Este documento presenta información sobre el manejo y estudio de la mosca de la fruta (Drosophila melanogaster). Incluye objetivos, tipos de moscas, ciclo de vida, medios de cultivo, técnicas de anestesia, diferenciación de sexos y estudios de Morgan sobre esta especie.

1. Republica Bolivariana de Venezuela
Ministerio del poder popular para la Educación
U.E “Colegio Cristo Rey”
San Cristóbal-Estado Táchira
Manejo y estudio de la
Drosophila melanogaster
(Mosca de la fruta)
Integrantes:
Ovalles Alexa #12
Guerrero Josbely #25
María Cárdenas #33
Lcdo: Endiver Dàvila D’cèsare
Ciencias Biológicas
5to año “B”

2. OBJETIVOS
Practica 1: Describir el manejo y principales características fenotípicas de la Drosophila
melanogaster, haciendo especial hincapié en la discriminación del sexo y en los distintos
mutantes que serán utilizados a lo largo de las practicas.
Practica 2: Observar los caracteres morfológicos de los individuos adultos en la cepa
silvestre, así como la determinación del sexo tanto en individuos adultos como en el estado
de pupa maduras y distinguir las diversas mutaciones utilizadas.
PRE-LABORATORIO
∂ ASPECTOS TEORICOS
Drosophila melanogaster (literalmente "amante del rocío de vientre negro"), también
llamada mosca del vinagre o mosca de la fruta, es una especie de díptero braquícero de
la familia Drosophilidae. Recibe este nombre debido a que se lo encuentra alimentándose
de frutas en proceso de fermentación tales como manzana, cambur, uva, etc. Es una especie
utilizada frecuentemente en experimentación genética, dado que posee un reducido número
de cromosomas (4 pares), breve ciclo de vida (15-21 días) y aproximadamente el 61% de
los genes de enfermedades humanas que se conocen tienen una contrapartida identificable
en el genoma de las moscas de la fruta, y el 50% de las secuencias proteínicas de la mosca
tiene análogos en los mamíferos
Tipos de Moscas
 Tipo de salvaje, de la mosca de la fruta, observa la forma y longitud de sus alas para
comparar con las siguientes.
 Alas vestigiales, por el reducido tamaño de esta. Estas mutación aparece en el
cromosoma dos y es recesiva ( a de portar un gen para expresar estas alas).
 Curly, de alas curvadas, también mutación residente en el cromosoma dos. Se trata
ahora de una mutación dominante, es decir, con solo una copia del gen, la mosca ya
presenta el carácter.
 Mosca con el cuerpo amarillento, ahora la mutación reside en el cromosoma sexual
X. estas mutantes no son capaces de producir el pigmento negro normal de su cuerpo.
 Presenta el cuerpo oscuro, casi negro. La mutación reside en el cromosoma 3.
Normalmente, este gen es responsable del color tostado normal. Si este gen falta, el
pigmento negro se acumulas en todo el cuerpo.
 Sus ojos son de color naranja. Poseen un defecto en el gen (blanco), normalmente
produce pigmento rojo. En estas moscas, el gen solo trabaja parcialmente,
produciendo menos pigmento de lo normal.
 Con ojos blancos, presentan un defecto también el el gen (blanco), pero en este caso,
no produce pigmento alguno
 No presentan ojos. Los genes que poseen las instrucciones para formar los ojos en
las larvas están defectuosas.

3.  Poseen patas en lugar de antenas en su cabeza. Algunas células se convierten el
patas en ese lugar. El gen defectuoso instruye falsamente a algunas células a
convertirse en patas en lugar de antenas.
Ciclo de Vida
El desarrollo embrionario que sigue a la fecundación y formación del cigoto, se realiza
dentro de la membrana del huevo. Las otras etapas del ciclo de vida incluyen: larvas, pupa,
adulto o imago. La duración de los distintos estados del ciclo varía con la temperatura, por
ejemplo a 25ºC el período huevo larva es de 5 días y el de pupa 4 días. La exposición
continua a una temperatura superior a los 30ºC puede producir la esterilidad o muerte de las
moscas y a temperaturas, más baja, se prolonga el ciclo de vida, perjudicándose la
viabilidad.
 EL huevo: El huevo de Drosophila mide alrededor de 0,5 mm de longitud. El lado
dorsal es algo más plano que la superficie ventral que aparece redondeada. Está
revestido por una membrana externa, el corión, constituida de células hexagonales.
Posee un par de filamentos que se extiende más allá y a partir de la superficie entero
dorsal. Tales filamentos impiden que el huevo se hunda en el nutriente blando y
semilíquido. Los huevos pueden ser ovopositados por la madre poco tiempo después
de la penetración del espermio o quedar retenidos en la vagina durante los primeros
estados de desarrollo embrionario. Todo el desarrollo del huevo se completa dentro de
24 horas.
 Estados larvales: El período larval consta de tres estados. En el tercer período, la
larva puede alcanzar hasta 4,5 mm de longitud. Las larvas poseen gran actividad y son
muy voraces observándose en el medio de cultivo un gran número de canales y
túneles. Esta actividad larval es el criterio más simple para juzgar a simple vista si la
generación se desarrolla o no con éxito. La larva de Drosophila, externamente, no
presenta muchas estructuras. Internamente es más interesante. El tubo digestivo es
diferenciado y enrollado en la porción media posterior. Las glándulas salivales se
vacían en la parte anterior del tubo digestivo mientras los tubos de Malpighi
desembocan en el tractodigestivo.
 Estado de desarrollo de las larvas: En general se acepta que las larvas de
Drosophila pasan por tres estados de desarrollo:
 Estado I Se considera en este estado de desarrollo las larvas que van desde que
eclosiona el huevo hasta que cumplen 24 horas. Este estado se caracteriza
porque las larvas presentan gran movilidad y su principal función es la
búsqueda de alimento
 Estado II Va desde las 24 horas a las 72 horas de vida. En general se
consideran larvas de estado II las que tienen entre 48 y 72 horas y su función
principal también es la búsqueda del alimento.
 Estado III Va desde las 72 a las 96 horas de vida. En este estado las larvas
pierden su interés por el alimento y su principal función es encontrar un lugar
seco donde pupar.

4.  La pupa: Cuando la larva está preparada para pupar, abandona al medio de cultivo y
se adhiere a alguna superficie seca como las paredes de la botella o el papel secante
en que se ha insertado el alimento. La larva se transforma en pupa dentro del
penúltimo tegumento larval que al principio es suave y blando pero lentamente se
endurece y oscurece su color. La transformación emprendida durante el período de
pupa, culmina con la formación del imago. Cuando estos cambios se han completado,
el adulto emerge por el extremo de la pupa.
En un principio la mosca es alargada y con las alas sin expandir todavía. Dentro de poco
tiempo, sin embargo, las alas se expanden y el cuerpo gradualmente adquiere la forma
redonda del adulto. Las moscas recién nacidas son de color claro, pero se oscurecen dentro
de pocas horas. Es posible, entonces, distinguir en el cultivo las moscas recién emergidas
de las más viejas
Medios de Cultivo
Las moscas en estado salvaje se alimentan de levadura que fermentan los jugos de las
planta. Para la captura de individuos en la naturaleza se pueden preparar una papilla con
platano machacado, harina y levadura de pan.
En el laboratorio Drosophila pueden cultivarse en botellas estériles con una comida
preparada a base de harina de maíz, azúcar, levadura, y agar como espesante. Para evitar
contaminaciones se añade un fungicida, normalmente nipagìn (metilp-oxibenzoato), y un
bactericida (acido propionico).
Una vez solidificada se le añade levadura picada (para producir una fuente de proteínas a
las larvas) y un papel en zigzag (para que absorba la humedad y como superficie para la
pupacion). Estos frascos se tapan común algodón esterilizados y se indica la fecha y el tipo
de cepa o cruce cultivado en la botella.
la temperatura mas recomendable es de 25º C para el normal desarrollo del ciclo en un
periodo de 10-11 dias, a temperaturas superiores se producen fenómenos de esterilidad y
muerte, a temperaturas inferiores el desarrollo es muy lento.
Técnicas de Anestesia
 Éter: se toma el frasco donde se encuentran los adultos y se golpea suavemente en un
corcho para que caigan hacia el fondo. Se retira el algodón y se vuelca el frasco sobre
el eterificador (una botella o tubo de vidrio) se tapa con un algodón impregnado de
éter. Cuando las moscas están dormidas se vuelcan sobre un papel my se observan
con una lupa. El tiempo en que tardan las moscan en dormirse es muy variable, y de
penden bastante de la edad (cuanto mas viejas son, antes se duermen)
 CO2: el proceso en su inicio es similar, salvo que el algodón con que se tapa el frasco
eterificador debe estar seco, a continuación se introduce una aguja perforada por la

5. cual pasara el CO2, y de esta manera, debido a la escases de oxigeno, las moscas
quedan anestesiadas. Se vacía el contenido del frasco eterificador sobre la placa
difusora del CO2 sobre la que se realizara la observación. En este caso las moscas no
mueren por exceso de anestesia pero hay que tener cuidado porque se despertaran en
el momento que cese el suministro de CO2.
Consejos prácticos
 Hay que tener cuidado, pues una exposición prolongada al éter les puede
producir la muerte (se reconoce porque las alas se disponen
perpendicularmente al cuerpo)
 Hay que tener cuidado en no mantener abierta la botella del cultivo, para
evitar que las moscas se escapen o que entren otras y el cultivo se contamine
 No dejar abierto el eterificador o la botella de éter, ya que además de
evaporarse, por su bajo punto de ebullición y cargar el ambiente, hay peligro
de explosión, ya que altamente inflamable. Por lo tanto, no se puede fumar en
el laboratorio durante las prácticas.
 Antes de eterificar de nuevo, nos hemos de asegurar de que no queden moscas
en el fondo del eterificador.
 Si durante una observación o recuento las moscas comienzan a despertarse, se
pueden reeterificar, con cuidado de no matarlas.
 Para facilitar la observación de los individuos es recomendable alinear todas
las moscas sobre la cartulina, pasando la hilera bajo el foco de la lupa. Asi se
puede ir separando según nuestro interés.
 Cuando se devuelven las moscas dormidas a un frasco con comida, se ha de
procurar que este sea horizontal, para que no se peguen y mueran. La botella
no se colocara en posición vertical hasta que estén despiertas. Otro método
consiste en meter las moscas en un pequeño cucurucho de papel, y a su vez se
mete en el frasco.
Una vez finalizada la observación, los individuos que no nos interesen se introducirán en un
frasco (MORGUE) que contiene aceite o una mezcla de H 2O:EtOH:Eter, para evitar la
descomposición de las moscas.
Diferenciación entre sexos
Esta especie presenta un claro dimorfismo sexual:
 Características de las he mbras:
 Abdomen acabado en punta y más grueso que el del macho.
 Dorso del abdomen con bandas transversales oscuras y separadas unas de otras
hasta el final del mismo.
 Características de los machos:
 menos tamaño de las hembras.
 extremo del abdomen redondeado.

6.  Las últimas bandas transversales del abdomen están fusionadas, lo que da una
apariencia oscura al final del mismo, visible a simple vista.
 Poseen un peine sexual en el primer segmento tarsiano del primer par de patas.
 Características a observar en el adulto
 Ojos compuestos: color, dimensiones, forma y estructura
 Ocelos: omatidios, células sensitivas. Hay tres en la parte superior de la cabeza
como tres pequeñas protuberancias de color un poco mas oscuro que el resto del
cuerpo.
 Antenas: forma, dimensiones e inserción a la cabeza
 Quetas en la cabeza y el Tórax: sirven de órgano sensitivo se heredan en forma y
número constante. En cada lado hay, de acuerdo con el eje de simetría antero-
posterior, 7 en la cabeza: una postvertical, dos verticales, tres orbitales (anterior,
mediana y posterior) y un ocelar. Trece en el torax: dos humerales, dos
notopleurale, una presuturar, dos supralares, dos dorsocentrales, dos postalares y
dos escutelares.
 Quetas abdominales: las de los estermitos situadas en la parte ventral. Se trata de un
carácter muy utilizado en estudios de genética cuantitativa. Estas quetas varian de
un individuo a otro y responden a la presión de selección artificial, pudiéndose
obtener líneas con muchas o pocas quetas.
 Genitalia: obsérvese la diferencia de estructura y coloración entre la placa vaginal
de la hembra y el arco genital del macho.
 Alas: obsérvese las dimensiones, la forma y la disposición respecto al cuerpo, asi
como la disposición de las venas longitudinales y transversales. A los lados de los
puntos de inserción de las alas se hallan unas pequeñas esferas llamadas alterios o
balancines y que están implicadas en el equilibrio (son los restos de un segundo par
de alas).
Estudios de Morgan
Thomas Hunt Morgan (* 25 de septiembre 1866 — 4 de diciembre 1945) fue un genetista
estadounidense. Estudió la historia natural, zoología, y macromutación en la mosca de la
fruta Drosophila melanogaster. trabajo en el desarrollo embrionario de la mosca de la fruta
en la Universidad de Columbia, donde se interesó por el problema de la herencia. En 1910,
descubrió un mutante de ojos blancos entre individuos estirpe silvestre silvestres de ojos
rojos. La progenie del cruzamiento de un macho de ojos blancos con una hembra de ojos
rojos presentó ojos rojos, lo que indicaba que el carácter "ojos blancos" era recesivo.
Morgan denominó white al gen correspondiente, iniciando así la tradición de nombrar a los

7. genes según el fenotipo causado por sus alelos mutantes. Al cruzar estas moscas entre sí,
Morgan se percató de que sólo los machos mostraban el carácter "ojos blancos". De sus
experimentos, concluyó que algunos caracteres se heredan ligados al sexo, que el gen
responsable del carácter residía en el cromosoma X, y que probablemente otros genes
también residían en cromosomas específicos. Él y sus estudiantes contaron las
características de miles de moscas y estudiaron su herencia. Empleando la recombinación
de los cromosomas.
∂ FASES, MATERIALES Y PRACTICAS
FASE 1: Cruces con Drosophila melanogaster (mosquitas de la futa)
Materiales:
 3 frascos de compota o cualquier otro
 Un cambur en descomposición
 2 sobres de gelatina sin sabor
 Vinagre (3 góticas por frasco) 5cc
 Utensilios de limpieza (jabón liquido y toallita)
 Una cuchara
FASE 2: Obtención de las cepas silvestres (Captura tradicional de los mosquitos)
Materiales:
 2 frascos con igual diámetro
 Fruta en descomposición
 Gasa y algodón o un trozo de tela porosa
Instrucciones: la actividad se realizara en el hogar y solo se utilizara un frasco de los
solicitados. Los pasos son:
 Utiliza fruta en descomposición preferiblemente el cambur
 Colocar un trozo de esa fruta en el frasco limpio y seco
 Llevar la preparación a un medio ambiente que permita el ingreso de las
mosquitas y que sea adecuado en cuanto a temperatura y humedad. Se
recomiendan lugares donde se almacenan frutas
 En el momento en que observe mosquitas ingresando al frasco, trate de
determinar la cantidad y si es significativa proceda a taparla.
 Práctica 1: El uso de la Drosophila: Hay muchas razones que hacen de D.
melanogaster un organismo idóneo para experimentación: es muy abundante y de
fácil captura; se cultiva fácilmente en el laboratorio; producen gran cantidad de
descendiente (adecuado para comprobar las proporciones mendelianas; a 25º C se
completa el ciclo biológico a 10-11 días; solo poseen 4 pares de cromosomas; tienen
cromosomas gigantes en la glándula salivales y otros tejidos de la larva; lo que
facilitan su observación microscópica; se trabaja con ellas desde 1905 y por lo tanto
se dispone de una abundante bibliografía; hay una gran cantidad de mutantes, tanto

8. naturales como inducidos y muchas cepas especiales que permiten cuidadosos
analices genéticos.
FASE 3: Creación de los medios de cultivo (papilla alimenticia)
Materiales:
 2 frascos de compota
 Un cambur en descomposición
 Gelatina sin sabor
 Vinagre (3 góticas por frasco) 5cc
 Agua hervida
Fase 4: Estudio de los caracteres morfológicos y determinación del sexo en las mosquitas
Materiales
 1 frasco (eterizador)
 Anestésico (frio de la nevera)
 Lupa
 Capsula de Petri
 Hoja blanca
 Práctica 2: Facilitar el estudio de las mosquita conviene anestesiarlas, para ello en
el laboratorio se dispone de dos métodos, Éter y CO2
LABORATORIO:
∂ EXPERIENCIA 1: OBTENCION DE CEPAS SILVESTRES
En un frasco
de compota
Colocar un trocito de cambur y esperar por su descomposición
Dejar que lleguen mosquitos alrededor y que se posen en la fruta
Una vez mosquitos en el frasco, proceder a atraparlos con tapones

9. ∂ EXPERIENCIA 2: PREPARACION DE CULTIVOS
Con una
cuchara o
espátula
Tomar una cucharada de gelatina
Disolver en agua caliente
Preparar una papilla con el cambur
Media
cucharadita
Agregar el vinagre y la gelatina
Añadir al frasco 1.5 a 2cm de medio cultivo Golpearlo
sobre la mesa
y dejar enfriar
Colocar una tira de papel sobre el cultivo
Hacer una bola de algodón para crear los tapones
Unir los
extremos y
Colocar la bola de algodón sobre una gasa hacer un
atadillo
Poner los tapones a los frascos y dejarlos reposar

10. ∂ EXPERIENCIA 3: ESTUDIO DEL FENOTIPO SILVESTRE D.
MELANOGASTER
Dormirlas
con
Estudiar las mosquitas en el laboratorio anestesia
Para esto de dispones de
Éter CO2
dos métodos:
El proceso inicial es similar al del éter
Golpear el frasco para que caigan al
fondo
Algodón
seco
Eterificador
Excepto con la tapa del frasco
Retirar el algodón y se vuelca al otro
Por una aguja
perforada
Impregnad
o de éter Se introduce el CO2
Tapar con un algodón
Por falta de
oxigeno Las moscas quedan anestesiadas
Observar las moscas dormidas, a través de la lupa.

11. OBSERVACIONES Y REGISTROS:
Fecha Hora Observaciones
Experiencia 1
13/10/11 10:35 pm Se colocó la fruta (cambur) en descomposición dentro del frasco.
Ambiente el cuarto.
14/10/11 5:55 am Aún no han ingresado mosquitos, sólo dos hormigas que
posteriormente fueron retiradas; la fruta presenta un color
amarillento sin presencia de moho.
14/10/11 6:37 am Se introdujo dentro del frasco un trozo de melón en
descomposición su aspecto es verdoso y presenta mohosidad. Ha
ingresado una mosquita al frasco. Ambiente la cocina.
14/10/11 1:50 pm Se encontraron dos moscas sobre la fruta en descomposición
donde el cambur presenta color amarillento y el melón se
encuentra igual.
14/10/11 5:32 pm Las dos moscas salieron del frasco.
15/10/11 9:42 am Se capturaron aproximadamente 8 moscas Drosophila. El melón
entro en proceso de descomposición y el cambur se esta tornando
de color marrón. Con la presencia de varias hormigas y algunas
ya muertas.
17/10/11 2:18 pm El frasco aun contiene todos los moscos, el melón esta totalmente
en descomposición, con un color negro y mohosidad.
19/10/11 6:07 am Los moscos ya no se mueven con tantas frecuencias a simple
vista se puede observar que han ido consumiendo el trozo de
cambur pues el melón esta totalmente descompuesto. Han
aparecido larvas blancas que se encuentran pegadas en las
paredes de los frascos
19/10/11 2:04 pm Hay más pre pupas y pupas en el interior de las paredes del
frasco.
20/10/11 9:47 pm Solo dos moscas están vivas, el resto se presume ya han
culminado su ciclo de vida; el frasco madre (A) posee larvas, pre
pupas y pupas. Se ha determinado una mínima cantidad de pupas
rojizas La comida dentro del frasco es escasa, las frutas se
mezclaron y se aprecian colores entre negro y amarillo
24/10/11 12:45 pm Se cambiaron los mosquitos de frascos, se trasladaron del frasco
madre al segundo frasco, con trozos de lechosa. Ya se es visible
la mutación
25/10/11 9:45 pm Los frascos fueron contaminados por hormigas, limpiándolos se
quebró uno de ellos, ahora queda el frasco Madre(A) y el frasco
Hijo (B).

12. 26/10/11 6:12 am Los moscos de reprodujeron en el frasco A y el frasco B ya posee
larvas.
Experiencia 2
26/10/11 9:30 am En el laboratorio con previa explicación del docente, se
realizaron los medios de cultivo#1 y #2 los moscos del frasco A
se trasladaron a uno nuevo, vacio sin papilla alimenticia.
26/10/11 6:30 pm Los moscos del frasco nuevo murieron en su mayoría, ya que
permanecieron aproximadamente 6 horas sin alimento.
26/10/11 7:24 pm Del frasco A se trasladaron los mosquitos vivos al cultivo #1.
Frascos existentes: Madre (A), Hijo (B), Cultivo #1, Cultivo #2,
y los que murieron se quedan en la Morgue.
29/10/11 10:20 pm En los cultivos se ha creado una especie de moho blanco. En el
frasco A han quedado los residuos de las pequeñas capsulitas que
eran pupas.
02/11/11 6:00 pm Se preparo el tercer cultivo, y se observa que en el frasco A ya no
hay vida.
Experiencia 3
03/11/11 10:45 am Se trasladaron los mosquitos del cultivo #2 al cultivo #3 para
utilizar los cadáveres que se encontraban en el fondo. Los cuales
se utilizaron para el estudio de diferenciación de sexo. Quedan
solo 3 individuos en el cultivo #2.
04/11/11 06:42 pm Estado actual de los frascos
Madre (A): No hay vida
Hijo (B): Presencia de pupas
Cultivo #1: Posee 5 individuos vivos, hay larvas en las paredes
del frasco, no hay mohosidad.
Cultivo #2: Hay larvas, contiene moho y en el fondo hay
cadáveres
Cultivo #3: La comida es abundante, y su aspecto es firme-
esponjoso.
07/11/11 10:12 pm Se le agrego aceite al frasco de la morgue para cuidar los
ejemplares adultos muertos.
09/11/11 09:30 am El cultivo #3 presenta larva en la papilla alimenticia y ejemplares
adultos vivos.
11/11/11 02:14 pm El cultivo #2 posee pupas rojizas y en la papilla alimenticia se
logran apreciar larvas de grandes dimensiones.

13. 12/11/11 04:55 pm Estado actual de los frascos
Madre (A): No hay vida
Hijo (B): No hay vida solo residuos de las pupas que ya han
nacido
Cultivo #1: No hay vida.
Cultivo #2: Hay pupas y sigue presentando larvas inmensas, se
puede concluir en q son gusanos blancos
Cultivo #3: Las mosquitas se han reproducido, esta poblado el
cultivo y aun hay larvas en la papilla alimenticia.
13/11/11 08:42 pm Se salieron 3 gusanos blancos por los huequitos de la gasa del
cultivo #2
14/11/11 04:30 pm El cultivo #2 se cayó dentro del recipiente con agua, y al entrar
en contacto con el agua las pupas murieron.
El cultivo #3 esta con suficiente alimento, hay larvas, y las pupas
han nacido. Esta bastante poblado.
16/11/11 01:55 pm Los frascos siguen en las mismas condiciones, el cultivo #3 es el
único que presenta vida en su interior.

14. POST- LABORATORIO
∂ CONCLUSION
Al concluir este trabajo, es primordial dar a conocer la importancia de la mosquita de la
fruta Drosophila melanogaster a lo largo de este estudio; su tamaño entre 1 mm y 1.5 mm
de longitud ofrece una gran ventaja al experimentar con ella y permite estudiar mejor su
evolución, características anatómicas, estructurales y el mecanismo de la herencia.
Las actividades planificadas como la obtención de las cepas silvestres, la realización de los
medios de cultivo y la observación de las características físicas de la mosca se han logrado.
A la temperatura óptima de 25° C se puede completar el ciclo de vida comprendido entre
10 a 11 días, dentro de los cultivos se criaron las larvas alimentándose de la papilla
alimenticia. Se lograron observan los tres estadios de las larvas, los puparios y las pupas
por ser una mosquita holometábola lo que significa que su metamorfosis es completa
siendo el tipo de desarrollo característico de los insectos mas evolucionados. Fue
significante durante el trabajo experimental la toma de un registro escrito y fotográfico para
señalar su evolución. Los tipos de mutaciones en la Drosophila se manifestaron al nacer los
descendientes de las cepas silvestres.
Se debe tener en cuenta los valiosos estudios de Walter Sutton quien fue el primer
científico en decir que los cromosomas obedecen a las leyes mendelianas. La ya estudiada
mosquita del vinagre díptera, condición de insectos neópteros caracterizados porque
sus alas posteriores se han reducido a halterios, es decir, que tienen sólo dos alas
membranosas y no cuatro como el resto de los insectos, posee solo 4 cromosomas, lo que
llamo la atención de Thomas Morgan quien estudiándolas observo las mutaciones. Existen
aproximadamente 8 mutaciones de la Drosophila melanogaster partiendo de la tipo
salvaje, la forma normal.
Es fundamental para el estudio de dicho insecto la frecuente observación, asegurándose que
los frascos y cultivos donde se encuentren no sean contaminados por otros organismos, por
lo que se recomienda mantenerlo en un ambiente adecuado; procurando seguir cada uno de
los pasos previamente explicados por el docente en la creación de los cultivos, manejo y
cuidado de los insectos.

15. ∂ RECOMENDACIONES
 Para la obtención de la cepa silvestre
 Ubicar el frasco en ambientes de fácil acceso de las mosquitas (La cocina, la
despensa, etc.…).
 Cuidar que insectos como hormigas (Formicidae) o moscas negras
(Simuliidae) entren al frasco y coman de la fruta, pues esto traerá como
consecuencia que ningún mosquito pose la fruta.
 Ingrese el frasco dentro de un recipiente de mayores dimensiones a este, y
sumérgelo en agua, esto impedirá q organismos terrestres (hormigas) repten
las paredes del frasco y se introduzcan en él.
 Coloque el fruto en buenas condiciones (fresco), puesto que si ya se
encontraba en descomposición otras cepas pudieron haber depositado sus
huevos en la fruta.
 Para el cuidado de los cultivos
 Es importante impedir la contaminación de un cultivo por otras cepas. No se
debe dejar nunca la botella destapada para que no entren individuos
 Antes de empezar un cultivo, conviene mirar que el frasco no contenga
ninguna mosca.
 La papilla luego de su preparación debe compactarse, de no ser así se procede
a colocar una tira de papel sobre la mezcla
 Se recomienda la utilización de frascos altos no pequeños ya que la papilla
tiende a generar moho, y si los mosquitos no tienen espacio suficiente dentro
del recipiente tienden a morir.
 Es necesario observar con frecuencia el estado del cultivo, si no hay
suficiente alimento lo mejor será realizar otro frasco de cultivo y trasladar las
mosquitas hacia el nuevo cultivo
 Sin alimento se les genera la muerte a los mosquitos en cuestión de horas.
 Para el estudio de sus características morfológicas y determinación del sexo
 Es necesario anestesiar las mosquitas a través de los métodos ya estudiados.
 Se deben conocer las características a estudiar para así facilitar y acelerar el
proceso de determinación
 Antes de dormir las mosquitas, se debe dar prioridad a los cadáveres que se
encuentran en el fondo de los recipientes. Mosquitas que ya han culminado su
ciclo biológico
 Cuidarse de perder algún ejemplar al momento de trasladar del frasco a la
cápsula de Petri
 Al observar con la lupa se debe tomar precauciones. La respiración debe ser
suave, pues las mosquitas pueden salir de la cápsula por la fuerte corriente de
aire

16. ∂ ANEXOS
Diferenciación entre sexos
Tipo Salvaje
Alas vestigiales Curly Cuerpo Amarillento Cuerpo Negro
Ojos naranja Ojos blancos Sin ojos Patas en lugar
De antenas

17. Ciclo de vida
10-11 días
Experiencia 1: 13/10/2011

18. Frasco Madre (A) Frasco Hijo (B)
15/10/2011 24/10/2011
Experiencia 2: 26/10/2011
Cultivo# 1 Cultivo #2

19. Morgue Cultivo #3
26/10/2011 02/11/2011
Frascos Existentes: 04/11/2011
Cultivo #2: Detalle de las pupas Cultivo #2: Posibles gusanos
11/11/2011 11/11/2011