma 
(Tortora et al, 2012; Simões 2007). Este último, 
também pode estar relacionado à atividade da 
resposta imune, e no desenvolvimento de 
vacinas, ambas as propriedades, 
imunoadjuvante e hemolítica, exercem 
atividades antagônicas, contudo, as informações 
sobre as relações estrutura-atividade são 
relativamente escassas e, às vezes, conflitantes 
(Kaiser, 2009). 
Os alcalóides, que possuem ampla gama 
atividades biológicas investigadas, como 
amebicida, anticolinérgico, anti-hipertensivos e 
entre outros. Ácidos orgânicos podem estar 
relacinados a população microbita no trato 
digestivo de animais, favorencendo na engorda 
do animal (Freitas, 2006). A boa produção de 
álcool da madeira deste vegetal se deve pela 
presença de açúcares redutores (Paula, 1980). 
Devido a grande quantidade de 
metabólicos secundários presentes no 
Sclerolobium paniculatum V., faz-se necessário 
fazer uma investigação quantitativa para se 
determinar os metabólicos mais predominantes 
no vegetal, isola-los e submete-los a estudos in 
vivo e in vitro, proporcionando a esta espécie 
uma fonte promissora na busca de novos 
fármacos.
12 
AGRADECIMENTOS 
Programa de Educação Tutorial (PET), 
Universidade Federal do Amapá (UNIFAP), 
Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária 
(EMBRAPA). 
REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS 
BARBOSA-FILHO, J. M.; et al. Natural 
products with antileprotic activity. Rev Bras 
Farmacogn. v. 17, p. 141-148, 2007. 
BARRY, A. L; THORNSBERRY C. 
Susceptibility tests: Diffusion Test Procedures. 
In: BALOWS A., et al. Manual of clinical 
microbiology. 5. ed. Washington, DC: 
American Society for Microbiology, p. 1117- 
1125, 1991. 
CARVALHO J. C. T.; ALMANÇA C. C. J. 
Formulário de Prescrição Fitoterápica. São 
Paulo: Editora Atheneu, 2003. 
CHATTOTADHYAY, D.; et al. Antimicrobial 
and anti-infl ammatory activity of folklore: 
Mallotus peltatus leaf extract. J. 
Ethnopharmacol v. 82, p. 229-237, 2002. 
FARMACOPÉIA BRASILEIRA 2010 5.ed. 
Brasília: ANVISA. 
FREITAS, L. S. Ácidos orgânicos na 
alimentação de leitões desmamados. R. Bras. 
Zootec. v. 35, p. 1711-1719, 2006. 
KAISER S.; PAVEI. C.; ORTEGA, G. G. 
Estudo da relação estrutura-atividade de 
saponinas hemolíticas e/ou imunoadjuvantes 
mediante uso de análise multivariada. Revista 
Brasileira de Farmacognosia v. 20, p. 300-309, 
2010. 
KARAMAN, İ; et al. Antimicrobial activity of 
aqueous and methanol extracts of Juniperus 
oxycedrus L. J Ethnopharmacol 
v. 85, p. 231-235, 2003. 
LANGENHEIM, J. H. Plant resins. American 
Scientist, v. 78, p. 16,-24, 1990. 
LEITÃO, S. G,.; et al. Screening of Central and 
South American plant extracts for 
antimycobacterial activity by the Alamar Blue 
test. Rev Bras Farmacogn 16: 6-11, 2006. 
LORENZI, H.; SOUZA, V. C. Botânica 
sistemática. Nova Odessa: Instituto Plantarum, 
2ª edição, 2008, 383p. 
MCLAUGHLIN, J. L.; ROGERS, L. L. 
ANDERSON, J. E. The use of biological assays 
to evaluate botanicals. Drug Inf J v. 32, p. 513- 
524, 1998. 
MEYER, B. N.; et al. Brine Shrimp: a 
convenient general bioassay for active plant 
constituents. Planta Med v. 45, p. 31-34, 1982. 
OLIVEIRA, F. C. S.; BARROS, R. F. M.; 
MOITA NETO, J. M. Plantas medicinais 
utilizadas em comunidades rurais de Oeiras, 
semiárido piauiense. Rev. Bras. Pl. Med., 
Botucatu, v. 12, p. 282-301, 2010. 
PAULA, J. E. Madeiras que produzem álcool, 
coque e carvão. CNP - Atualidades, Brasília-DF, 
v. 72, p. 31-45, 1980. 
PENNA C.; et al. Antimicrobial activity of 
Argentine plants used in the treatment of 
infectious diseases. Isolation of active 
compounds from Sebastiania brasiliensis. J 
Ethnopharmacol v. 77, p. 37-40, 2001. 
RIZZINI, C. T. Contribuição ao conhecimento 
das floras nordestinas. Rodriguésia, Rio de 
Janeiro, v. 28, p. 137-193, 1976. 
SIMÕES, C. M. O.; et al. Farmacognosia: da 
planta ao medicamento. Santa Catarina: Editora 
UFSC. 2007 
TORTORA, G.J.; FUNKE, B. R.; CASE, C. L. 
Microbiologia. Porto Alegre-RS: Editora 
Artmed, 2012. 
VORAVUTHIKUNCHAI, S; et al. Effective 
medicinal plants against enterohaemorrhagic 
Escherichia coli. J Ethnopharmacol v. 94, p. 49- 
54, 2004.
13 
______________________________________ 
1-Graduando do Curso de Farmácia. 
Laboratório de Farmacognosia e Fitoquímica. 
Departamento de Ciências da Saúde. Curso de 
Farmácia. Universidade Federal do Amapá – 
Rodovia Juscelino Kubistchek, KM-02. Jardim 
Marco Zero – 68.902-280 – Macapá-AP, Brasil. 
2-Doutora em Química de Produtos Naturais. 
Laboratório de Farmacognosia e Fitoquímica. 
Departamento de Ciências da Saúde. Curso de 
Farmácia. Universidade Federal do Amapá – 
Rodovia Juscelino Kubistchek, KM-02. Jardim 
Marco Zero – 68.902-280 – Macapá-AP, Brasil.

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Estudo fitoquímico e atividade de S. paniculatum

  • 1. REVISTA DE BIOLOGIA E CIÊNCIAS DA TERRA ISSN 1519-5228 9 Volume 15 - Número 2 - 2º Semestre 2015 ESTUDO FITOQUÍMICO, ATIVIDADE MICROBIOLÓGICA E CITOTÓXICA EM Artemia salina DA PERIDERME DE Sclerolobium paniculatum VOGEL (CAESALPINIOIDEAE) Gian Braian Silva Furtado1; Sheylla Susan Moreira da Silva de Almeida2 RESUMO Esta pesquisa objetivou avaliar a citotoxidade, atividade antibacteriana e composição farmacognóstica dos extratos etanólicos da periderme de Sclerolobium paniculatum. Realizou-se a triagem fitoquímica, foram realizadas reações testes, dos quais oito foram positivos: ácidos orgânicos, fenóis/taninos, açúcares redutores, alcaloides, saponinas espumídicas, saponinas hemolíticas, depsídeos/depsidonas e antraquinonas; e os negativos para: flavonoides, resinas, esteroides/triterpenoides e polissacarídeos. O ensaio de letalidade com Artemia salina L. foi realizado e apresentou nenhuma morte, sugerindo nenhuma toxidade. Para o estudo antimicrobiano por difusão em discos, foram utilizadas cepas de bactérias Gram positiva: Staphylococcus aureus (ATCC25923) e Gram negativas: Escherichia coli (ATCC25922) Klebsiella pneunomiae (ATCC13883), no qual foram submetidas aos antibióticos e ao extrato diluído, nas seguintes concentrações: 25, 50 e 100mg/mL. A espécie S. paniculatum apresentou atividade contra em todas as cepas, considerando as seguintes concentrações inibitórias a partir de: 50mg/mL para S. aureus; 25 mg/mL para E. coli e 100 mg/mL para K. pneunomiae que pode estar relacionada pela presença de fenóis, taninos e alcaloides, devido a ação antimicrobiana. Palavras-chave: Fitoquímica, atividade microbiológica, ação citotóxica, periderme, Sclerolobium paniculatum. PHYTOCHEMICAL STUDY, CYTOTOXIC ACTIVITY AND MICROBIOLOGICAL IN Artemia salina PERIDERM OF THE Sclerolobium paniculatum VOGEL (CAESALPINIOIDEAE) ABSTRACT This research aimed to evaluate the cytotoxicity, antibacterial activity and pharmacognostic composition of ethanol extracts of the periderm Sclerolobium paniculatum. Held the phytochemical screening, reaction tests were performed, eight of which were positive: organic acids, phenols/tannins, reducing sugars, alkaloids, sparkling saponins, haemolytic saponins, depsides/depsidones and anthraquinones; and negative to: flavonoids, resins, steroids/triterpenoids and polysaccharides. The lethality assay with Artemia salina L. was performed and showed no death, suggesting no toxicity. To study antimicrobial for the disc diffusion, strains of bacteria were used Gram positive: Staphylococcus aureus (ATCC25923) e Gram negative: Escherichia coli (ATCC25922) Klebsiella pneunomiae (ATCC13883), in which underwent antibiotic and the extract diluted, the following concentrations: 50 mg / mL for S. aureus; 25 mg/mL for E. coli and 100 mg/mL for K. pneunomiae which may be related to the presence of phenols, tannins and alkaloids, due to antimicrobial action. Keywords: Phytochemical, microbiological activity, cytotoxic activity, periderm, Sclerolobium paniculatum.
  • 2. 9 INTRODUÇÃO Sclerolobium paniculatum Vogel pertence à família Leguminosae- Caesalpinioideae (LORENZI, 2008), perenifólia com 8 a 30 m de alturade altura na idade adulta (RIZZINI, 1976;). Conhecida popularmente como taxi-branco-da-terra-firme, madeira de boa reputação para produção de lenha e de carvão vegetal, sendo também recomendada para produção de álcool e coque (PAULA, 1980). O uso medicinal pela decocção de sua casca é relatado pela população para tratamento de feridas (OLIVEIRA, 2006). Por isso, fez-se uma pesquisa preliminar da casca deste vegetal, determinando de forma qualitativa os metabólicos secundários, por meio de uma triagem fitoquímica, que é de extrema importância para descoberta de novos agentes com atividade farmacológica. A análise citotóxica com Artemia salina, método experimental alternativo, simples e barato, para a determinação da atividade biológica de compostos ou extratos naturais, toxinas contaminantes do meio ambiente (MAYER et al., 1982); e como também atividade antimicrobiana do extrato bruto etanólico da periderme do Sclerolobium paniculatum Vogel, faz-se necessário, devido ao surgimento de novos agentes antimicrobianos se faz necessária devido ao surgimento de microrganismos resistentes e de infecções oportunistas fatais, associadas a AIDS, quimioterapia antineoplásica e transplantes (PENNA et al., 2001). Desta forma, tais pesquisas contribuem, significativamente, no desenvolvimento do campo da saúde em nível mundial, encontrando substâncias mais eficazes e menos tóxicas na corrida contra a resistência e o surgimento de microrganismos patogênicos (LEITÃO et al., 2006; BARBOSA-FILHO et al., 2007). MATERIAL E MÉTODOS Coleta e identificação do material vegetal Foram coletadas cascas de S. paniculatum, encontradas no município de Pedra Branca do Amapari-AP, setembro de 2011. A planta foi identificada pelo Profa. Dra. Wegliane Campelo da Silva Aparício, do Laboratório de Botânica da Universidade Federal do Estado do Amapá (UNIFAP), onde uma exsicata foi depositada no Herbário cujo voucher 438. Preparação e caracterização dos extratos As partes da periderme do vegetal foram inicialmente secas em uma estufa de ar não circulante, e fragmentada mecanicamente em um moinho de facas. Os fragmentos (120 g) foram submetidos a um processo de extração etanólica a ar quente sob refluxo, 45 min. a 45º, sendo este processo repetido 3 vezes. Em seguida, os materiais foram filtrados e os extratos etanólicos obtidos concentrados em evaporador rotatório, sob pressão reduzida, obtendo-se assim, aproximadamente 12,2g o Extrato Bruto de Etanólico da periderme S. paniculatum (EBEPS) (SIMÕES 2007; FARMACOPEIA BRASILEIRA, 2010;). Avaliação da atividade citotóxica A atividade citotóxica dos extratos foi avaliada através do teste de letalidade contra A. salina Leach, de acordo com o método proposto por McLaughlin e Rogers, (1998) e por Mayer et al. (1982). Cerca de 25mg de cistos de A. salina L., provenientes do Laboratório de Farmacognosia e Fitoquímica, sob refrigeração a 50C. Inicialmente, foram preparados 500mL de solução de sal marinho. Foram encubados em um recipiente que possui dois compartimentos separados por uma parede vazada no centro, contendo água do mar artificial à temperatura de 20 a 300C. Fez-se o uso de uma bomba de aquário para saturar de oxigênio o meio salino, além do uso de uma lâmpada de 40 watts (lâmpada incandescente) incidindo em apenas um dos compartimentos para onde migrarão os náuplios, obtidos com a eclosão dos cistos, após 24 horas de incubação. Os ensaios foram realizados em triplicata, buscando-se a determinação da relação dose-resposta. Houve um grupo controle, apenas com a solução marina artificial, e os grupos teste: água do mar artificial com EBEPS nas concentrações de 1000, 750, 500, 300, 100, 30, 10, 3 e 1 μg/mL. A solução mãe foi feita com 20mg do extrato. Em cada tubo foi colocados dez larvas de A. salina L., incluindo o controle, sendo completado até o volume final de 1mL com solução marinha artificial e solução mãe a cada concentração.
  • 3. 10 Após 24 horas sobre o efeito do meio e sob incidência de luz, foram contabilizados os números de mortos e vivos e calculada a concentração letal média (CL50), determinada pelo método estatístico de Probits (PARRA et al., 2001; MCLAUGHLIN; ROGERS, 1998) Prospecção fitoquímica Os extratos brutos foram submetidos a uma série de reações de caracterização fitoquímica para detecção da presença de metabólitos secundários como compostos fenólicos e taninos (reação de precipitação com cloreto férrico), caracterização de flavonoides (solução etanólica com limalha de magnésio e ácido clorídrico fumegante), determinação de alcaloides (reação com Mayer, Dragendorff, Bouchardt e Bertrand), caracterização de antraquinonas (reação com solução de benzeno e hidróxido de amônio); determinação de saponinas espumídicas por agitação (determinação do índice de espuma), e hemolíticas por hemólise de sangue bovino com anti-coagulante; identificação de ácidos orgânicos (reação com reativo pascová); açúcares redutores identificados pelo reativo de Fehling A e B; polissacarídeos determinados pelo Lugol; esteroides e triterpenoides (reação com solução de clorofórmio, anidrido acético e ácido sulfúrico); depsídios e depsidonas (reação com solução de éter dietílico, metanol e cloreto férrico); resinas ( material botânico em banho-maria, depois dissolvido em etanol), segundo metodologia descrita por Simões (2007) e pela Farmacopeia, (2010). Amostras bacterianas Foi utilizado no presente trabalho cepas de bactérias Gram positiva: Staphylococcus aureus (ATCC25923) e Gram negativas: Escherichia coli (ATCC25922) Klebsiella pneunomiae (ATCC13883), oriundas do Laboratório Central do Amapá (LACEN-AP). Determinação da atividade antimicrobiana O teste de difusão em disco é aceito pelo Food and Drug Administration (FDA) e estabelecido como padrão pelo National Committe for Clinical Laboratory Standards (NCCLS) (BARRY; THORNSBERRY, 1991). O teste de difusão em disco sugerido por Voravunthikunchai et al. (2004), porém com algumas alterações. A metodologia consiste em determinar de forma qualitativa dos extratos etanólicos e aquosos de plantas medicinais que produziam zonas de inibição utilizando o método de difusão em ágar em colocar os discos sobre o meio de cultura sólido, 1 μL de cada cultura de bactérias foi colocado em Mueller Hinton Agar (MHA), previamente inoculado em placas de Petri de carga microbiana 108 UFC (Unidade Formadora de Colônia)/mL para bactérias, (CHATTOPADHYAY et al., 2002; KARAMAN et al., 2003). A disposição dos discos deve ser tal que sua distância até a lateral da placa seja maior que 15 mm e de modo a não sobrepor as zonas de inibição. O pH do meio de cultura deve estar entre 7,2 e 7,4, e a profundidade recomendada é de aproximadamente 4 mm (BARRY; THORNSBERRY, 1991). Os discos de papel de filtro de 6 mm de diâmetro foram embebidos por três concentrações: 25, 50 e 100mg/mL do extrato bruto etanólico da periderme de S. paniculatum em solução metanólica. Utilizou-se como controle positivo: Cefotaxina (CTX30), Ceftazidina (CAZ30), Ceftriaxona (CRO30), Norfloxacina (NOR10), e Levofloxacina (LVX05). Após incubação por 24 h a 35 ºC observou-se as zonas de inibição. RESULTADOS A triagem fitoquímica preliminar do extrato etanólico da periderme de Sclerolobium paniculatum L. revelou a presença de compostos fenólicos; taninos; alcaloides; saponinas espumídicas e hemolíticas; ácidos orgânicos; açúcares redutores; antraquinonas onde os resultados encontra-se na Tabela.1.
  • 4. 11 Tabela 1. Resultados das análises fitoquímicas Metabólicos EBEPS Ácidos orgânicos +++ Áçúcares redutores +++ Alcalóides +++ Antraquinonas ++ Bases Quarternária 0 Cumarina 0 Depsídeos/Depsidonas + Fenóis +++ Flavonoides S Esteroides - Heterosídeo Cardíaco 0 Polissacarídeos - Resinas - Saponina Espumídicas +++ Saponinas Hemolíticas +++ Triterpernoides - Taninos +++ PARÂMETROS: ausente (-), não realizado (0), fraco (+), médio (++), forte (+++), Suspeita (S). Para o estudo antimicrobiano, verificou-se atividade contra todas as cepas, considerando as seguintes concentrações inibitórias a partir de: 50mg/mL para S. aureus; 25 mg/mL para E. coli e 100 mg/mL para K. pneunomiae. Quanto o teste de letalidade frente à A. salina L., verificou-se nenhum óbito dos crustáceos nas diferentes concentrações das frações testadas, como também os do controle, sugerindo nenhuma toxidade para a concentração menor/igual a 1000 μg/mL. Não se obteve a CL50. DISCUSSÃO A ausência de citoxicidade do extrato no teste de letalidade contra Artemia salina é um indicador de que a planta pode ser bem tolerada frente ao sistema biológico. Entretanto, estudos mais detalhados para a avaliação da toxicidade dos extratos bioativos, empregando-se outros modelos (in vitro e in vivo), se fazem necessários. Quanto ao estudo fitoquímico, deve-se fazer algumas observações. Há suspeita da existência de flavonoides no vegetal, por isso, faz-se necessário o uso da cromatografia. Antes da identificação de esteroides/triterpenoides, fez-se primeiro a determinação de resinas, como este último foi ausente, foi sugerido à ausência também dos mesmos na forma livre, pois a composição molecular das resinas é baseada principalmente em terpenóides e compostos fenólicos (LANGENHEIM, 1990), hipótese confirmada com o teste, apesar de presentes na constituição das saponinas (SIMÕES, 2007). Devido à presença forte de fenóis, suspeitou-se da presença de antraquinona, pois ela pode ser considerada produto da oxidação de fenóis (CARVALHO; ALMANÇA 2003). As drogas antimicrobianas podem funcionar de cinco modos: inibição da síntese de parede celular, inibição da síntese de proteínas, inibição da síntese de ácidos nucleicos, dano à membrana plasmática ou inibição da síntese de metabólicos essenciais (Tortora et al., 2012). Os agentes antimicrobianos naturais são uma alternativa atrativa para oferecer produtos saudáveis e seguros. A atividade antimicrobiana do vegetal está relacionada a presença de fenóis: por causarem lesão nas membranas plasmáticas lipídicas, o que resulta no vazamento do conteúdo celular; taninos: pela inibição de enzimas; saponinas: pela ação sobre as membranas celulares, alterando a permeabilidade ou a destruição da mesma (Tortora et al, 2012; Simões 2007). Este último, também pode estar relacionado à atividade da resposta imune, e no desenvolvimento de vacinas, ambas as propriedades, imunoadjuvante e hemolítica, exercem atividades antagônicas, contudo, as informações sobre as relações estrutura-atividade são relativamente escassas e, às vezes, conflitantes (Kaiser, 2009). Os alcalóides, que possuem ampla gama atividades biológicas investigadas, como amebicida, anticolinérgico, anti-hipertensivos e entre outros. Ácidos orgânicos podem estar relacinados a população microbita no trato digestivo de animais, favorencendo na engorda do animal (Freitas, 2006). A boa produção de álcool da madeira deste vegetal se deve pela presença de açúcares redutores (Paula, 1980). Devido a grande quantidade de metabólicos secundários presentes no Sclerolobium paniculatum V., faz-se necessário fazer uma investigação quantitativa para se determinar os metabólicos mais predominantes no vegetal, isola-los e submete-los a estudos in vivo e in vitro, proporcionando a esta espécie uma fonte promissora na busca de novos fármacos.
  • 5. 12 AGRADECIMENTOS Programa de Educação Tutorial (PET), Universidade Federal do Amapá (UNIFAP), Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária (EMBRAPA). REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS BARBOSA-FILHO, J. M.; et al. Natural products with antileprotic activity. Rev Bras Farmacogn. v. 17, p. 141-148, 2007. BARRY, A. L; THORNSBERRY C. Susceptibility tests: Diffusion Test Procedures. In: BALOWS A., et al. Manual of clinical microbiology. 5. ed. Washington, DC: American Society for Microbiology, p. 1117- 1125, 1991. CARVALHO J. C. T.; ALMANÇA C. C. J. Formulário de Prescrição Fitoterápica. São Paulo: Editora Atheneu, 2003. CHATTOTADHYAY, D.; et al. Antimicrobial and anti-infl ammatory activity of folklore: Mallotus peltatus leaf extract. J. Ethnopharmacol v. 82, p. 229-237, 2002. FARMACOPÉIA BRASILEIRA 2010 5.ed. Brasília: ANVISA. FREITAS, L. S. Ácidos orgânicos na alimentação de leitões desmamados. R. Bras. Zootec. v. 35, p. 1711-1719, 2006. KAISER S.; PAVEI. C.; ORTEGA, G. G. Estudo da relação estrutura-atividade de saponinas hemolíticas e/ou imunoadjuvantes mediante uso de análise multivariada. Revista Brasileira de Farmacognosia v. 20, p. 300-309, 2010. KARAMAN, İ; et al. Antimicrobial activity of aqueous and methanol extracts of Juniperus oxycedrus L. J Ethnopharmacol v. 85, p. 231-235, 2003. LANGENHEIM, J. H. Plant resins. American Scientist, v. 78, p. 16,-24, 1990. LEITÃO, S. G,.; et al. Screening of Central and South American plant extracts for antimycobacterial activity by the Alamar Blue test. Rev Bras Farmacogn 16: 6-11, 2006. LORENZI, H.; SOUZA, V. C. Botânica sistemática. Nova Odessa: Instituto Plantarum, 2ª edição, 2008, 383p. MCLAUGHLIN, J. L.; ROGERS, L. L. ANDERSON, J. E. The use of biological assays to evaluate botanicals. Drug Inf J v. 32, p. 513- 524, 1998. MEYER, B. N.; et al. Brine Shrimp: a convenient general bioassay for active plant constituents. Planta Med v. 45, p. 31-34, 1982. OLIVEIRA, F. C. S.; BARROS, R. F. M.; MOITA NETO, J. M. Plantas medicinais utilizadas em comunidades rurais de Oeiras, semiárido piauiense. Rev. Bras. Pl. Med., Botucatu, v. 12, p. 282-301, 2010. PAULA, J. E. Madeiras que produzem álcool, coque e carvão. CNP - Atualidades, Brasília-DF, v. 72, p. 31-45, 1980. PENNA C.; et al. Antimicrobial activity of Argentine plants used in the treatment of infectious diseases. Isolation of active compounds from Sebastiania brasiliensis. J Ethnopharmacol v. 77, p. 37-40, 2001. RIZZINI, C. T. Contribuição ao conhecimento das floras nordestinas. Rodriguésia, Rio de Janeiro, v. 28, p. 137-193, 1976. SIMÕES, C. M. O.; et al. Farmacognosia: da planta ao medicamento. Santa Catarina: Editora UFSC. 2007 TORTORA, G.J.; FUNKE, B. R.; CASE, C. L. Microbiologia. Porto Alegre-RS: Editora Artmed, 2012. VORAVUTHIKUNCHAI, S; et al. Effective medicinal plants against enterohaemorrhagic Escherichia coli. J Ethnopharmacol v. 94, p. 49- 54, 2004.
  • 6. 13 ______________________________________ 1-Graduando do Curso de Farmácia. Laboratório de Farmacognosia e Fitoquímica. Departamento de Ciências da Saúde. Curso de Farmácia. Universidade Federal do Amapá – Rodovia Juscelino Kubistchek, KM-02. Jardim Marco Zero – 68.902-280 – Macapá-AP, Brasil. 2-Doutora em Química de Produtos Naturais. Laboratório de Farmacognosia e Fitoquímica. Departamento de Ciências da Saúde. Curso de Farmácia. Universidade Federal do Amapá – Rodovia Juscelino Kubistchek, KM-02. Jardim Marco Zero – 68.902-280 – Macapá-AP, Brasil.