Micorrizas

Micorrizas:
Aspetos
Da Simbiose

Roteiro
1. Introdução
2. A simbiose micorrízica
3. Tipos de micorrizas
4. Aspectos evolutivos
5. Tipos de fungos ectomicorrízicos
6. Tipos de simbiontes vegetais
7. Efeito das micorrizas e inoculação
8. Considerações Finais

A BIOTA DO SOLO
PARTÍCULAS SOZINHAS NÃO FAZEM UM BOM SOLO...
Em cada kg de solo fértil tem-se em torno de:
• 500 bilhões de bactérias
• 10 bilhões de actinomicetos
• 1 bilhão de fungos
• 0,5 bilhão de invertebradosmicroscópicos
• 1000 km de hifas e vários de raízes
• Numerosos vertebrados macroscópicos
• Não são estáticos e sim muito dinâmicos
• São bons aliados e uma grande riqueza natural
• São ignorados devido ao caráter microscópico
• São mais conhecidos pelos efeitos deletérios
Os microrganismos garantem a qualidade do solo
ALTA DIVERSIDADE
Os microrganismos

Interações tróficas no solo
Raízes Restos Exsudatos
Plantas
Nematóides Fungos Bactérias
NematóidesColêmbolas Ácaros Protozoários Oligoquetas
Colêmbolas
predadoras
Nematóides
predadores
Insetos
predadores
Ácaros
predadores
Mamíferos
e pássaros

RIZOSFERA: PARAÍSO DOS MICRORGANISMOS

 A. B. Frank (1885)
 95% das espécies de plantas pertencem a gêneros que
caracteristicamente formam micorrizas
 Benefícios da associação: aumento da produtividade
(aumento da área de absorção pelas plantas) ou da habilidade
de sobrevivência (fitness) dos simbiontes
2. A simbiose micorrízica

Diversidade morfológica de micorrizas
Orquidóide
Ecto
(Fagaceae)
Ecto
(Pinaceae)
Micorrizas
Arbusculares
(Glomeromycota)

 Ectomicorrizas (EM)
 Características:
 Penetração das hifas entre as células corticais das raízes formando a
rede de Hartig
 Manto de hifas que cobre as raízes colonizadas
 Hifas que se estendem no solo formando rizomorfas
 Produção de enzimas que degradam a MO

Aspectos da colonização ecto

 Ectomicorrizas (EM)
 Colonização: famílias Pinaceae, Fagaceae, Betulaceae, Myrtaceae, etc.
 Fungos: Basidiomicetos (mais de 6000 espécies) e Ascomicetos
 Alguns fungos de especificidade enquanto outros não
 Encontradas principalmente em essências florestais

 Micorrizas arbusculares (MA)
 Crescimento inter e intracelular (invaginação das paredes)
 Arbúsculos formados no interior das células do hospedeiro vegetal
 Produção de vesículas (armazenamento e propágulo reprodutivo),
células auxiliares, e esporos assexuados

 Micorrizas arbusculares (MA)
 Colonização: espécies de plantas herbáceas e lenhosas (sem
especificidade de hospedeiro)
 Distribuição: cosmopolita
 Fungos da ordem Glomales

 Micorrizas arbusculares mico-heterótroficas
 Colonização: espécies de samambaias
 Distribuição: restrita
 Não forma arbúsculos
 Micorriza primitiva

 Micorrizas da ordem Ericales
 Hifas penetram as células corticais da raiz mas não há formação de
arbúsculos
 Três tipos distintos têm sido descritos:
 Ericóide
 Arbutóide
 Monotropóide

 Ericóide
 Hifas na superfície da raiz (soltas) sem formação de manto
 Células compactas com hifas mas pouca extensão no solo
 Encontrada em plantas como Calluna, Rhododendron, e Vaccinium
 Crescem em solos ácidos
 Produzem enzimas que degradam a MO
 Fungos do gênero Hymenoscyphus

 Arbutóide:
 Tem características de EM e MA: manto, penetração intracelular,
formação de rede de Hartig
 Encontrada em Arbutus, Arctostaphylos e várias espécies da família
Pyrolaceae
 Fungos: Basidiomicetos

 Monotropóide:
 Produz manto e rede de Hartig
 Os fungos colonizam membros aclorofilados da família
Monotropaceae
 Esses mesmos fungos se associam a plantas EM transferindo carbono
e nutrientes do hospedeiro autotrófico até aquele parasítico

 Micorrizas Orquidóides
 Crescimento inter e intracelular (invaginação das paredes) formando
espirais de hifas no interior das células
 São importantes no estabelecimento e desenvolvimento de orquídeas
(sementes pequenas)
 Fungos: Basidiomicetos similares aqueles que degradam madeira
(Coriolus, Fomes, Marasmius) e patogênicos (Armillaria, Rhizoctonia)

4. Aspectos evolutivos das micorrizas
Period Plant Mycorrhizas
Ordovician to Silurian (476-432
Myr)
The first bryophyte-like land
plants
Limited fossils without roots,
mycorrhizas unknown.
Ordovician (476 Myr) to Present Liverworts and hornworts
Currently have AM-like
associations (with or without
arbuscules), other associations,
or are NM
Silurian (415-425 Myr) to
Present
Mosses
No roots. Currently NM. Some
have endophytic
Glomeromycotan fungi
Devonian (400 Myr)
Aglaophyton major, Nothia
aphylla and other early land
plants of uncertain affinities
Fossils with VAM-like hyphae
and arbuscules in rhizome or
thallus (Taylor et al. 1995, Taylor
& Krings 2005, Krings et al.
2007)
Devonian (395 Myr) to Present
Lycopods: Lycopodium,
Selaginella, etc.
VAM in sporophyte, underground
gametophyte MH VAM
Devonian (395 Myr) to Present Sphenophytes: Equisetum, etc.
Living Equisetum species have
VAM
Mid Devonian (385 Myr)
Sphenophytes, Lycopods,
Pteridophytes
First plants with roots resembling
those of modern plants

Mid Devonian (385 Myr)
Sphenophytes, Lycopods,
Pteridophytes
First plants with roots resembling
those of modern plants
Mid Devonian (385 Myr) to
Present
Pteridophytes (Ferns) Most living ferns have
Mid Devonian to Present Cycads AM
Triassic (215-235 Myr)
Cycad from Antarctica
(Antarcticycas sp.)
Earliest fossil VAM association
in roots? (Phipps & Taylor 1996).
Permian (265 Myr) to Present Ginkgoales: Ginkgo, etc. Extant tree has VAM
Triassic (235 Myr) to Present
Southern Hemisphere conifers:
Araucariaceae, Podocarpaceae
Living trees have AM
Early Jurassic (190 Myr) to
Present
Northern Hemisphere conifers
(except Pinaceae): Cupressaceae,
Taxodiaceae
Trees with AM
Early Jurassic (190 Myr) to
Present
Gnetales: Ephedra, Gnetum,
Welwitschia
AM or ECM (Gnetum)
Early Cretaceous? (>120 Myr) to
Present
Conifers in Pinaceae: Larix,
Picea, Pinus, Tsuga, etc.
ECM trees with heterorhizic
roots
Early Cretaceous (~120 Myr) to
Present
Angiosperms
AM, NM or other mycorrhiza
type

Cretaceous (100 Myr) to Present
Fagales: Betulaceae,
Casuarinaceae, Fagaceae,
Juglandaceae, Myricaceae,
Nothofagaceae
Single lineage of ECM trees or
shrubs with heterorhizic roots
(some VAM also)
Late Cretaceous, Oligocene, or
Eocene to present (90-30 Myr)
Fabaceae (Caesalpiniaceae,
Mimosaceae), Myrtaceae,
Salicaceae, Tiliaceae, etc.
Several separate ECM lineages
Cretaceous (100 Myr) to Present Orchidaceae
Orchid mycorrhizas. Orchids age
estimate based on biogeography
and phylogenetics (Chase 2001)
Cretaceous (100 Myr) to Present
Mainly NM families: Proteaceae,
Cyperaceae, Restionaceae, etc.
Oldest known fossils of plants
likely to have true NM roots
Late Cretaceous (80 Myr) Ericaceae
Oldest known fossils (Nixon &
Crepet 1993) likely to have had
ericoid mycorrhizas (Cullings,
1996)

 Os tipos de micorrizas variam muito em estrutura e função de
acordo com a latitude e altitude, propriedade e estrutura do
solo, e das zonas climáticas
 Subártico ou subalpino: micorrizas ericóides (Ascomycota)
 Florestas temperadas: ectomicorrizas (Basidiomycota)
 Pampas, savanas, florestas tropicais: endomicorrizas (Glomeromycota)
Micorrizas

Tipo de
Micorriza
Forma de
Nitrogênio
Vegetação
Decréscimo de latitude ou longitude
Ericóide
Ecto
Arbuscular
Orgânico
Amônio
Nitrato
Pampas
Florestas tropicais
Florestas de coníferasSub-alpino

Micorrizas em Ecossistemas Naturais
Modificado por Moser, 1967
Cortesia de A.M. Paula
- Padrão de distribuição das MA e EM nas florestas do mundo.

Classificação
http://tolweb.org/Fungi/2377

5. Fungos associados: Basidiomycota
Família ou grupo Fungos epígeos Trufas (hipógeos ou semi-hipógeos)
BASIDIOMICETOS
Lyophyllum Lyophyllum
Tricholomataceae Leucopaxillus, Tricholoma
Entolomataceae Entoloma (não todas as espécies) Rhodogaster, Richoniella
Amanitaceae Amanita Limacella Ammarrendia, Torrendia
Hygrophoraceae Gliophorus, Humidicutis, Hygrophorum
Hydnangiaceae (Laccaria clade) Laccaria
Hydnangium, Podohydnangium,
Gigaspera
Cortinariaceae Cortinarius, Dermocybe, Naucoria, Rozites
Cortinarius, Hymenogaster (em parte),
Destuntzia, Protoglossum, Quadrispora,
Setchelliogaster, Stephanopus,
Thaxterogaster
Phaeocollybia
clade
in Hymenogastraceae
Phaeocollybia
Hebeloma clade
in Hymenogastraceae
Hebeloma Hymenogaster (em parte)
Descolea clade
(in Bolbitiaceae?)
Descolea Descomyces, Setchelliogaster
Inocybaceae Inocybe, Auritella Auritella
Modificado de: http://mycorrhizas.info/ecmf.html#list

BASIDIOMICETOS
Boletes (Boletales) Inclui
muitas famílias
Aureoboletus, Austroboletus,
Austropaxillus, Boletellus, Boletochaete,
Boletus, Chroogomphus, Fuscoboletinus,
Heimielia, Gomphidius, Gyroporus,
Leccinum, Paragyrodon, Paxillus,
Phlebopus, Phylloporus, Poryphyrellus,
Psiloboletinus, Rubinoboletus,
Strobilomyces, Suillus, Tylopilus,
Xanthoconium, Xerocomus, etc.
Alpova, Austrogaster, Austrogautieria,
Chamonixia, Gastroboletus,
Gastrotylopilus, Gymnogaster,
Gymnopaxillus, Horakiella,
Hysterogaster, Melanogaster,
Mycoamaranthus, Octaviania,
Rhizopogon, Royoungia, Sclerogaster,
Truncocolumella, Timgrovea,
Wakefieldia, etc.
Boletales - Sclerodermatales
Boletoide: Gyroporus,
Gasteroid: Pisolithus, Scleroderma,
Calostoma
Astaeus, Horakiella, Scleroderma,,
Velligaster
Russulales Lactarius, Russula
Arcangeliella, Cystangium,
Gymnomyces, Leucogaster,
Macowanites, Octaviania,
Stephanospora, Zelleromyces,
Byssoporia, Albatrellus, Polyporoletus
(resupinados)

BASIDIOMICETOS
Gomphales & Hysterangiales
Bankera, Boletopsis, Clavaridelphus,
Gomphus, Hydnum, Hydnellum,
Phellodon, Sarcodon, Ramaria (alguns
não micorrízicos?)
Hysterangium clades: Aroramyces,
Chondrogaster, Hysterangium,
Mesophelliaceae: Andebbia,
Castoreum, Gummiglobus,
Malajczukia, Mesophellia,
Nothocastoreum,
Gallacaceaceae: Austrogautiera,
Gallacea, etc.,
Phallogaster clade: Protrubera,
Phallogaster, Trappea
Ramaria clade: Gautieria
Cantharellales Cantharellula, Cantharellus, Craterellus
Rhizoctonia e grupos
relacionados (Sebacinaceae,
Ceratobasidiaceae)
Thanatephorus, Sebacina(resupinados)

BASIDIOMICETOS
Thelephorales
Bankera, Boletopsis, Thelephora,
Phellodon, Sarcodon
Tomentella, Pseudotomentella,
Tomentellopsis (resupinados)
Clavariaceae
Aphelaria, Clavaria, Clavariadelphus,
Clavicorona, Clavulina, Clavulinopsis,
Ramariopsis
Atheliales
Amphinema, Byssocorticium,
Byssosporia, Piloderma, Tylospora
(resupinados)

5. Fungos associados: Ascomycota + outros
ASCOMICETOS
Pezizales (inc. Tuberaceae,
Helvellaceae, etc.)
Genea, Geopora, Humaria, Hydnotrya,
Helvella, Leucangium, Pachyphloeus,
Pulvinula, Sarcosphaera,
Sphaerosporella, Sphaerozone, Tirmania,
Tricharina, Wilcoxina
Choiromyces, Dingleya, Eremiomyces,
Kalaharituber, Labyrinthomyces,
Pachyphloeus, Reddellomyces, Tuber,
Terfezia, Turmania
Eurotiales
(Elaphomycetaceae)
Elaphomyces Pseudotulostoma
Melanommatales Cenococcum
Sub-filo Mucoromycotina
Endogonaceae
Densospora, Endogone, Peridiospora,
Youngiomyces
Classificação: Hosaka et al. 2006, Matheny et al. 2006, Hibbett et al. 2007, Giachini & Castellano 2010

Extraído de: http://mycorrhizas.info/ecmf.html#list
Fungus: Tricholoma sp.
Form: mushroom with gills
Habitat: Eucalyptus dominated urban bushland
Location: Kensington, Western Australia
Photo: Neale Bougher
Família: Tricholomataceae
BASIDIOMYCETE

Família: Tricholomataceae
Fungus: Tricholoma sp. (Matsutake)
Form: mushroom with gills (harvested for export)
Habitat: conifer dominated temperate forest
Location: Yunnan Province, China
http://classes.plantpath.wsu.edu/plp521/Matsutake%203.JPG
BASIDIOMYCETE

Família: Entolomataceae
Fungus: Entoloma moongum
Form mushroom with gills
Habitat: Eucalyptus marginata dominated urban bushland
Location: Kensington, Western Australia
BASIDIOMYCETE

Família: Amanitaceae
Fungus: Amanita carneiphylla
Habitat: Eucalyptus dominated woodland
Location: urban bushland, Perth, Western Australia
BASIDIOMYCETE

Fungus: Torrendia grandis
Form: truffle-like (semi-hypogeous)
Habitat: Eucalyptus dominated mediterranean sclerophyllous forest
Location:Western Australia
BASIDIOMYCETE

Fungus: Ammarendia oleosa
Form: truffle-like (hypogeous)
Location:Western Australia
BASIDIOMYCETE

Família: Hydangiaceae
Fungus: Laccaria sp.
Habitat: Eucalyptus marginata dominated mediterranean
sclerophyllous forest
Location: Western Australia
BASIDIOMYCETE

Família: Hydangiaceae
Fungus: Hydnangium carneum
Form: truffle (hypogeous)
BASIDIOMYCETE

Família: Cortinariaceae
Fungus: Cortinarius archeri
Location: Western Australia.
BASIDIOMYCETE

Fungus: Cortinarius (Dermocybe) canarium
Habitat: Nothofagus dominated temperate rainforest
Location: Near Te Anau, New Zealand
BASIDIOMYCETE

Fungus: Cortinarius persplendidus (Dermocybe splendida)
Location: Western Australia.
BASIDIOMYCETE

Fungus: Thaxterogaster purpureum
Form truffle-like (partially hypogeous)
Habitat: Nothofagus dominated temperate rainforest
Location: Near Te Anau, New Zealand
BASIDIOMYCETE

Família: Bolbitiaceae
Fungus: Descolea (C), with its truffle-like relatives Setchelliogaster
(B) and Descomyces (A)
Forms: mushroom with gills and truffles
BASIDIOMYCETE

Família: Inocibaceae
Fungus: Inocybe violaceocaulis
BASIDIOMYCETE

Ordem: Boletales
Fungus: Austroboletus lacunosus
Form: mushroom with pores
http://www.kaimaibush.co.nz/Fungi/Austroboletus_lacunosis1a.jpg
BASIDIOMYCETE

Ordem: Boletales
Fungus: Calostoma rodwayi
Form: stalked puffball (gasteroid)
BASIDIOMYCETE

Ordem: Boletales
Fungus: Pisolithus sp.
Form: puffball (gasteroid)
Habitat: erupting through bitumen paving under a eucalypt
Location:The University of Western Australia
BASIDIOMYCETE

Ordem: Boletales
Fungus: Rhizopogon rubescens
Form: truffle (semi-hypogeous)
Habitat: Pinus radiata plantation
BASIDIOMYCETE

Família: Russulaceae
Fungus: Lactarius deliciosus
Habitat: Edible fungus collected in the wild and sold in a market
Location: Yunnan Province, China
BASIDIOMYCETE

Fungus: Russula persanguinea
BASIDIOMYCETE

Fungus: Zelleromyces sp.
BASIDIOMYCETE

Ordem: Gomphales
Fungus: Ramaria abitina
Form: coral fungus
Habitat: conifer dominated boreal forest
Location: Ontario, Canada
BASIDIOMYCETE

Ordem: Gomphales
Fungus: Ramaria versatilis
Form: coral fungus
BASIDIOMYCETE

Ordem: Gomphales
Fungus: Gomphus clavatus
Form: gomphoid (with folds)
Habitat: mixed conifer and deciduous forest BASIDIOMYCETE
http://www.mykoweb.com/CAF/photos/large/Gomphus_clavatus(mgw-01).jpg

Ordem: Gomphales
Fungus: Hysterangium sp.
http://www.nybg.org/bsci/res/hall/hysterangium.jpg
BASIDIOMYCETE

Ordem: Gomphales
Fungus: Mesophellia brevispora
Habitat: Eucalyptus conferruminata and Taxandria sp. mallee
woodland
Location: Bald Island, Western Australia
BASIDIOMYCETE

Ordem: Cantharellales
Fungus: Hydnum repandum
Form: tooth fungus (mushroom-like)
Location:Augusta, Western Australia
http://www.nifg.org.uk/species/photos/Hydnum_repandum2.jpg
http://www.mykoweb.com/CAF/photos/Hydnum_repandum(bk-01).jpg
BASIDIOMYCETE

Família: Thelephoraceae
Fungus: Thelephora sp.
Form: coral-like (form highly variable)
Habitat: opportunist in pots with Melaleuca sp. + Pinus sp.
http://www.commanster.eu/commanster/Mushrooms/Basidio/SuBasidio/Thelephora.terrestris.jpg
BASIDIOMYCETE

Família: Clavariaceae
Fungus: Clavaria spp.
Form: coral fungus (suspected to be mycorrhizal)
Habitat: Eucalyptus dominated woodland
http://farm4.static.flickr.com/3300/3438091264_c514e97ef7.jpg
http://farm3.static.flickr.com/2521/3845922406_bb27740719.jpg
BASIDIOMYCETE

Ordem: Pezizales
Fungus: Labyrinthomyces sp.
Scale: Bar = 1 cm
ASCOMYCETE

Ordem: Pezizales
Fungus: Tuber melanospora
Form: hypogeous, French Black Truffle
Habitat: cultivated in plantation (1 kg)
Location: Manjimup, Western Australia
Roll-over: ectomycorrhizal roots
Photos: Nick Malajczuk The Wine & Truffle Co.
ASCOMYCETE

Ordem: Melanommatales
Fungus: Elaphomyces antracinus (Cenococcum sp.)
Form: sterile mycelia (arrows) and black ECM (S)
Habitat: Eucalyptus globulus plantation
ASCOMYCETE

Família: Endogonaceae
Fungus: Endogone pisiformis
Form: Truffle-like (epigeous on sphagnum moss)
Habitat: coniferous forest
Location: Ontario, Canada
Sub-filo Incertae sedis

Morfotipos
Pinus radiata + Suillus brevipes Pinus radiata + Amanita muscaria
Pinus radiata + Boletus edulis E. maculata + Astraeus pteridis
A B
D

Morfotipos
E. urophylla+ Tylopilus sp. E. grandis + Redellomyces sp.
E. urophylla + Pisolithus sp. E. urophylla + Amanita sp.

6. Plantas associadas EM
Família Gênero Referencia
GIMNOSPERMAS
Gnetaceae Gnetum
Fassi 1957, St. John 1980, Onguene &
Kuyper 2001
Pinaceae
Abies, Cathaya, Cedrus, Keteleeria,
Larix, Picea, Pinus, Pseudolarix,
Pseudotsuga, Tsuga
Malloch & Malloch 1981, Harley &
Harley 1987, Brundrett et al. 1990
ANGIOSPERMAS
Betulaceae (incluindo
Corylaceae)
Alnus, Betula, Carpinus, Corylus,
Ostrya, Ostryopsis
Rose 1980, Harley & Harley 1987,
Brundrett et al. 1990 ]
Casuarinaceae Allocasuarina, Casuarina Theodorou & Reddell 1991
Cistaceae
Cistus, Fumana, Helianthemum,
Hudsonia, Lechea, Tuberaria
Giovannetti & Fontana 1982, Malloch
& Thorn 1985, Wang & Qui 2006,
Comandini et al. 2006
Dipterocarpaceae
Anisoptera, Dipterocarpus, Hopea,
Marquesia, Monotes, Pakaraimaea,
Shorea, Vateria, Vateriopsis, Vatica
Alexander & Högberg 1986, Högberg
& Piearce 1986, Smits 1992,
Moyersoen et al. 2001, Moyersoen
2006, Tedersoo et al. 2007

Abies spp. - Pinaceae
http://beingplants.com/zen/images/Abie
sBalsameaCones.jpg
http://upload.wikimedia.org/wikipedia/commons/7/71/Abies_korean
a_(szyszki).JPG

Pinus spp.
http://www.ubcbotanicalgarden.org/potd/pin
us_ponderosa.jpg
http://www.virtualherbarium.org/images/pinuselliotii1.jpg

Pseudotsuga menziesii (Douglas fir)
http://www.davidlnelson.md/Cazadero/CazImages/DouglasF
ir10.jpg
http://www.mysunshinecoast.ca/images/bbsa/photos/douglas_fir.j
pg

Alnus spp. (Alder) - Betulaceae
http://www.callabletreeservice.com/images/alder.jpg

Corylus spp.
http://bathbody365.com/uploaded_images/Toasted-Hazelnut-Bath-and-Body-Works-
709435.jpg
http://www.mooseyscountrygarden.com/hazelnut-orchard/dog-hazelnut-orchard.jpg
Betula spp.

Casuarina spp.
Allocasuarina spp.
http://www.wildseedtasmania.com.au/webgallery/images/Allocasuarina%20littoralis_jp
g.jpg
Família Casuarinaceae

Dipterocarpus spp. - Dipterocarpaceae

GIMNOSPERMAS
Caesalpinioideae
(Caesalpiniaceae)
Afzelia, Anthonotha, Aphanocalyx,
Berlinia, Brachystegia, Cryptosepalum,
Dicymbe, Didelotia, Eperua,
Gilbertiodendron, Gleditsia, Intsia,
Isoberlinia, Julbernardia, Microberlinia,
Monopetalanthus, Paraberlinia,
Paramacrolobium, Pellegriniodendron,
Tetraberlinia, Toubaouate
Fassi 1962, Alexander & Högberg
1986, Bakarr & Janos 1996, Thoen &
Ba 1989, Frioni et al. 1999, Onguene &
Kuyper 2001, Henkel et al. 2002,
Tedersoo et al. 2007.
Papiloinoideae
(Papilionaceae)
Aldinia, Gastrolobium, Gompholobium,
Jacksonia, Lonchocarpus, Mirbelia,
Oxylobium, Pericopsis
Aldinia in Guyana - Henkel et al. 2002,
Pericopsis in Uruguay - Frioni et al.
1999
Mimosoideae (Mimosaceae) Acacia, Calliandra Frioni et al. 1999
Fagaceae
Castanea, Castanopsis, Fagus,
Lithocarpus, Quercus
Harley & Harley 1987, Brundrett et al.
1990, Haug et al. 1991, Jurgensen et al.
1997, Moyersoen et al. 2001.

Dicymbe spp. - Cesalpinoideae
http://www.huh.harvard.edu/research/msmith/images/P%20Joseph%20w%20Dicymbe%20altsonii.jpg

Acacia spp. - Mimosoideae
http://www.spiritoftrees.org/folktales/caldecott/acacia_trees_giraffes.jpg

Quercus spp. - Fagaceae
http://www.therampantgardener.co.uk/quercus_rubra_tree.jpg

GIMNOSPERMAS
Junglandaceae Carya, Engelhardtia
1990, Haug et al. 1991, Jurgensen et al.
1997
Melastomataceae
ECM (ectendomycorrhizal) association
with ascomycete (Hymenoscyphus), VAM
also: Graffenrieda
Haug et al. 2004
Meliaceae Owenia Brundrett et al. 1995
Myrtaceae
Allosyncarpia, Agonis, Angophora,
Baeckea, Eucalyptus, Leptospermum,
Melaleuca, Tristania, Tristaniopsis
veja Australian Myrtaceae
Nothofagaceae
(Fagaceae)
Nothofagus
Warcup 1980, McKenzie et al. 2000,
Perrier et al. 2006
Nyctaginaceae Guapira, Neea, Pisonia
St John 1980, Ashford & Allaway
1985, Moyersoen 1993, Chambers et
al. 2005, Haug et al. 2005.

Eucalyptus spp. - Myrtaceae
http://www.biglandsbrazil.com/images/eucap.jpg

Nothofagus spp. - Nothofagaceae
http://upload.wikimedia.org/wikipedia/commons/1/1a/Nothofagus_betuloides.jp
g
http://www.hancock.forests.org.au/images/08feb/Nothofagus%20stands%2
0CTRF%20no%20buffers%20Grey%20Gum%20Track.jpg

GIMNOSPERMAS
Phyllanthaceae
(Euphorbiaceae)
Uapaca*, Ampera, Poranthera
(*até recentemente em Uapaceaceae)
Alexander & Högberg 1986, Onguene
& Kuyper 2001, Ramanankierana et al.
2007.
Polygonaceae
Polygonum (herbáceas do ártico e áreas
alpinas),
Coccoloba (planta tropical)
Polygonum - Kohn & Stasovski 1990,
Massicotte et al. 1998, Mühlmann et al.
2008.
Coccoloba - Koske et al. 1992, Béreau
et al. 1996.
Rhamnaceae
Cryptandra, Pomederris, Spyridium,
Trymalium
veja Australian plants
Rosaceae
Dryas (herbáceas do ártico e áreas
alpinas),
Cercocarpus*, Purshia* *VAM also
Hoeppel & Wollum 1971, Williams
1979, Haselwandter 1987, Kohn &
Stasovski 1990.
Salicaceae Populus, Salix
VAM também- Harley & Harley 1987,
Brundrett et al. 1990, Wang & Qui
2006.
Sapotaceae Manilkara Torti & Coley 1999

Coccoloba spp. - Polygonaceae
http://upload.wikimedia.org/wikipedia/commons/f/f4/
Uva_de_playa_(Coccoloba_uvifera).jpg

Dryas spp. - Rosaceae
http://www.about-garden.com/images_data/3945-
dryas-octopetala-dryadka-osmiplatecna-2.jpg
http://www.srgc.org.uk/monthfeature/january2008/21%2
0%20%20Dryas%20close-up.jpg

Salix spp.
http://www.trees-online.co.uk/images/Salix%20Chrysocoma.jpg
http://www.estabrooksonline.com/images/highres/salix_tristis.jpg

GIMNOSPERMAS
Sarcolaenaceae*
Leptolaena, Sarcolaena, Schizolaena
*Famílias relacionadas a
Dipterocarpaceae e Cistaceae -
Ducousso et al. 2004
Tiliaceae Tilia
1990
MONOCOTILEDÔNEAS
Cyperaceae
Kobresia (herbáceas do ártico e áreas
alpinas)
Haselwandter 1987, Kohn & Stasovski
1990, Massicotte et al. 1998

Kobresia spp. - Cyperaceae
http://botany.cz/foto/kobresia1.jpg

7. Efeito das micorrizas
 Aumento da absorção de nutrientes limitantes como fósforo,
zinco e cobre pelo aumento da área de absorção :
 Correspondem a apenas 20% da massa superficial de
absorção, mas contribuem com cerca de 80% da área de
absorção
 Produzem oxalatos, ácido oxálico e fosfatases que auxiliam
na liberação de P
 Produzem proteases e fosfatases que mineralizam a MO

P disponível na rizosfera antes e após o cultivo de plantas de Pinus pinaster não-micorrizadas (NM) ou
associadas a dois basidiomicetes ectomicorrizicos, Hebeloma cylindrosporum (H.c.) ou Rhizopogon
roseolus (R.r.)
Conteúdo de P
(mg P kg−1
soil)
Tipo de planta
Tratamento do solo
NT CaCO3 Hidroxiapatita KH2PO4 KH2PO4 + CaCO3
Inicial Original 3.01B 4.66B. 4.66B. 49.90A. 60.11AB.
Após NM 4.57B. 6.22A. 5.65B. 31.62B. 61.62A.
Hebeloma 3.10B. 5.55A. 5.46B. 34.93B. 47.81B.
Rhizopogon 10.80A. 4.23B. 25.15A. 31.71B. 48.33B.
Soil P contents were measured according to Olsen et al. (1954). Data are mean values of five replicates.
Modificado de Casarin et al. 2004.

Biomassa de raízes e parte aérea, e relação raíz:parte aérea medidas em plantas de Pinus pinaster não-
micorrizadas (NM) ou associadas a dois basidiomicetes ectomicorrizicos, Hebeloma cylindrosporum (H.c.)
ou Rhizopogon roseolus (R.r.)
Parâmetro Tipo de planta
Tratamento do solo
Peso seco
parte aérea
(g/planta)
NM 0.43B 0.57A 0.69B 0.50B 0.44AB
Hebeloma 0.41B 0.47A 0.47C 0.27C 0.37B
Rhizopogon 0.67A 0.56A 0.90A 0.63A 0.60A
Peso seco raíz
(g/planta)
NM 0.62A 0.81A 1.01A 0.60A 0.70A
Hebeloma 0.61A 0.83A 0.99A 0.52A 0.64A
Relação Parte
aérea:raíz
NM 0.69B 0.71A 0.69B 0.86A 0.63B
Hebeloma 0.67B 0.60A 0.46C 0.50B 0.59B
Modificado de Casarin et al. 2004

Concentração de P da parte aérea, da raíz e P total em plantas de Pinus pinaster não-micorrizadas (NM) ou
associadas a dois basidiomicetes ectomicorrizicos, Hebeloma cylindrosporum (H.c.) ou Rhizopogon roseolus
(R.r.)
Parâmetro Tipo de planta
Tratamento do solo
Concentração de P
na parte aérea
(mg g−1 d.)
NM 0.28B 0.35A 0.57A 0.42B 0.52B
Hebeloma 0.32B 0.40A 0.63A 0.78A 0.63A
Concentração de P
na raíz
(mg g−1 d.)
NM 0.43B 0.49AB 0.68B 0.66B 0.66B
Hebeloma 0.47B 0.44A 0.79B 1.41A 0.87A
P total
(mg g−1 d.)
NM 0.39B 0.58A 1.05B 0.61B 0.70A
Hebeloma 0.42B 0.55A 0.95B 1.38A 0.81A
Modificado de Casarin et al. 2004

Efeitos e Mecanismos de Estímulo das
Ectomicorrizas no Crescimento das Plantas

7. Efeito das micorrizas
 Aumentam a tolerância a:
 Seca
 Sais
 Elementos traço
 Patógenos
 Aumentam a estabilidade do solo
 Alteram interações competitivas
 Auxiliam o estabelecimento das plantas

Fluxo de Carbono nas micorrizas
 Ate 20% do carbono do hospedeiro autotrófico pode ser
translocado para o heterotrófico
 As plantas, por sua vez, aumentam sua atividade
fotossintética quando associadas aos fungos, compensando
o carbono translocado
 Beneficio via produção de enzimas pelos fungos que
hidrolisam e mineralizam nutrientes disponíveis as plantas,
agregam o solo, e mantêm uma comunidade microbiana
única na ‘micorizosfera’

Aplicação das Ectomicorrizas
Características gerais de fungos ideais para inoculação:
 Ter crescimento fácil e abundante em cultura pura;
 Promover abundante colonização e resposta adequada no
simbionte;
 Ser agressivo e competitivo com outros fungos
ectomicorrízicos e a biota no solo;
 Ser bem adaptado ao novo habitat e garantir adequada
colonização por longo período;
 Apresentar elevada compatibilidade com o simbionte e
apresentar boa frutificação.

Introdução de fungos selecionados nas seguintes situações:
 Em plantios com espécies exóticas em novas áreas sem
hospedeiros;
 Na revegetação de solos degradados (erosão, mineração,
contaminação, const. civil);
 Em áreas despovoadas ou desprovidas de hospedeiros de
ectomicorrizas;
 Em solos e substratos inertes (ausência de propágulos)
 Em áreas onde os fungos já ocorrem, mas pretende-se aumentar a
densidade de nóculo ou introduzir organismos mais efetivos que os
indígenas
Aplicação das Ectomicorrizas

7. Inoculação de micorrizas
~ 1500 propágulos/m

Objetivos da inoculação
 Melhorar a colonização via isolados efetivos
 Eficientemente introduzir isolados onde o inóculo é baixo ou
ineficiente
 Assegurar colonização efetiva das plantas
 Acelerar o processo produtivo

 Micorrizas são componentes essenciais da biosfera
 Ainda necessitamos conhecer melhor os seus micro-habitats e funções
 Interações microbianas
 Contribuição para a sustentabilidade do solo
 Impacto das práticas culturais
 Oportunidades para a aplicação de inoculantes
 Locais com baixa densidade de inóculo efetivo
 Quando altas taxas de fertilizantes não são apropriadas
8. Considerações finais

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