Qualidade da água Proteção ambiental

1. Indicadores de qualidade de água
 Bactérias: Escherichia coli
 Protozoários: Cistos (Giardia) e oocistos
(Cryptosporidium)
 Algas: cianobactérias
 Vírus
 Ovos de helmintos

2. COLIFORMES
 Bactérias do tipo bastonetes, gram-
negativas, aeróbias ou anaeróbias
facultativos, fermentam a lactose para formar
gás em 48 horas após terem sidos colocadas
em caldo lactosado a 35°C.

3. Grupo coliforme: coliformes totais e
fecais
 indicadores de escolha para monitorar qualidade da água;
 Presença→ riscos à saúde → Salmonella, Shigella, Vibrio,
Mycobacterium, Pasteurella, Leptospira e vírus entéricos
 Fermentam lactose→ gás, ácido, aldeído à 35°C em 24-48h
Coliformes
termotolerantes:E.coli
Klebisiella
Grupo coliforme: totais e fecais
Coliformes
fecais: E.coli
 gêneros: Citrobacter,
Escherichia, Enterobacter e
Klebsiella
 Citrobacter, Enterobacter e
Klebsiella: vegetação e solo

4. Coliformes fecais
 Sub-grupo: coliformes totais → Escherichia coli
 Contaminação fecal oriundas de animais de sangue quente
 Metodologia: temperatura de 44,5 +0.2°C, fator seletivo (termotolerantes)
 Enzimas específicas
Escherichia coli

5. Outros indicadores microbiológicos
 Bactérias que utilizam
nutrientes orgânicos
 A contagem de bactérias
heterotróficas→ medida
empírica;
 presença em maior ou menor
quantidade → grau de
poluição da água →
enriquecimento MO.
1-Bactérias Heterotróficas

6. BACTÉRIAS HETERÓTROFICAS
(CETESB/97)
 Podem atuar como patógeno oportunista.
 Deterioração da qualidade da água (odores e
sabores)
 Pode impede a detecção de coliformes.
 Auxilia:
 Avaliar as condições de higiênicas e de
proteção de poços, fontes, piscinas....
 Avaliar a eficiência das diversas etapas da
estação de tratamento de água na remoção
de bactérias.

7.  Método: pour plate
 Princípio: condições de nutrição, temperatura
e tempo de incubação, se houver bactérias
viáveis na água, haverá a formação de
colônias.
 Meio: ágar triptona glicose extrato de
levedura (Plate Count Agar)

8. Outros indicadores microbiológicos
 Bioindicador referenciado na
legislação
CONAMA 274/2000
 Melhores indicadores para águas
marinhas → Tolerância a altas
concentrações de sal
 Grupo Streptococcus fecais→
Streptococcus faecalis, S. faecium, S.
galinarum e S. avium;
 contaminação fecal humana X fezes
outros animais
2-Estreptococcus fecais

9. 3-Pseudomonas aeruginosa
 Solo, água, matéria orgânica em decomposição;
 Microbiota do intestino e pele de seres humanos;
 Patógeno oportunista
- infecções auditivas em usuários de águas recreativas contaminadas
- surtos de gatroenterites veiculadas por água -
imunodeprimidos
 capacidade de crescer em ambientes oligotróficos

10. 4 - Staphylococcus aureus
 Pele e mucosa (nariz, garganta) do homem: Diversas infecções
 Não estão relacionados com contaminação fecal;
 Sobrevivem mais tempo na água;
 Ambientes aquáticos – intensa utilização para fins recreacionais -
contagens de S. aureus

11.  Indicadoras de poluição: ambientes de água doce, quanto marinhos;
 número e espécie → tipo e pureza da água;
 Ocorrência e distribuição→ presença de poluição orgânica;
 complemento a contagem de coliformes;
 Gêneros comuns: Aureobasidium, Candida, Cryptococcus,
Rhodotorula, Saccharomyces e Trichosporon
 Maioria associada a plantas, solos ou fontes de poluição orgânica
5- Leveduras

12.  Lagos não poluídos (<10 UFC/100 ml)
 Lagos mesotróficos ( 10 – 50 UFC/100 ml)
 Águas – esgoto - seguras para recreação (50 – 100 UFC/100
ml)
 Águas eutrofizadas (>100 UFC/100ml)
(Hagler & Ahearn,1987)

13. Legislação
Água potável: obedecer ao padrão de potabilidade, não oferecer riscos à saúde
humana

16. Padrões de Balneabilidade determinados pelo CONAMA, através da
Resolução nº 357, de 17 de março de 2005.
Categoria Coliformes
fecais/100ml
Escherichia
coli/100ml
Enterococcus/
100ml
Excelente até 250 até 200 até 25
Muito boa até 500 até 400 Até 50
Satisfatória até 1000 até 800 Até 100
Imprópria > 2500 > 2000 > 400

17. Metodologia
Coleta:
 Coletar a amostra em recipiente esterilizado;
 Até 4/5 da capacidade do frasco;
 Água com cloro: 0,1 ml de tiossulfato a 10%;
 Água bruta que contenha metais pesados: 0,3 ml EDTA a 15%.

18. TÉCNICA DOS TUBOS
MÚTIPLOS-CETESB/93
 Princípio: bactérias presentes em uma
amostra podem ser separadas por agitação,
resultando em uma suspensão de células
bacterianas.
 Objetivo: consiste em inocular volumes
decrescentes da amostra em meio de
cultura.
 Indicação para água: 1 ml em cinco tubos
para cada volume inoculado (10-5).

19. Contagem de Coliforme – técnica dos tubos
múltiplos
1- Caldo lactosado
35/370C/ 24-48 h
2- Caldo Verde
Brilhante e Bile 2%
35/370C/ 24-48 h
3- Caldo Ec 44,50C-
24 h
Amostra de água
10 ml
1 ml 0,1 ml
Água: três séries de cinco tubos

20. Metodologia da Membrana
Filtrante (MF)
Filtragem da amostra

21. MEMBRANA FILTRANTE
 Princípio: filtragem de volumes conhecidos
de água, através de membrana filtrante com
porosidade adequada.
 As bactérias a serem detectadas ficam
retidas na membrana e são transferidas para
as placas de Petri.

22. Substrato Cromogênico/fluorogênico
Teste P/A
Adição do meio com
substrato à amostra
Incubação por 24h.Resultados:
Incolor:Negativo;
Amarelo:Coliforme total +;
Azul:Coliforme E. coli +

23. Fermentação
Caldo Lauril Triptose
Formação de
Gás
Confirmação: Fermentação com
Caldo Verde Brilhante Lactose
- + +
Gás
Fermentação: Caldo lactosado Confirmação: Caldo verde brilhante
E.coli: fluorecência (UV)
Não contaminado
Presença de
coliformes
Presença de
coliformes fecais

24. Teste Quantitativo
1
2
3
4 Mesmas placas
amarelas submetidas
a luz ultra-violeta
(UV)
Resultado Azul 
Ecoli
Se (-) e amarelo 
C. Total
5
6
Tabelas de NMP
Resultados em
numeros/100 ml