O documento descreve um estágio em um centro veterinário, onde foram atendidos 601 animais de diversas espécies, com destaque para furões e aves. Aborda os procedimentos veterinários realizados, incluindo fluidoterapia, nutrição, desparasitação e anestesia, além de um foco em cuidados específicos para espécies exóticas. Conclui que, apesar das dificuldades, os objetivos do estágio em enfermagem veterinária foram cumpridos com sucesso.

1. Lisa D'Alva Sousa Nascimento Costa
Orientador Interno: Dr. Hugo Brancal
Orientador Externo: Dr. Joel Ferraz
Co-orientadora externa: Dra. Rute Almeida
2011

2. Conjunto de serviços veterinários, humanos e técnicos
para um amplo e variadíssimo conjunto de espécies
exceptuando Canis lupus familiares e Felis silvestris
catus.
Centro de referência vocacionado para consultas de
aconselhamento, profilaxia e tratamento de patologias dos
animais domésticos exóticos e autóctones.

3. Dr. Joel Ferraz, Dra. Rute Almeida, Dra. Francisca Gonçalvez

4. o Fluidoterapia e Nutrição, parenteral e enteral;
o Administrações de fármacos diversos, como sendo
antibióticos, anti-inflamatórios, desparasitantes e outros,
principalmente através das vias PO, IM e SC;
o Exame Físico e Monitorização de parâmetros vitais;
o Aconselhamento e atendimento ao cliente;
o Assistência às cirurgias;
o Limpeza, desinfecção e esterilização de material e
instalações;
o Realização de meios complementares de diagnóstico,
como sendo a realização de Rx e respectiva revelação,
esfregaços sanguíneos, análises parasitológicas fecais e
colorações romanowsky.

5. Estágio de 611 horas, com início no dia 13 de Junho e
término no dia 11 de Setembro de 2011.

6. Foram assistidos um total de 601 animais no CVEP.

7. O Mustela putorius furo representou 4% do total dos mamíferos
assistidos no CVEP.

8. Representou 44% dos Mamíferos assistidos no CVEP
Tosquia Terapêutica

9. Representou 32% dos Mamíferos assistidos no CVEP

10. Representou 7% dos Mamíferos assistidos no CVEP
Hipotermia - sob tapete térmico

11. Representou 4% dos Mamíferos assistidos no CVEP
Centese Abdominal

12. Representou 3% dos Mamíferos assistidos no CVEP
Sob Anestesia

13. Representou 2% dos Mamíferos assistidos no CVEP

14. As espécies com maior representação pertencem à ordem
Chelonioidea, seguidas da ordem Squamata, sub-ordem das
Serpentes, e Lacertilia.
24% de Répteis indicados como Outros (elevado nº de espécies).

15. Representou 22% dos Répteis assistidos no CVEP

16. Representou 15% dos Répteis assistidos no CVEP

17. Representou 14% dos Répteis assistidos no CVEP

18. Representou 8% dos Répteis assistidos no CVEP

19. Representou 6% dos Répteis assistidos no CVEP

20. Representou 6% dos Répteis assistidos no CVEP

21. Representou 5% dos Répteis assistidos no CVEP

22. A espécie com maior representatividade foi o passeriforme Serinus
canaria, seguido de espécies de grandes e pequenos psitacídeos.
28% de Aves recebidas indicadas como Outros (elevado nº de
espécies).

23. Representou 19% das Aves assistidas no CVEP
Massa Aural

24. Representou 14% das Aves assistidas no CVEP
Fluidoterapia IV

25. Representou 14% das Aves assistidas no CVEP

26. Representou 12% das Aves assistidas no CVEP

27. Representou 9% das Aves assistidas no CVEP

28. Representou 4% das Aves assistidas no CVEP

29. Actos Profiláticos: Vacinação, Desparasitação
Actos Estomatologia: Tratamentos Dentários e de Abcessos
Situações de Urgência: Dispneia, Hipo e Hipertermia, Prostração
Severa

30. Urgência: Anorexia, Desidratação, Fraqueza Generalizada
Actos Profiláticos: Desparasitação
Dermatologia: Dermatites Ulcerativas da Carapaça e Outras
Traumatologia: Fraturas

31. Actos Profiláticos: Desparasitação
Traumatologia: Alta Susceptibilidade a Acidentes
Dermatologia: Parasitoses, Picacismo, Corte de Voos

32. Figuras 21 e 22 – Tó e GigiFiguras 21 e 22 – Tó e Gigi

33. o Ordem dos carnívoros e à família dos mustelídeos.
Presume-se que descendam do Mustela putorius.
o Caça ao coelho, pesquisa biomédica e, animal de
estimação.
o D/L 211/2009 de 3 de Setembro, pela Nº 16 da Portaria
7/2010.

34. Possuem um corpo tubular longo com membros curtos, medindo em média 44 a 46
cm.
A fórmula vertebral é C7, T15, L5(6), S3, Cd 18 e o crânio é característico de carnívoro
(a apófise zigomática do osso frontal não alcança o osso zigomático).

35. o Esperança média de vida de 5 a 10 anos.
o Dormem 12 a 16 horas diárias.
o Fêmeas 0,6 a 1 Kg e Machos entre 1 a 2 Kg.
o Alteração sazonal na gordura corporal de 40%,
diminuindo o seu peso no verão e aumentando no
inverno.

36. o O osso peniano possui uma extremidade curva.
o A vulva, em anestro é uma pequena fenda, enquanto
que em fêmeas hormonalmente activas encontra-se
edemaciada.
o A actividade hormonal é fortemente influenciada por
factores externos como a quantidade de luz diária.
o A ovulação é induzida pelo coito.
o A anemia pós-estro pode ser fatal (toxicidade da medula
óssea, na sequência de elevados níveis crónicos de
estrogénio).

37. o Os furões são carnívoros e necessitam de uma dieta
adequada, elevada em proteína animal (30 a 40%),
gordura (18 a 30%) e baixa em hidratos de carbono e
fibra.
o A absorção de calorias derivadas de hidratos de carbono
é ineficaz.
o A ingestão de proteínas de origem vegetal pode
provocar cálculos urinários.
o A dieta e água devem estar disponíveis ad libitum.

38. O apoio do peso do
animal é fundamental
para prevenir lesões na
coluna vertebral e danos
nos fetos das gestantes.
Figura 24 – Contenção do Furão

39. o Peso, temperatura, mucosas, cavidade oral, pele e pêlo.
o Tempo de repleção capilar.
o Palpação de gânglios linfáticos, baço, bexiga urinária.
o Auscultação cardíaca e respiratória.
Figuras 25, 26 e 27 – Exame Físico

40. o A temperatura rectal normal é de 37,8º a 40º C.
o A frequência cardíaca é de 180 a 250
batimentos/minuto.
o A frequência respiratória é de 33 a 36
respirações/minuto.

41. o Vias: veias cefálica, jugular, cava cranial.
o 0,5-1 mL.
o Agulha de 22 a 27 gauge.
Figuras 28, 29 e 30 - Venipunctura da Veia Jugular,
Veia Cefálica e da Veia Cava Cranial.

42. o Manutenção de fluidos diária de 75 a 100 ml/kg.
o Via de administração SC, BID ou TID.
o 37º C.
o Não possuem antigénios detectáveis de diferentes
grupos sanguíneos.
o Excesso: dispneia, ruídos atípicos respiratórios ou
cardíacos.

43. o Vírus da Esgana e da Raiva.
o Reacções adversas: monitorização 30 minutos. Sinais
clínicos: vómito, diarreia, hematosquezia, sialorreia e
piréxia.
o Desparasitação semestral acompanhada de exame
coprológico.

45. No hemisfério cerebral esquerdo observa-se uma imagem com
características hipodensas, de densidade líquida e com uma
dimensão de cerca de 0,8 cm de diâmetro, constando a conclusão
do relatório num quisto sub-aracnóideo volumoso.

46. A preparação pré-anestésica consiste na sedação, tricotomia,
entubação endotraqueal e monitorização dos parâmetros vitais do
animal.

47. A língua longa do furão pode ser puxada rostralmente para expor a glote para
entubação endotraqueal. Tubos endotraqueais de 2-4mm podem ser
utilizados, consoante o tamanho do animal. A técnica é semelhante à
utilizada em gatos, podendo ser utilizada anestesia local na glote.

53. Monitorização pós-cirúrgica Térmica, Fluidoterapia, Oxigenoterapia.
O animal não resistiu ao procedimento, revelando alterações
neurológicas graves na fase de recuperação anestésica.

54. o É fundamental que o enfermeiro veterinário esteja dotado
de conhecimentos práticos e teóricos acerca das
espécies com que trabalha, nomeadamente, conhecendo
os diversos parâmetros vitais e na identificação de sinais
clínicos.
o O EV deve ainda estar habilitado a realizar a anamnese,
o exame físico do animal e o aconselhamento ao
proprietário acerca do maneio geral.
o Ainda que a área de animais exóticos seja
particularmente distinta, considera-se que tenha ocorrido
uma boa adaptação e que tenham sido cumpridos os
objectivos do estágio curricular em Enfermagem
Veterinária, no CVEP.

55.  Aristóteles, 2006. História dos Animais I, tradução de Maria de Fátima Sousa e Silva, Imprensa
Nacional-Casa da Moeda, Lisboa.
 Aspinall, V., 2003. Clinical Procedures in Veterinary Nursing, Elsevier.
 Ballard, B. & Rockett, J., 2009. Restraint and Handling for Veterinary Technicians and Assistants,
Delmar.
 Bensignor, E., 2010. “Carnívoros domésticos. El hurón” in: Dermatología de los NAC – Nuevos
Animales de Compañia, Esteve Veterinaria.
 Bixler, H.& Ellis, C., 2004. ”Ferret care and husbandry” in: Vet Clin Exot Anim 7 , 227–255,
Elsevier Saunders.
 Capello, V. & Lennox, A. M. 2008. “The Basics of Radiology” and “Ferret” in: Clinical Radiology of
Exotic Companion Mammals, Wiley-Blackwell, pp. 2-51 and 358-408.
 Carpenter, J. W., 2001. ”Ferrets” in: Exotic Animal Formulary, Elsevier Saunders, pp.447-472.
 Fish, R. E. & al, 2008. Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals, Second Edition,
American College of Laboratory, Animal Medicine Series, Second Edition.
 Fisher, P. G., 2006. “Ferret Behavior” in: Bays, T. B. & al, Exotic Pet Behavior: Birds, Reptiles
and Small Mammals, Saunders.
 Fudge, A. M., 2000. “Rabbit and Ferret Laboratory Medicine” in: Laboratory Medicine – Avian and
Exotic Pets, pp.265-291.
 Johnson-Delaney C., 1996. Exotic Companion Medicine Handbook, Wingers Publishing.
 Judah, V. & Nutall, K., 2008. Exotic Animal Care and Management, Thomson Delmar Learning.

56.  Lewington, J. H., 2007. Ferret Husbandry, Medicine and Surgery, Second Edition, Saunders
Elsevier.
 Longley, L., 2008. Anaesthesia of Exotic Pets, Saunders Elsevier. Pp. 85-93.
 Mitchell, M. A. & Tully, T. N., 2009. “Ferrets” in: Manual of Exotic Pet Practice, Saunders
Elsevier, pp.345- 373.
 Moore, M., & all, 2000. BSAVA Manual of Veterinary Nursing, BLACKWELL.
 Oglesbee, B. L., 2006. “Ferret” in: The 5-Minute Veterinary Consult – Ferret and Rabbit,
Blackwell Publishing, pp. 2-174.
 O’Malley B., 2005. “Ferrets” by Lewington, J. H. in: Clinical Anatomy and Physiology of Exotic
Species, Elsevier Saunders, pp-257-258.
 O’Malley B., 2007. “Hurones” in: Anatomía Y Fisiología Clínica de Animales Exóticos, Servet, pp.
295-318.
 Paterson, S., 2006. “Skin Diseases and Treatment of Ferret”, by Meredith A. in: Skin Diseases of
Exotic Pets, Blackwell Publishing, pp.204-219.

57.  Quesenberry, K. E. & Carpenter, J. W., 2003. Ferrets, Rabbits and Rodents, Clinical Medicine
and Surgery, Second Edition, Saunders.
 Rosenthal, K. L., 1998. “Bacterial Infections and Antibiotic Therapy in Small Mammals” in:
Antimicrobial Therapy in Exotics, Vol. 20, No. 3(A), Bayer.
 Rosenthal, K. L., 2008. Rapid Review of Exotic animal medicine and husbandry, Manson
Publishing, London.
 Silverman, S. & Tell, L. A. 2005. “Radiology Equipment and Positioning Techniques” and
“Domestic Ferret (Mustela putorius)” in: Radiology of Rodents, Rabbits, and Ferrets – An Atlas of
Normal Anatomy and Positioning, Elsevier Mosby, pp. 2-8 and 232-289.
 Soto, J. C., 2008. “Mustélidos” in: Atlas Visual de Patologías Dentales y Orales, Servet, pp-431-
438.
 Wanamaker, B. P. & Massey, K. L., 2009. Applied pharmacology for Veterinary Technicians, forth
edition, Saunders.