O documento descreve diferentes tipos de microscópios e suas partes, com ênfase no microscópio óptico. Resume cuidados ao usar o microscópio óptico, incluindo iniciar com a objetiva de menor aumento, ajustar a iluminação e focalização, e limpar cuidadosamente após o uso. Também fornece exemplos de fungos e doenças de plantas que podem ser observados ao microscópio.

1. Microscopia

2. Categoria de Microscópios
LUMINOSO: - Óptico => 60 a 1.000X
(Ondas luminosas)
ELETRÔNICO: - Varredura => 20 a 100.000X
(Feixe de elétrons) - Transmissão => 1.000 a 500.000X
Microm (µm): 10 mm; 10 cm
-3 -4
Unidade de medida linear na escala microscópica
Menor objeto visto com perfeição ao microscópio ótico
0,2 µm Sendo que: (0,2 µm) x (1.000X) = 0,2 mm

3. Partes do microscópio óptico
Oculares
Revólver
Objetivas
Presilha do Charriot
Mesa
Diafragma
Condensador
Fonte de luz
Macrométrico
Charriot
Micrométrico
Base

4. Ajuste do
macrométrico
Oculares
Pinça para a fixação
de laminas
Base de
trabalho
Partes do microscópio estereoscópio

5. Algumas comparações
Parede celular
Bactéria
Micélio fúngico
Nematóide
Protozoário
Viróides
Fitoplasma/
Espiroplasma
Vírus

6. 1. Antes de ligar o microscópio à tomada, verificar se o potenciômeto da
lâmpada está no mínimo (caso não esteja, poderá queimar a lâmpada);
2. Verificar se a lente objetiva mirada à platina é a de menor aumento;
caso não esteja posicioná-la;
3. Baixar a mesa ao mínimo para evitar raspar a lente na lâmina colocada
sobre ela;
4. Colocar a lâmina sobre a mesa e subir lentamente até encontrar o foco
do objeto;
5. Para passar a lente objetiva para os próximos aumentos não há
necessidade de alterar a altura da mesa, mas sim, acertar o foco após a
mudança.
CUIDADOS ESPECIAIS PARA INICIAR A ANÁLISE
JAMAIS ARRASTE OU DÊ TRANCO NOS MICROSCÓPIOS!

7. Focalização ao microscópio óptico
Iniciar sempre com a objetiva de menor aumento
1. Objeto no centro da mesa
2. Ajustar a iluminação (maior quantidade de luz através do objeto)
3. Elevar a mesa até a altura máxima utilizando o macrométrico
4. Iniciar o processo de focalização, com a menor objetiva (10x)
abaixando vagarosamente a mesa com o macrométrico
5. Fazer a focalização fina – micrométrico
6. Mudar a objetiva (para 40x) e utilizar apenas o micrométrico
para focalização final
7. Acertar a quantidade de luz
8. Condensador deve permanecer sempre em posição elevada

8. 1. Baixe a luz à menor intensidade pelo potenciômetro;
2. Antes de remover a lâmina, baixe a mesa e volte à lente objetiva de menor
aumento;
3. Caso tenha utilizado óleo de imersão para observação na objetiva de 100X,
limpar cuidadosamente com etanol;
4. Remover a lâmina e substituir;
5. No caso da finalização das análises, a luz deverá ser desligada e guardá-lo nos
devido local.
6. Vale lembrar novamente que o microscópio jamais deverá ser arrastado para
mudança de local e deve-se evitar trancos, pois isso poderá danificar o núcleo
óptico do aparelho.
Ao finalizar a análise

9. Hifa cenocítica Hifa septada

10. Puccinia psidii Uromyces spp.

11. Pinta Preta do tomateiro

12. LFN1625- DOENÇAS DAS FRUTÍFERAS E HORTÍCOLAS
2º SEM/2014- SEGUNDAS-FEIRAS- 14:00/17:50 h.
PROF. RESPONSÁVEL: José Otávio Machado Menten
Monitora: Ticyana Banzato
Relatório de aula prática (Diagnose e Controle) – Aula ___________
Nome:_______________________________________________Data:___/___/___
Nº de Identificação do Material ______________________
Cultura:
Esquema do sintoma:
Esquema do sinal
Diagnóstico:
• Nome da doença:
• Nome do agente causal:
• Medidas de controle:

13. Bom trabalho!!!