2. FÓRMULA ROJA

4. HEMATOCRITO

5. TECNICA
1. Llenar el tubo de wintrobe, o tubo
capilar con sangre venosa
2. Centrifugar 60 o 15 minutos
3. Para el caso del tubo capilar, aplicar la
regla de 3.

6. RECUENTO DE
GLÓBULOS ROJOS

7. PROCEDIMIENTO DE LA PRÁCTICA
1. Con la pipeta de
Thoma para glóbulos
rojos, aspirar sangre
hasta la marca de 05;
secar
cuidadosamente la
parte exterior de la
punta de la pipeta.

8. 2. Completar con liquido de gower hasta la marca de
11. ( dilución 1:20 )
3. Agitar 2 minutos
4. Desechar las primeras 4 o 5 gotas y se carga la
cámara de Neubauer

9. 5. CONTEO ERITROCITARIO

10. RESULTADO
• Eritrocitos por mm3= N X 10,000
• VALORES NORMALES:
– Hombres 5.4 – 5.9 x 10 / mm
10 / L
–
Mujeres 4.7 – 5.3 x 10 / mm
5.3 x 10 / L
5.4 – 5.9 x
4.7 –

12. TECNICA
1. Clocar en un tubo de 13 x 100 mm, 5 ml de reactivo de
Drabkin.
2. Homogenizar perfectamente la muestra.
3. Empleando una boquilla, tomar con la pipeta de Salí 0.02
ml de sangre, aforar cuidadosamente y limpiar la sangre
adherida en el exterior de la pipeta.
4. Transferir el volumen de muestra al tubo que contiene el
reactivo de Drabkin y mezclar cuidadosamente. Enjuagar 3
veces la pipeta en la dilución.
5. Dejar reposar durante 10 minutos y leer contra un blanco
de reactivos ( reactivo de Drabkin ). Interpolar las lecturas
en la curva de calibración. La reacción es estable un
mínimo de 2 horas.

14. • VOLUMEN CORPUSCULAR MEDIO (VCM)
– El VCM puede determinarse a partir de la siguiente
formula: Se multiplica el hematocrito (%) por diez y de
divide entre el numero de hematíes en millones. Los
resultados se expresan en fetmolitros (fl)
• HEMOGLOBINA CORPUSCULAR MEDIA (HCM)
– La HCM puede determinarse a partir de la siguiente
formula: Se multiplica la hemoglobina (g/dl) por diez y
se divide entre el número de hematíes en millones. El
resultado se expresa en picogramos (pg)
• CONCENTRACIÓN DE HEMOGLOBINA
CORPUSCULAR MEDIA (CHCM)
– El CHCM puede determinarse a partir de la siguiente
formula: Se multiplica la hemoglobina (g/dl) por diez
al cuadrado (100) y se divide entre el hematocrito (%)

15. VELOCIDAD DE SEDIMENTACION
GLOBULAR

16. TÉCNICA

17. FÓRMULA BLANCA

19. LOS LEUCOCITOS Y SU FUNCIÓN
• Monomorfonucleares
– Monocitos.
– Linfocitos.
• Polimorfonucleares.
– Neutrófilos.
– Eosinófilos.
– Basófilos.

21. FUNDAMENTO DE LA PRÁCTICA
• Ésta práctica es de utilidad para cuantificar y
cualificar las células sanguíneas.
• Cuanti– Plaquetas.
– DIFERENCIAL.
• Cuali– Morfología celular.
– Organismos patógenos

22. PROCEDIMIENTO DE LA PRÁCTICA
1. Realizar el frotis.
(Dejarlo secar).

23. 2. Teñir con colorante de Wright. (Esperar de 2 a 3
minutos).
3. Agregar el agua destilada y homogenizar. (De 5 a 10
minutos).

24. 4. Enjuagar con agua destilada y dejar secar.
5. Enfocar con el objetivo de inmersión.

25. 6. CONTEO DIFERENCIAL
• Monomorfonucleares
– Monocitos.
– Linfocitos.
• Polimorfonucleares.
– N. Segmentados.
– Eosinófilos.
– Basófilos.
• Blastos
– N. banda
– Mielocitos
– Meta-; pro-; -blastos.

26. VALORES NORMALES
•
•
•
•
•
•
•
•
Monocitos.
Linfocitos.
N. Segmentados.
Eosinófilos.
Basófilos.
N. banda
Mielocitos
Meta-; pro-; -blastos.
2-8 %
20-40%
40-60%
1-4%
0-1%
0-3%
0%
0%

28. FUNDAMENTO
• Leucocitosis.
• Leucopenia.

29. PROCEDIMIENTO DE LA PRÁCTICA
1. Con la pipeta de
Thoma para glóbulos
blancos, aspirar
sangre hasta la marca
de 05; secar
cuidadosamente la
parte exterior de la
punta de la pipeta.

30. 2. Completar con liquido de Turk hasta la marca de 11.
( dilución 1:20 )
3. Agitar 2 minutos
4. Desechar las primeras 4 o 5 gotas y se carga la
cámara de Neubauer

31. 5. CONTEO LEUCOCITARIO

32. RESULTADO
• Leucocitos por mm3= N X 50
• VALORES NORMALES: 4000- 11000

33. FÓRMULA TROMBOCÍTICA

35. Coagulación

37. FUNDAMENTO
• Trombocitopenia
• Tombocitosis

38. PROCEDIMIENTO DE LA PRÁCTICA
• 1.- Cargar Con la muestra de
sangre un pipeta de thoma
para glóbulos rojos hasta la
marca de 1.0
• 2.- Limpiar cuidadosamente la
sangre adherida al exterior de
la pipeta.

39. • 3.- Completar el volumen hasta la marca de
101 con el liquido diluyente de plaquetas o
oxalato de amonio al 1% ( según el método a
emplear ) dilución 1: 100
• 4.- Mezclar el diluyente y la sangre con
agitación durante 3 a 5 minutos

40. • 5.- Descartar las primeras 4-5 gotas de la
pipeta y cargar la cámara de Neubauer.

41. • 6.- Prepara una caja de petri con papel
filtrahumecido sobre este unos soportes de
madera para dejar reposar la cámara durante
15 minutos.

42. 7.- CONTEO

43. RESULTADOS
• Plaquetas por mm3= N X 1000
• Valores normales: 150,000- 450,000