para la salud

1. Antibiograma
PRUEBA DE SUSCEPTIBILIDAD
ANTIMICROBIANA

2. • Son métodos in Vitro que determinan la
susceptibilidad de los microorganismos
a una variedad de agentes
antimicrobianos.

3. • El primer objetivo (terapéutico) del antibiograma
es el de medir la sensibilidad de una cepa
bacteriana que se sospecha es la responsable de
una infección a uno o varios antibióticos.
• El segundo objetivo (epidemiológico) del
antibiograma es el de seguir la evolución de las
resistencias bacterianas. Es necesario detectar el
aumento de los niveles de resistencia en los
aislamientos clínicos para tomar medidas
correctoras.

4. VALORACIÓN DE LA
SENSIBILIDAD

5. ANTIBIOGRAMA.
MÉTODOS
• Diluciones
–Medio líquido
• Macrodilución
• Microdilución
–Medio sólido
• Difusión

6. ANTIBIOGRAMA
• Antibiótico
• Microorganismo
• Soporte: medio de cultivo

7.      
Antibiótico. Concentraciones decrecientes
(g/ml)
Inóculo microbiano
+
     
INCUBACIÓN
32 16 8 4 2 1 0,5 0,25 0,12
DILUCIÓN
MEDIO
LÍQUIDO.
MACRODILUCIÓN

8.   
  
CMI
CMI: Concentración Mínima
Inhibitoria: La concentración más baja
de antibiótico capaz de inhibir el
crecimiento microbiano
32 16 8 4 2 1 0,5 0,25 0,12

9.   
  
CMI
INCUBACIÓN
CMB
32 16 8 4 2 1 0,5 0,25 0,12

10. CMB
CMI: Concentración Mínima
Bactericida: La concentración más
baja de antibiótico capaz de matar al
99,9 % de las bacterias

11. ANTIBIOGRAMA
MICRODILUCIÓN
DILUCIÓN
MEDIO
LÍQUIDO.
MICRODILUCIÓN

12.      
Antibiótico. Concentraciones decrecientes
(g/ml)
     
INCUBACIÓN
32 16 8 4 2 1 0,5 0,25 0,12
Inóculo bacteriano ( , )
+
DILUCIÓN
MEDIO
SÓLIDO.
32 16 8 2 1 0,5 0,25 0,12
4

13.   
  
INCUBACIÓN
¿CMB?
32 16 8 4 2 1 0,5 0,25 0,12
¿CMI?

14. CMI?
     

 

CMI?
32 16 8 2 1 0,5 0,25 0,12
4

CMB?
DILUCIÓN EN MEDIO SÓLIDO

16. Método de Difusión en Disco (Baeur-
Kirby)
• Es el mas utilizado.
• Prueba la inhibición o resistencia de los
microorganismos, enfrentándolos con los medicamentos
que se encuentran impregnados en pequeños discos.

17. • Consiste en sembrar la bacterias aislada
del paciente infectado sobre una placa de
agar con un sensidisco.
• Cantidad: 12 unidades en placas de 150mm y 5
unidades en placas se 100mm.
• Se incuba por 24 horas, si se observan
halos, se prosigue con la medición.

18. Medición de los halos
Se usa una regla y se
mide el diámetro del
halo de inhibición
partiendo de desde
donde está el disco de
antibiótico hasta donde
se inhibió el
crecimiento.
La longitud obtenida
después se
compararán con
estándares que nos
dirán si el
medicamento será

19. Lectura e interpretación de los
resultados
Categorías de
interpretaron:
Sensible: El
microorganismo presenta un
gran área de inhibición
causada por el fármaco. 95%
éxito
Intermedio: Se presenta
un halo de inhibición mas
reducido.
Resistente: Presenta muy
poco o casi nada de halo.

20. Antibiótico Resistente Intermedia Susceptible
Ampicilina ≤ 13 14 - 16 ≥ 17
Amikacina ≤ 14 15 – 16 ≥ 17
Sulfisoxasol ≤ 12 13 - 16 ≥ 17
Gentamicina ≤ 12 13 – 14 ≥ 15
Cloranfenicol ≤ 12 13 - 17 ≥ 18
Ceftriaxona ≤ 12 14 – 20 ≥ 21
Ciprofloxacin
a
≤ 15 16 - 20 ≥ 21
Tetraciclina ≤ 14 15 - 18 ≥ 19
Acido
Nalidixico
≤ 13 14 – 18 ≥ 19
Estrptomicina ≤ 11 12 – 14 ≥ 15
anamicina ≤ 13 14 - 17 ≥ 18
Trimetroprim/
Sulfametoxas
ol
≤ 10 11 – 15 ≥ 16

22. Pregunta de
investigación
Hipótesis
Materiales
Métodos
Objetivos del
estudio
Discusión
Conclusiones
Conceptos
Resultados
Análisis de V de Gowin del artículo
Susceptibilidad antibiótica de las bacterias causantes de
infecciones odontogénicas