Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing

Tujuan Pembelajaran Umum
Tujuan Pembelajaran Khusus
Kegiatan Praktikum
1
I
Setelah menyelesaikan kegiatan praktikum 1, diharapkan
Anda mampu mememahami cara pengelolaan spesimen
tinja, melakukan pemeriksaan makroskopis, dan
mikroskopis tinja untuk parasit cacing.
TUJUANPembelajaran Umum
TUJUANPembelajaran Khusus
Setelah mempelajari pembelajaran
yang diuraikan pada Kegiatan
Praktikum 1, Anda diharapkan mampu
1. Menjelaskan cara pengumpulan,
penanganan dan pengiriman
spesimen tinja
2. Menjelaskanprosedurpemeriksaan
tinja makroskopis
3. Menjelaskanprosedurpemeriksaan
tinja mikroskopis secara langsung
A. Pokok – Pokok Materi
1. Pengelolaan spesimen tinja.
2. Pemeriksaan tinja makroskopis
3. Pemeriksaa tinja mikrokopis
langsung
4. Pemeriksaan tinja cara
pengapungan
5. Pemeriksaan anal swab
Pemeriksaan Parasit Cacing

Modul Pendidikan Jarak Jauh, Pendidikan Tinggi Kesehatan Prodi Keperawatan
2
1. Pengelolaan Spesimen Tinja
Untuk mendapatkan spesimen feses/tinja yang benar, penting untuk
memberikan penjelasan pada pasien tentang cara pengambilan tinja, yaitu:
a. Feses tidak boleh tercampur dengan air kloset (karena dapat mengandung
organisme bentuk bebas yang menyerupai parasit manusia) atau urin (karena
urin dapat menghancurkan organisme – organisme yang bergerak)
b. Bila memungkinkan, dianjurkan pada pasien agar pada saat buang air besar, feses
langsung ditampung dalam wadah. Bila tidak, feses ditampung di alas plastik,
lalu diambil sebanyak 5 gram atau satu sendok teh dari tinja yang berlendir atau
berdarah dan masukkan ke dalam wadah.
c. Untuk menjaga agar contoh feses tidak cepat mengering.
d. Penampung /sediaan wadah harus bersih, kering, seyogyanya bermulut lebar dan
tertutup (agar tidak mudah tumpah). Untuk setiap pemeriksaan, bisa diberikan
pada pasien salah satu dari penampung berikut :
1) Kardus yang berlapis lilin
2) Kaleng yang bertutup
3) Penampung dari bahan plastik yang ringan
4) Botol gelas yang khusus dibuat untuk penampugan spesimen feses, yang
dilengkapi sendok yang melekat pada tutupnya.
e. Beri label pada wadah, feses dikirim bersama formulir permintaan pemeriksaan.
Spesimen feses setelah dikumpulkan harus diperiksa sesegera mungkin (dalam
waktu 15 menit, maksimum 1 jam setelah pengumpulan). Bila menerima beberapa
contoh feses pada waktu bersamaan, dahulukan pemeriksaan feses cair atau feses yang
mengandung darah atau berlendir (bisa jadi mengandung amuba yang motil yang cepat
mengalami kematian. Spesimen yang paling baik adalah feses segar, dan spesimen feses
hendaknya disimpan dalam lingkungan yang hangat karena dalam lingkungan dingin
gerak amuboidnya berkurang.
Uraian Materi

3
3
Spesimen dengan pengawet. Bila tinja tidak dapat segera diperiksa, spesimen
sebaiknya diberi pengawet, dengan tujuan mengawetkan morfologi protozoa dan
mencegah berkembangnya telur /larva. Beberapa larutan pengawet yang umum
digunakan adalah :
1) Formalin 5% atau 10%.
Biasanya 5% untuk mengawetkan protozoa; 10% untuk telur dan larva cacing.
Pemeriksaan spesimen hanya dapat dilakukan melalui sediaan basah saja.
2) Merthiolate-Iodine-Formalin (MIF).
Baik untuk berbagai stadium dan semua jenis sampel. Terutama digunakan
dilapangan, pemeriksaan spesimen biasanya dilakukan melalui sediaan basah.
3) Sodium Acetate-Acetic Acid-Formalin (SAF).
Mirip formalin 10%, digunakan untuk teknik konsentrasi dan sediaan pulas permanen
(HE). Bisa digunakan sebagai pengawet tunggal di laboratorium karena telur, larva,
cacing, kista dan trofozoit bisa diawetkan dengan metode ini
4) Schaudinn.
Digunakan untuk spesimen tinja segar atau sampel dari permukaan mukosa usus à
dibuat sediaan hapusan permanen.
5) Polyvinyl Alkohol (PVA).
Biasanya digunakan bersama dengan Schaudinn. Keuntungan: dapat dibuat sediaan
hapus dengan pulasan permanen. Sangat dianjurkan untuk pemeriksaan Kista dan
Trofozoit yang akan diperiksa dikemudian hari (jika perlu waktu pengiriman yang
lama).
Cara pengawetan tinja adalah sebagai berikut :
a) Pembuatan Larutan PVA. Tambahkan 10 gram bubuk PVA ke dalam campuran
62,5 ml etil alkohol 95% dengan 125 ml larutan merkuri klorida, dan 10 ml asam
cuka glasial, dan 3 ml gliserin. Tanpa diaduk, panaskan secara perlahan sampai
suhu mencapai 75oC, baru diaduk sampai homogen.
b) Tuangkan 30 ml PVA ke dalam botol ( ± ¾ volume botol).
c) Tambahkan spesimen tinja segar, sehingga botol penuh ( ± ¼ volume botol).
d) Hancurkan dan ratakan tinja dengan cara diaduk dengan pengaduk gelas.

4
e) Diamkan botol yang berisi tinja dan larutan PVA minimal selama 30 menit.
f) Pengawetan ini bisa untuk semua parasit, dan bisa dipertahankan dalam jangka
waktu yang lama.
2. Pemeriksaan Makroskopis Tinja
Pemeriksaan Tinja makroskopis dilakukan sebelum dilakukan pemeriksaan
mikroskopis, dengan memperhatikan konsistensi (keras, lunak, cair), warna (kuning,
putih, hijau/hitam) dan tanda – tanda abnormal (bau tinja; amis seperti ikan, atau bau
busuk), lendir, darah, nanah, potongan jaringan, sisa makanan (lemak, serat2; sisa
obat: zat besi, magnesium/barium) dan cacing). Cacing Enterobius (kremi) dan cacing
Ascaris (gelang), sering keluar bersama tinja dan dapat dikenali dengan mudah jika
cacingnya masih bergerak. Demikian pula dengan proglotid cacing pita. Namun pada
pemeriksaan yang terlambat, proglotid dapat mengering dan melingkar menyerupai
cacing gelang. Untuk mengembalikan ke bentuk semula dapat dibasahi dengan air.
Periksa satu rantai segmen untuk mengamati susunan dari lateral pore-nya.
Taenia saginata: tidak teratur
Taenia solium: teratur
Haemodium nana: pada sisi yang sama
D,cranium: dua pore pada sisi yang berlawanan pada masing-masing segmen.
3. Pemeriksaan Mikroskopis Tinja Secara Langsung
Pemeriksaan mikroskopis tinja dapat dilakukan dengan beberapa macam
pemeriksaan melalui tiga cara yaitu :
a. Cara langsung
Pemeriksaan sediaan basah dengan pengecatan langsung (Direct wet mount).
Pemeriksaan tinja mikroskopik langsung harus dilakukan sebelum dilakukan
pemeriksaan dengan metoda konsentrasi, karena bentukan parasit yang
motil tidak akan ditemukan pada sediaan konsentrasi
b. Cara konsentrasi

5
Jika jumlah parasit dalam spesimen tinja adalah rendah, pemeriksaan preparat
basahdirecttidakdapatmendeteksiparasit,makatinjaharusdikonsentrasi. Telur,
kista dan larva utuh setelah prosedur konsentrasi sedangkan trofozoit bisa
hancur selama proses. Pemeriksaan parasit yang sering kali disebut tehnik
memperkaya (Enrichment technique), memungkinkan untuk memeriksa dan
mendeteksi lebih banyak parasit dalam sedikit tinja. Terdapat tiga cara yang
dilakukan yaitu: pengapungan tinja /Fecal flotation), cara sedimentasi/ cara
endap dan cara biakan
c. Cara Pengenceran
Cara ini dipakai untuk menghitung jumlah telur cacing yang dikeluarkan
bersamaan dengan tinja. Ada kegunaan peghitungan jumlah telur cacing,
yaitu menetukan beratnya infeksi dan mengevaluai hasil pengobatan.
1.1 Pengecatan langsung (Direct wet mount)
Metode ini dipergunakan untuk pemeriksaan secara cepat
dan baik untuk infeksi yang berat, tetapi untuk infeksi yang ringan
sulit ditemukan telur-telurnya.
1) Alat dan bahan
a. Gelas obyek
b. Gelas penutup 20 mm x 20 mm
c. Lidi
d. Pensil untuk label
e. Larutan Nacl 0,9% (garam faali)
f. Larutan lugol iodin
g. Mikroskop
2) Prosedur pemeriksaan
1) Teteskan 1 tetes larutan garam faali dibagian tengah dari separo bagian
kiri kaca obyek; dan 1 tetes larutan lugol iodin dibagian tengah separoh
yang kanan.

6
2) Ambil sedikit spesimen tinja menggunakan lidi.
a) Bila tinja berbentuk padat, ambil dari bagian dalam dan bagian
permukaan.
b) Bila tinja berbentuk cair, ambil dari bagian permukaan cairan atau
permukaan berlendir
3) Campur spesimen tinja dengan larutan garam faali pada kaca obyek
sebelah kiri.
4) Ambil spesimen dan campur dengan larutan iodin pada kaca obyek
sebelah kanan.
5) Tutup masaing-masing spesimen dan kaca penutup (sedapat mungkin
hindari timbulnya gelembung udara) (gambar 1).
6) Periksa sediaan di bawah mikroskop
a) Untuk sediaan dengan larutan garam faali gunakan lensa obyek 10
kali dan 40 kali, dimulai dari sebelah pojok kiri atas.
b) Untuk sediaan dengan larutan iodine, gunakan lensa obyek 40 kali.
c) Pada pemeriksaan telur yang tidak berwarna, untuk meningkatkan
kontras dapat dilakukan dengan pengurangan jumlah sinar dengan
mengatur celah kondensor atau merendahkan letak kondensor.
7) Untuk meyakinkan tidak ada lapang pandang yang terlewati, letakkan kaca
obyek pada tepi lapangan pandang dan gerakkan kaca obyek melintasi
microscope stage, periksa kaca obyek sampai tepi andangan yang lain

7
Gambar 1 : Pengecatan langsung (Direct wet mount)
1.2 Cara sediaan tebal kato
Sebagai pengganti kaca tutup pada teknik pengecatan langsung,
digunakan sepotong selofan. Dengan teknik ini lebih banyak telur
cacing dapat diperiksa sebab digunakan lebih banyak tinja. Teknik ini
dianjurkan juga untuk pemeriksaan tinja secara massal karena lebih
sederhana dan murah. Morfologi telur cacing cukup jelas untuk membuat
diagnosis
1) Alat dan bahan
a. Kaca obyek
b. Kertas selofan ukuran 26 x 28 mm
c. Larutan untuk membuat selophane terdiri atas (100 ml gliserin,
100 ml air, 1ml larutan malakit dalam air 3%)
d. Rendam selofan dalam larutan tersebut di atas sebelum dipakai
selama > 24 jam
e. Spesimen tinja
f. Mikroskop

8
2) Prosedur
a. Letakkan spesimen tinja 20 -50 mg (sebesar kacang tanah) di atas kaca
obyek.
b. Tutup tinja dengan kertas selofan
c. Tekan sediaan diantara kertas selofan dan kaca obyek dengan tutup botol
karet supaya tinja menjadi rata sampai menyebar di bawah selofan
d. Keringkan larutan yang berlebihan dengan kertas saring
e. Diamkan selama ½ - 1 jam pada suhu kamar
f. Periksa sediaan di bawah mikroskop dengan cahaya terang (gambar 2)
Gambar 2 : Tehnik sediaan tebal (metoda Kato)
4. Pemeriksaan metode konsentrasi: cara apung (flotation methode)
Prinsip : tinja dicampur dengan larutan jenuh sodium klorida (larutan jenuh
garam dapur) dengan berat jenis 1200 gram/cc sehingga telur yang lebih ringan
daripada BJ larutan akan terapung di permukaan sehingga mudah dikumpulkan
dan kemudian diambil sebagai bahan pemeriksaan. Pemeriksaan ini hanya berhasil
untuk telur-telur Nematoda, Schistosoma, Dibothriocephalus, telur yang berpori-pori
dari famili Tainidae, telur-telur Acanthocephala ataupun telur Ascaris yang infertil
dan terutama dipakai untuk pemeriksaan feces yang mengandung sedikit telur.
Kerugiannya mengakibatkan larva dari Schistosoma sp, Strongyodes sp, Necator
americanus, Ancylostoma duodenale dan kista protozoa menjadi sangat menciut.
Sebaliknya, telur Opisthorchis sp dan Clonorchis sinensis berat jenisnya lebih besar
dari 1200 gram/cc sehingga mengendap.

9
1) Alat dan bahan
a. Botol volume 10 ml
b. Lidi
c. Kaca penutup
d. Etanol
e. Eter
f. Cawan petri
g. Larutan jenuh garam dapur (larutan Willis).
Cara pembuatan larutan Willis : campurkan 125 gram sodium klorida dengan
500 ml akuades. Panaskan campuran sampai titik didih dan biarkan dingin.
Bila semua garam telah larut, tambahkan 50 gram lagi. Saring dan simpan
dalam botol yang tertutup.
2) Prosedur
a. Siapkan kaca penutup bersih bebas dari lemak
b. Buat campuran 10 ml etanol 95% dan 10 ml eter
c. Tuangkan campuran tadi ke dalam cawan petri, dan masukkan ke dalamnya
30 kaca penutup satu persatu, kocok dan biarkan selama 10 menit
d. Keluarkan kaca penutup satu – persatu dan keringkan dengan kain kasa
dan simpan pada cawan petri yang kering.
e. Ambil spesimen tinja sebanyak ± 2 ml dan masukkan ke dalam botol.
f. Tuangkan larutan jenuh garam dapur ke dalam botol sampai ¼ volume
botol.
g. Dengan lidi atau pengaduk, hancurkan tinja dan campur dengan rata. Bila
terdapat serat-serat selulosa disaring terlebih dahulu dengan penyaring
teh
Selanjutnya ada 2 cara :

10
1) Didiamkan selama 5-10 menit, kemudian dengan ose diambil larutan
permukaan dan ditaruh di atas kaca objek. Kemudian ditutup dengan
gelas penutup/cover glass. Periksa di bawah mikroskop. ( Gambar 3 )
2) Tuangkan lagi larutan jenuh garam dapur sampai batas permukaan
botol/tabung, letakkan atau tutupkan kaca obyek, sehingga menutupi
botol. Pastikan bahwa kaca penutup kontak dengan cairan dan tidak
ada gelembung udara, biarkan selama 10 menit, Angkat kaca penutup,
setetes cairan akan menempel. Tempatkan kaca penutup di atas kaca
obyektif dan segera periksa di bawah mikroskop ( menghindari sediaan
cepat kering).

Gambar 3 : Metode apung tanpa disentrifugasi
5. Pemeriksaan anal swap
Telur Enterobius vermikularis biasanya dikumpulkan pada cekungan kulit
disekitar anus, dan jarang ditemukan pada tinja. Pemeriksaan dilakukan pada
pagi hari sebelum anak kontak dengan air, anak yang diperiksa berumur
1 – 10 tahun.
1) Alat dan bahan
a. Mikroskop
b. Kaca obyek
c. lidi kapas
d. Tabung reaksi

11
e. Pipet pasteur
2) Prosedur
a. Usapkan lidi kapas pada daerah sekitar anus
b. Celupkan lidi kapas ke dalam tabung yang berisi 5 ml larutan sodium klorida.
c. Cuci kapas lidi dalam larutan di tabung
d. Isap larutan dengan pipet pasteur dan pindahkan ke kaca penutup dan tutup
kaca penutup
e. Periksa sediaan di bawah mikroskop dengan memakai lensa obyektif 10 x dan
dengan mengurangi celah kondensor.
Contoh gambar telur parasit cacing dapat dilihat pada gambar 4 dan gambar 5
Gambar 4 : Rekapitulasi telur nematoda dan cestoda usus

12
Gambar 5 : Telur trematoda yang ditemukan dalam spesimen tinja

13
A. Lembar kerja praktikum parasitologi
Kegiatan 1 : Pemeriksaan Tinja (Parasit Cacing)
Hari/tanggal : …………………
Nama : …………………
Kelompok : …………………
1) Pemeriksaan tinja Makroskopis : ..................................................................... ..
..........................................................................................................................
Mikroskopis :
TelurCacing
Metode
Sediaanbasah(Direct wet
mount)
Jumlah
Eosin Nacl0,9% Lugol
Tebal
Kato
Apung
Anal
swab
Ancylostoma
duodenale
Necator
americanus
Strongyloides
stercoralis
Trichuris
trichiura
Ascaris sp.
Enterobius
Vermikularis
Paraf Dosen

14
2) Gambarkan Kenampakan telur atau larva cacing parasit pada preparat tinja
(lengkap dengan keterangan gambar)
3) Kesimpulan
.......................................................................................................................

Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing

Recomendados

Recomendados

Mais conteúdo relacionado

Mais procurados

Mais procurados (20)

Destaque

Destaque (11)

Semelhante a Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing

Semelhante a Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing (20)

Mais de pjj_kemenkes

Mais de pjj_kemenkes (20)

Último

Último (20)

Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing