coriza infeciosa aviar

1. BENEMÉRITA UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE PUEBLA
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y
ZOOTECNIA
SALUD AVÍCOLA
CORIZA INFECCIOSA
Rene Rosas Jerónimo

2. La bacteria Avibacterium paragallinarum (antes denominada
Haemophilus paragallinarum) es el agente causal de la coriza
infecciosa, una enfermedad del tracto respiratorio superior de
pollos y gallinas.
El impacto económico de la coriza infecciosa se refleja en:
Producción de huevo (por desbalance nutricional )
Aves desechadas.
Crecimiento (por desbalance nutricional ).

3. Varios estudios mostraron el requerimiento de los factores
de crecimiento X (hemina) y V (NAD, dinucleótido de
adenina nicotinamida) para el cultivo in vitro de A.
gallinarum. Sin embargo señalaron la independencia del
factor X de crecimiento.
Basados en esos estudios Biberstein y White propusieron la
especie A. paragallinarum para los m.o. causantes de C.I.
dependientes del factor V pero independientes de factor
X.

4. DISTRIBUCIÓN
Tiene una distribución mundial a excepción de Nueva
Zelanda único país que parece estar libre de A.
paragallinarium.
En México se han informado brotes de coriza infecciosa
en los estados de Sonora, Jalisco, México, Michoacán,
Morelos, Puebla y Yucatán

5. TAXONOMÍA
 Superreino : Procaryotae
 Reino : Eubacteria
 División: Gracilicutes
 Clase : Protobacteria
 Familia : Pasteurellaceae
 Genero : Haemophilus
 Especie : A. paragallinarum

6. A. paragallinarum es un bacilo gramnegativo, inmóvil, no
esporulado, con poca resistencia a desinfectantes comunes,
presenta escasa resistencia a los agentes atmosféricos y se
inactiva en pocos minutos a 50°C.
Mide de 1 a 3 µm de longitud por 0.4 a 0.8 µm.
Específico de las gallinas, Se conocen tres serotipos
(A,B,C)que difieren en cuanto a su antigenicidad.

7. PERIODO DE INCUBACION
El periodo de incubación de la coriza infecciosa es de 1 a 14 días
después de la inoculación de aves con cultivo vivo o exudado
infeccioso, estos pueden variar dependiendo de la exposición.
48 horas vía nasal
72 horas aves en jaula
4 días con agua infectada
6-14 días por vía aérea.

8. TRANSMISION, PORTADORES Y VECTORES
Directa: mediante exudados nasales.
Indirecta: a través de comederos y bebederos contaminados. Es muy
frecuente la introducción de la enfermedad a través de aves de
reposición asintomáticas.(traspatio)
Por contacto con animales infectados sus secreciones nasales u
oculares.
Gotitas transportadas por el aire y el agua de bebida contaminada.

9. Los brotes de coriza ocurren frecuentemente en otoño e
invierno .
No se ha demostrado que los gorriones silvestres (Paser paser)
estén implicados como vectores; sin embargo estudios
epidemiológicos sugieren que este m.o. puede ser introducido
en granjas aisladas por vía aérea.

10. SINTOMAS
Disnea (dificultad para respirar)
Depresión.
Secreción nasal serosa o mucosa.
Estornudo.
Lagrimeo
Inflamación de cara barbilla en machos y senos infraorbitrarios.
Tumefacción facial.
Edema alrededor de los ojos.
Conjuntivitis.
Anorexia
Diarreas

11. Se ha observado un cuadro respiratorio mas severo en
casos donde se asocia A. paragallinarum con otros
agentes: Mycoplasma sinoviae, M. gallisepticum,
Ornithobacterium rhinotracheale, E. coli, Salmonella
psittaci y el virus de la viruela aviar en reproductores
pesados.

12. Alta morbilidad y baja mortalidad (tratamiento oportuno)
Las aves afectadas que están en el periodo de postura pueden sufrir
una de 5% a 10% en la producción de huevos y en algunos casos
hasta del 40% al 100% (pérdida total).
El ave queda como "portadora sana".

13.  En pollos de engorda la infección puede causar:
 Retraso del crecimiento.
 Incremento en el número de aves que deben ser eliminadas.
 Aerosaculitis que causa decomisos en la planta de sacrificio
 Asociación con y/o oportunidad para bronquitis infecciosa y E.
coli.
 Celulitis fibrinopurulenta en la cabeza y la barbilla.

14. Entre los años 2008 y 2010, 14 cepas de A. paragallinarum fueron
identificadas como serovariedad C-1 en México. Todas las cepas
fueron aisladas de gallinas ponedoras comerciales que presentaban
coriza infecciosa a pesar de una historia de vacunación. Hasta hace
poco, los serotipos A-1, A-2, B-1 y C-2 fueron los serotipos prevalentes
en México. El serotipo C-1 se ha identificado en Japón y
recientemente en Ecuador.

15. Un estudio sugiere que A. paragallinarum serovariedad C-
1 es un serotipo emergente en México. Los resultados
indican que los aislamientos mexicanos de A.
paragallinarum serovariedad C-1 pueden tener una
relación clonal. El conocimiento de la diversidad genética
de la A. paragallinarum puede ser de utilidad para
comprender el desempeño de la vacuna y para
identificar la mejor combinación para lograr una
protección más amplia.

16. DIAGNOSTICO
Examen mediante los síntomas clínicos
Bacteriológico: Aislamiento de aves con signos agudos, en forma
esterilizada, con una incisión del seno infraorbitario, se separa la
piel y se introduce un hisopo estéril humedecido en un caldo
nutritivo o solución tamponada de fosfato a pH neutro.
Para la siembra de los hisopos pueden utilizarse placas den base
de agar, o agar Columbia con 7 % de sangre de bovino u ovino
con el agregado de cepas nodriza de Staphylococcus spp. Las
cuales eliminan el factor V.

17. Diagnóstico diferencial:
 Bronquitis infecciosa
 Enfermedad de Newcastle
 Viruela aviar
 Enfermedad respiratoria crónica
 Pasteurelosis
 Avitaminosis A

18. CONTROL Y PREVENCION
Por medio de la vacunación a todas las aves de la explotación.
Un adecuado plan sanitario.
Buenas medidas de bioseguridad.
Desinfección de la nave.
Los programas de vacunación contra coriza infecciosa no evitan
que las aves se infecten, pero aminoran los signos de la enfermedad
y reducen en buena proporción la eliminación y diseminación de la
bacteria.

19. Vacunación
En pollos de engorda se recomiendan una a dos aplicaciones entre
los 8 y 35 días de edad.
En aves destinadas a la producción de huevo se sugiere aplicar en 2
a 3 ocasiones durante la crianza, siendo la última 4 a 6 semanas
antes del inicio de la postura.

20. TRATAMIENTO
Entre los agentes terapéuticos más utilizados cabe citar la
sensibilidad a la enrofloxacina, y mostraron seceptibilidad a la
oxitetracixlina, gentamicina, fosfomicina, amoxicilina y trimetoprima,
entre otros antimicrobianos.

21. Evaluación de serotipo de avibacterium paragallinarum por el uso de una
múltiple reacción en cadena de polimerasa (mPCR).
12 cepas de referencia y 69 aislamientos de campo de la Av. paragallinarum
de Ecuador, México, Panamá y Perú se incluyeron en el estudio.
La especificidad y la sensibilidad de la prueba de PCR fue como sigue: 82,6%
y 87,3% (serogrupo A), 85,7% y 71,9% (serogrupo B), y 46.3% y 100% (serogrupo
C)
La PCR hizo ceder algunos aislados que eran no tipificables mediante el
ensayo convencional a un serovar. Sin embargo, dado el bajo rendimiento
general del ensayo de PCR, no es posible concluir si los resultados de PCR
para estas cepas no tipificables son realmente correcto.

22. El estudio original en el mPCR describió una tecnología alternativa de ensayo en
el que un PCR utilizando un conjunto diferente de cebadores es seguido por un
análisis de polimorfismo de longitud de fragmentos de restricción para generar
patrones de serogrupo-específico Esta segunda tecnología sólo ha sido evaluada
también con un conjunto muy limitado de cepas. Por lo tanto, esta tecnología
alternativa también necesita una evaluación a fondo, ya que también puede
tener las mismas limitaciones que se han encontrado para la PCR en el estudio
actual.
El pobre desempeño de la mPCR en términos de reconocimiento del serogrupo C
aísla (baja sensibilidad de 46,3%) y el relativamente alto nivel de incertidumbre
acerca de la exactitud de los resultados del serogrupo A y B (especificidad del
87,3% y 71,9%, respectivamente) medios que el ensayo no se puede recomendar
como un reemplazo para la serotipificación convencional.

23. Bibliografía
 V. Morales-Erasto, A. García-Sánchez, C. Salgado-Miranda, M. Talavera-Rojas, F. Robles-Gonzalez, P.
J. Blackall, and E. Soriano-Vargas (2011) ERIC-PCR Genotyping of Emergent Serovar C-1 Isolates of
Avibacterium paragallinarum from Mexico. Avian Diseases: December 2011, Vol. 55, No. 4, pp. 686-
688.
 Haemophilus paragallinarum: Etiología de la coriza infecciosa. Edgardo Soriano Vargas* Horacio
Raúl Terzolo
 Multilocus sequence phylogenetic analysis of Avibacterium. M. Bisgaard, N. Nørskov-Lauritsen, S. J. de
Wit, C. Hess and H. Christensen .
Draft Genome Sequence of Avibacterium paragallinarum Strain 22. Fuzhou Xu, Deyuan Miao, Yu Du,
Xiaoling Chen, Peijun Zhang, Huiling Sun.
An evaluation of serotyping of Avibacterium paragallinarum by use of a multiplex polymerase chain
reaction. ladimir Morales-Erasto, José de Jesús Posadas-Quintana, Manolo Fernández-Díaz, Luis E.
Saravia, José Simón Martínez-Castañeda, Patrick J. Blackall, Edgardo Soriano-Vargas