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Carregado porAlexandre H.P. Ferreira
Seminário 10: Cabelo e Pelos: um enfoque molecular
O documento aborda a estrutura, fisiologia e bioquímica da pele e do cabelo no contexto da ciência cosmética, destacando aspectos como a morfologia do pelo e os diferentes tipos celulares envolvidos em sua formação. São discutidos também os danos que afetam a formação do cabelo e as técnicas de avaliação molecular para diagnósticos e tratamentos. Além disso, aborda a entrega de moléculas e novas drogas através do folículo piloso.
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- 1. Estrutura, fisiologia ebioquímica da pele aplicadas à ciência cosmética. Alexandre Ferreira Cabelo e pelos: um enfoque molecular
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- 3. Matriz do bulbo Piloso OFolículos Piloso Dutoda Glândula Sebácea Músculo Eretordo pelo Bojo do folículo piloso Papila Dermal Unidade Pigmentar Queratinócitos da matriz
- 4. Camadas do Folículo Bainha Internada raiz Bainhade Tecido Conectivo Bainha Externa da raiz Camada de Henle Camada de Huxley Cutícula
- 5. O Fio deCabelo Córtex Medula Queratina Microfibrila Macrofibrila Matriz Dímero Tipo I/II Célula Cutícula Epicutícula Camada A Endocutícula Exocutícula Complexo de membrana celular
- 6. Composição Componente % (pp) Proteína65 a 95% Lipídeo 1 a 9% Melanina 2 a 3% Água Até 35%
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- 8. Fatores Determinantes da Morfologiado pelo Tamanho da Papila Dérmica Diâmetro do Fibra Taxa de divisão celular Crescimento Linear Duração do Fase Anágena Tamanho Máximo do Fio
- 9. Foliculomorfogênesis INDUÇÃO Epidermal Dermal Comunicação Células tronco Mesodermais Condensado Dermal Célulastronco epidermais Placode Dente Folículo Piloso Unha Família Wnt/wingless Família hedgehog TGF-b/BMP FGF TNF Bainha Tecido Conjuntivo Papila Dérmica Folículo piloso Glândula Sebácea Glândula Sudorípara apócrina
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- 11. Nichos de CélulasTronco Bojo Piloso Papila Dérmica - Células tronco melanocíticas - Células tronco epidermais - Células tronco mesodermais
- 12. Anágena II IV VI Ciclo Telógena Papila Dermal Bojo Piloso Célulasde Amplificação Transitória Catágena • 2 – 3 anos • 85% • ~ 3 mese • 10 – 15% • 2 – 3 semanas
- 13. Marcadores Tipos celulares fibronectin Sca-1 nexin versican Wnt5a Skinprecursors vimentin Neurosferas embrionárias do CNS Dermo-1 SHOX-2 Sox9 Células tronco da crista neural p75NTR snail twist slug Pax3 periferina dopamine beta-hydroxylase tyrosin hydroxilase NCAM bIII-tubulina Neurofilamento M (NFM) CNPase S100B Sox10 froskolin p75NTR glialfibrillary acidic protein (GFAP) Myelin basic protein (MBP) P0 peripheral myelin protein Células de Schwann Nerurônios periféricos queratina-18 queratina-15 queratina-5 Derme embrionária região crâniofacial SMA Células de Merkel Cel. tronco do bojo do folículo piloso Cel. Epiermais Basais Músculo liso trp1 c-kit dct Melanoblasto /Melanócito nestin queratina-15 Keratinócitos
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- 15. Isolamento de Células Tronco DimensõesCelulares Incorporação de Marcadores • Separação usando Citometria de Fluxo
- 16. Isolamento de Células Tronco •Separação por métodos de cultura diferenciais Digestão com tripsina Cultivo em meio apropriado
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- 18. Avaliação de Danos •Técnica para Avaliar constituição molecular do cabelo • Compreender – Doenças que afetam formação do fio – Mudanças que ocorrem em função de fontes de dano – Alvos moleculares para tratamentos preventivos ou corretivos
- 19. Fonte de Danos UV ProteínasLipídeosMelanina Agentes Descolorantes ROS Oxidação Descoloração Peroxilipídeos Triptofano Cisteína Ácido cisteico Quebra pontes disulfeto Foto- Degradação Detergentes Remoção de Grânulos Remoção DANOS
- 20. Fonte de Danos ROS Espectroscopiade Aniquilação de Pósitrons (PALS) Alterações estruturais Ressonância Paramagnética Eletrônica (EPR)Melanina Peroxido lipídeos Dosagem Bioquímica de Malondialdeído (MDA) com ácido tiobarbitúrico (TBA) Proteínas Avaliação da Proteína Total Eletroforese 2D Proteômica Espectrofotometria Visível Dosagem Bioquímica (Lowry/Bradford) Espectrometria 275nm Triptofano Fluorimetria (ex. 290 nm / em. 345 nm)
- 21. Análise Proteômica Cabelo Eluição das proteínasem água Quantificação de Proteína Total Solúvel Identificação: Espcetrometria de Massa MALDI-TOF Separação Proteínas Eletroforese 2D Separação Cromatográfica Proteínas solúveis Proteínas Remanescentes
- 22. Perda de ProteínaTotal British Association of Dermatologists 2012 166 (Suppl. 2), pp 27–32 • Dano leva a uma maior perda de proteína • Técnica sensível • Detecção do dano em estados iniciais Proteína Total 0,4% 0,1%
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- 24. Marcadores de Dano ProteínaTipo Origem Queratina 31 Ácida Córtex Queratina 33A Ácida Córtex Queratina 33B Ácida Córtex Queratina 81 Básica Córtex Queratina 83 Básica Córtex Queratina 85 Básica Córtex/Cutícula Queratina 86 Básica Córtex
- 25. Análise da Proteínada proteína Remanescente Cabelo Virgem Cabelo Descolorido
- 26. Barreira a Absorção Epidermal Transição Tricolemal Padrãode diferenciação Eficaz Barreira cutânea Prejudicada Inexistente Absorção Baixa Crescente Alta Rotadeentregade moléculas
- 27. folicular Entrega Folicular DNA RNA Fatores decrescimento (proteínas/peptídeos) Barreira Novas Drogas Interfolicular 2% área superficial Imunização Modulação crescimento Pigmentação Interferência em vias de sinalização
- 28. Entrega Folicular Nanopartículas (10 a0,1 µm) Nanopartículas Biodegradabilidade Estabilidade Entrega controlada Biodisponibilidade Orientação Retenção 3–10 µm 0,75–1,5 µm < 1µm > 10 µm
- 29. KnowWhy treinamentos especializados AlexandreHP Ferreira, Ph.D. www.linkedin.com/company/knowwhy alexhpf@yahoo.com.br Campinas - SP www.facebook.com/KnowWhy.br twitter.com/knowwhy_br br.linkedin.com/in/alexandrehpferreira/