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Carrera de laboratorio clínico
Tema:
MEDIOS DE CULTIVO,
PRUEBAS BIOQUÍMICAS
Asignatura:
MICOLOGÍA.
Semestre:
SEXTO “C”
Estudiante:
Rodríguez Castillo Lucciola
Docente:
LIC. ELSA LUCAS PARRALES
2do Periodo Académico 2021:
Noviembre - Marzo
MEDIOS DE CULTIVO
INTRODUCCIÓN
Los medios de cultivo son una mezcla de nutrientes que, en concentraciones adecuadas y en
condiciones físicas óptimas, permiten el crecimiento de los microorganismos.
Estos medios son esenciales en el Laboratorio de Microbiología por lo que un control en su
fabricación, preparación, conservación y uso, asegura la exactitud, confiabilidad y
reproducibilidad de los resultados obtenidos.
En los laboratorios de microbiología se utilizan diferentes tipos de medios de cultivo que
pueden ser preparados en forma líquida o en forma sólida. Usualmente para preparar un
medio sólido, se parte de un medio líquido al que se le añade un agente solidificante como
el agar, la gelatina o la sílicagel.
DESARROLLO
Un medio de cultivo es un sustrato o solución de nutrientes en los que
crece y se multiplican los microorganismos en el laboratorio, con el
objeto de aislar diferentes especies bacterianas, con el din de
identificarlas y realizar estudios complementarios (1).
Clasificación
Consistencia
Líquidos: contienen nutrientes a los cuales se les adicionan sustancias
con la capacidad de mantener estables un pH, entre ellos podemos
encontrar el caldo nutritivo y caldo peptona.
Solidos: se obtienen agregando agar (sustancia de tipo
polisacárido que se obtiene de algas marinas) a un
medio liquido determinado. Al tener un medio sólido,
nos facilita obtener colonias bacterianas aisladas.
Semisólidos: similares a los medios sólidos, la única
diferencia es que a estos se les disminuye la cantidad de
agar, lo que permite conservar cepas bacterianas y la
observación y registro de bacterias móviles (2).
ORIGEN
Según su origen los medios de cultivo se dividen en medios sintéticos y medios naturales.
-Los medios sintéticos o químicamente definidos son medios compuestos por
productos químicos conocidos y se utilizan para realizar estudios metabólicos, por
ejemplo: agar blando, caldo nutritivo, agar eosina azul de metileno, etc.
-Los medios naturales o químicamente no definidos son aquellos medios que se
preparan a partir de sustancias naturales animales o vegetales, por ejemplo: suero,
leche, papa, etc (3).
COMPOSICIÓN Y UTILIZACIÓN
Según su utilización y su composición los medios de cultivo se pueden clasificar en:
 Simples
 Enriquecidos
 Selectivos
 Diferenciales
 Enriquecimiento
1. Medios Simples
 Poseen los requisitos
nutricionales para
permitir el desarrollo
bacteriano general,
ejemplos: agar
nutritivo,caldo
nutritivo, entre otros
(4).
2. Medios enriquecidos
 Son medios simples o comunes, a
los que se le añaden ciertos
elementos como sangre, suero,
líquido ascítico, huevo, glucosa,
vitaminas, etc. lo que permite el
aporte de factores de crecimiento
o sustancias que neutralizan
agentes inhibidores del
crecimiento en bacterias exigentes
nutricionalmente, entre algunos
ejemplos: agar sangre, medio de
Löwenstein-Jensen, enriquecido
con huevo para facilitar el
crecimiento de Mycobacterium; agar desoxicolato-lactosa (DLA),
enriquecido con lactosa y desoxicolato.
3. Medios selectivos
 Se consiguen añadiendo al agar
nutritivo compuestos químicos
nocivos para algunas bacterias cuyo
crecimiento no es de interés o
también mediante una alteración de
las condiciones físicas del medio,
entre algunos ejemplos tenemos
 El agar Mac Conkey que contiene
cristal violeta.
 Thayer-Martin medio selectivo para Neissar, ya que este posee antibióticos
como la vancomicina colistina y nistatina.
 Caldo lactosado bilis verde brillante en donde la bilis inhibe el crecimiento
de bacterias gran positivas.
 Löwenstein-Jensen con verde de malaquita es selectivo para Mycobacterium
(5).
4. Medios diferenciales
 A estos medios se le adiciona
sustancias para que solo crezcan
ciertas bacterias y estas, al actuar
sobre alguna de las sustancias
adicionadas, permiten observar
macroscópicamente
cierta
s propiedades de crecimiento que
ayudan a diferenciar sus colonas de
otras especies diferentes, entre
algunos ejemplos encontramos:
 Agar eosina azul de metileno
(EMB), diferencia E. coli (color
verde metálico brillante) de colonias de Enterobacter aerogenes (color
rosado, consistencia mucosa y crecimiento abundante).
 Agar sangre, diferencia variedades de Streptococcus pyogenes en
Streptococcus betahemolíticos de Streptococcus alfa hemolítico y gama
hemolítica.
 Agar Salmonella-Shigella tiene lactosa y un indicador de pH que permite
diferenciar las colonias de bacterias fermentadoras de este disacárido (6).
5. Medios de enriquecimiento
 Son medios líquidos que favorecen o
permiten la multiplicación de las
bacterias cuando la muestra obtenida
es muy pobre, por ejemplo:
 Caldo tioglicolate, favorece el
crecimiento de las bacterias
anaeróbicas.
 Caldo tetrationato favorece
crecimiento de
bacterias
microaerófilas.
 Los caldos bilis y de Muller-Kauffman, favorecen el crecimiento del género
Salmonella.
 Caldo o agua peptonada se utiliza para el crecimenot de Vibrio Cholerade (7).
Los medios de cultivo se pueden clasificar de acuerdo a la naturaleza de sus constituyentes
en:
• Medios naturales o complejos: constituidos por sustancias complejas de origen
animal o vegetal, las que son usualmente complementadas por la adición de
minerales y otras sustancias. En ellos no se conocen todos los componentes, ni las
cantidades exactas presentes de cada uno de ellos.
• Medios definidos o sintéticos: son los medios que tienen una composición química
definida cuali y cuantitativamente. Generalmente se usan en trabajos de
investigación.
De acuerdo al uso del medio de cultivo, éstos se clasifican en:
Medios de enriquecimiento: son medios líquidos que favorecen el crecimiento de un
tipo de microorganismo en particular. Permiten aumentar el número de
microorganismos de ese tipo. Usualmente contienen una o más sustancias
inhibidoras del crecimiento de los microorganismos con excepción de los que se
quieren cultivar.
Medios selectivos: son parecidos a los de enriquecimiento, se diferencian por ser
medios sólidos y están diseñados para el aislamiento de microorganismos
específicos.
Medios diferenciales: son medios que contienen indicadores de productos derivados
de la actividad microbiana de los microorganismos. No contienen ningún tipo de
sustancia con actividad antimicrobiana. Permiten revelar características fisiológicas
de los microorganismos.
Los medios de cultivo se pueden preparar en el laboratorio a partir de cada uno de sus
constituyentes básicos, o por simple rehidratación de productos asequibles comercialmente
(medios de cultivo deshidratados).
Generalmente se prefiere el uso de los medios de cultivo deshidratados porque, además de
simplificar el trabajo, con ellos se tiene mayor probabilidad de obtener resultados
reproducibles.
Para su preparación se deben tener en cuenta los siguientes aspectos:
Prepararlos sólo a partir de productos que provengan de fabricantes o proveedores
que suministren productos de calidad.
Utilizar agua destilada o desmineralizada con una calidad microbiológica y
fisicoquímica adecuada.
Utilizar materiales de vidrio bien lavados y enjuagados con agua destilada o
desmineralizada.
Controlar el tiempo y la temperatura recomendada durante su esterilización. Nunca
se deben exceder las condiciones señaladas por el fabricante (8).
ALMACENAMIENTO DE LOS MEDIOS DE CULTIVO
Los medios de cultivo deshidratados se
deben almacenar en envases sellados bajo
las condiciones que señale el fabricante.
Generalmente se almacenan en un lugar
fresco (entre 15 y 25°), con poca humedad
y protegidos de la luz solar directa.
Nunca se deben almacenar cerca de
autoclaves, hornos, ni otra fuente de calor
o vapor. Los medios de cultivo
deshidratados son higroscópicos.
Cuando los envases de estos medios de cultivo deshidratados son abiertos para su uso inicial,
se debe tener la precaución de cerrarlos tan pronto como sea posible y mantenerlos bien
cerrados para prevenir la entrada de humedad.
La absorción de agua produce cambios de pH, formación de grumos, decoloraciones del
polvo, etc., lo cual indica que deben ser descartados porque pueden haber sufrido cambios
químicos o estar contaminados.
Una vez que el medio de cultivo ha sido preparado y esterilizado, puede almacenarse a
temperatura ambiente por un periodo máximo de 2 semanas protegido de la luz, o por
periodos mayores a 12 -15ºC. Sin embargo, almacenados bajo refrigeración entre 2 y 8°C
se prolonga la vida útil de los mismos, (nunca por debajo de 0ºC porque se destruye la
estructura del gel).
Los medios de cultivo se deben mantener en recipientes bien cerrados para evitar su
deshidratación y cuando se usa tapón de algodón, se debe colocar por encima una envoltura
de papel (Craft).
Otro punto importante a tomar en cuenta, es que cada lote de medio de cultivo preparado
debe pasar por un riguroso proceso de control de calidad, en donde se determinan sus
propiedades fisicoquímicas (apariencia, pH, etc.) y microbiológicas (esterilidad y
promoción de crecimiento) verificando que cumplan con los requisitos de calidad
establecidos y por ende demostrar que son aptos para su uso (9).
FUNDAMENTO
La preparación adecuada de un medio de cultivo nos permite disponer de los nutrientes y
condiciones necesarias para favorecer el crecimiento de los microorganismos en el
laboratorio.
PROCEDIMIENTO
1. Leer cuidadosamente las instrucciones de preparación del medio de cultivo asignado.
2. Pesar la cantidad exacta del medio deshidratado o las porciones correctas de cada uno
de los ingredientes. Cerrar inmediatamente el frasco de medio de cultivo.
3. Disolver la porción pesada de acuerdo con las indicaciones del fabricante. Si es necesario
calentar se debe tener cuidado de no sobrecalentar.
4. Ajustar el pH final de cada lote de medio preparado, preferiblemente a temperatura
ambiente (25°C). Para ello se debe tomar una alícuota de 50 mL, medir el pH y de ser
necesario ajustar al pH indicado utilizando HCl 0,1N o NaOH 0,1N. Luego hacer el ajuste
de pH al resto del medio de cultivo utilizando la solución correspondiente pero 1 N.
5. Distribuir el medio de cultivo de acuerdo a las indicaciones señaladas por el profesor.
6. Identificar el lote de medio de cultivo preparado indicando su nombre, distribución y fecha
de preparación.
7. Esterilizar de inmediato el medio de cultivo siguiendo las instrucciones señaladas en el
trabajo práctico N°
8. Si se presenta algún inconveniente que impida su inmediata esterilización, el medio de
cultivo se puede almacenar por un periodo máximo de 12 horas bajo refrigeración (10).
Pruebas bioquímicas
Las pruebas bioquímicas consisten en distintos test químicos aplicados a medios biológicos en
los cuales es conocida su reacción, nos permiten identificar distintos microorganismos
presentes.Su sistema de funcionamiento generalmente consiste en determinar la actividad de
una vía metabólica a partir de un sustrato que se incorpora en un medio de cultivo y que la
bacteria al crecer incorpora o no se emplean para identificar de forma clara y precisa, la
presencia o ausencia de una enzima, de un grupo de enzimas, o de una vía metabólica completa
en uno o más microorganismos. Son empleadas principalmente la identificación y clasificación
de bacterias y hongos.(11)
Hemorragia digestiva HDA (Sangrado gastrointestinal)
Se considera hemorragia digestiva alta aquella cuyo origen está localizado proximal al ángulo
de Treitz, situado en la parte distal del duodeno. Su incidencia no está bien definida en niños
y, además, la mayoría de los estudios publicados al respecto han sido elaborados en las
Unidades de Cuidados Intensivos (UCI), con el sesgo que esto conlleva. Supone la segunda
causa de sangrado agudo en niños tras el traumatismo, y alrededor del 20% de las hemorragias
digestivas en este grupo de edad. (12)
Clasificaciones Hemorragia digestiva ( HDA)
Desde el punto de vista práctico, resulta de utilidad clasificar las HDA según criterios de
gravedad, porque ello orienta sobre la actuación más adecuada en cada caso. Deben tenerse
en cuenta tres parámetros:
1. Criterios clínicos de gravedad. Según los hallazgos clínicos, puede estimarse la pérdida
de volumen debido a la hemorragia, lo que la define como leve, moderada, grave o masiva.
2. Origen del sangrado. Según el punto sangrante, la HDA puede catalogarse como de alto,
medio o bajo riesgo.
3.Signos endoscópicos de riesgo. La endoscopia digestiva es la exploración de elección para
todos los casos de HDA. Debe realizarse dentro de las primeras 12 horas ya que, aparte de su
valor diagnóstico y pronóstico, tiene también utilidad terapéutica, de forma que pueden ser
tratadas localmente las lesiones detectadas. (13)
TRATAMIENTO.
Evaluación inicial de un paciente con HDA.
1) Evaluación inicial del paciente y reanimación hemodinámica
2) Establecer el origen del sangrado
3) Detener la hemorragia si es posible
4) Tratar el trastorno causal Prevenir recurrencias. (14)
Causas posibles
La sangre puede ser visible en el vómito (hematemesis), lo que indica que proviene del tubo
digestivo alto, por lo general del esófago, estómago o la primera porción del intestino
delgado. Cuando se vomita sangre, el vómito es de color rojo intenso si la hemorragia es
activa y persistente.
La sangre también puede salir del recto:
 En forma de heces negras y alquitranadas (melena)
 En forma de sangre roja brillante (hematoquecia)
 En heces aparentemente normales si la hemorragia se limita a unas pocas
cucharaditas por día
 La melena: Es más probable cuando la hemorragia procede del esófago, el estómago
o el intestino delgado.
El color negro de la melena se debe a que la sangre ha estado expuesta
durante varias horas al ácido y las enzimas del sistema digestivo, y a las bacterias
que residen normalmente en el intestino grueso. La melena puede continuar durante
varios días después de que la hemorragia se haya detenido.
 La rectorragia: Es más probable si la hemorragia procede del intestino grueso,
aunque también puede deberse a una hemorragia muy activa procedente de la parte
alta del tubo digestivo.
 Esofagitis: puede aparecer en niños con enfermedad por RGE grave, en aquellos con
vómitos recurrentes (vómitos cíclicos, pancreatitis, gastroparesia postviral) o tras la
ingesta de caústicos o fármacos. Un grupo de riesgo son los niños con parálisis
cerebral infantil y retraso psicomotor.
 Síndrome de Mallory-Weiss. Por vómitos repetidos se pueden ocasionar desgarros
en la mucosa esofágica distal y, secundariamente a estos, hemorragia.
 Varices esofágicas: pueden presentarse en niños con patología intra- o extrahepática
que origine una hipertensión portal.
 Gastritis: pueden producirse en situación de estrés (ingreso en la UCI, quemaduras
extensas, traumatismos, sepsis…), en cuyo caso será una gastritis difusa, o bien
gastritis localizadas, generalmente asociadas al uso de antiinflamatorios no
esteroideos (AINE), o secundarias a ingesta de tóxicos (cocaína, alcohol) o cáusticos
 Ingesta de fármacos gastroerosivos: entre los fármacos relacionados con sangrado
intestinal, los que presentan más riesgo son los AINE, existiendo factores de riesgo
como la existencia de patología gastrointestinal previa (hipertesión portal, gastritis,
infección por Helicobacter pylori), uso crónico o prolongado de corticoides,
antiepilépticos o antibióticos, pero también se ha descrito durante su uso en dosis
bajas y durante periodos cortos. (15)
Factores de riesgos
Dentro de los factores de riesgo se encuentran principalmente medicamentos, síndromes
característicos y enfermedades concomitantes.
Edad: mayor a 70 años.
Infeccioso: Helicobacter pylori, citomegalovirus, virus del herpes simple.
Medicamentos: ácido acetilsalicílico, cloplidogrel, un dato importante es que la
combinación de estos dos medicamentos produce un aumento del doble hasta el triple del
número de los pacientes.
Enfermedades concomitantes frecuentes:
Ulcera gástrica, ulcera duodenal, varices esofagogastricas, desgarro de Mallory-Weiss,
erosiones gástricas, esofagitis, duodenitis erosiva.
Causas infrecuentes de HDA:
Lesión de Cameron, Síndrome de Dieulafoy , reflujo gastroesofágico, úlcera por estrés,
erosiones provocadas por fármacos, angioma, Síndrome de Zollinger Ellison, tumores
benignos, tumores malignos.
Factores de riegos, para pronósticos desfavorables:
PRESION ARTERIAL: SISTOLICA MENOR DE 100 mmHg
 Pulso mayor a 100 latidos por minuto
 Edad: mayor de 60 años
 Carcinoma
 Varices que originen la hemorragia
 Inicio nosocomial
 Coagulopatía grave
 Hemorragia activa y/o recidivante , Enfermedades concomitantes (16)
PRUEBAS COMPLEMENTARIAS HDA (Sangrado gastrointestinal)
LABORATORIO:
a) Hemograma:
 Primeras horas tras HDA sin alteraciones.
 Entre la 2ª y 6ª horas se inicia la hemodilución, que llega hasta las 72h. Caídas
 de Hb inferiores a 2 gr. en este periodo no son indicativas de recidiva o persistencia.
 Solicitar controles evolutivos cada 6/12h durante los dos primeros días.
 Un VCM bajo al ingreso indica pérdidas crónicas.
b) Coagulación:
 Valorar coagulopatías y tratamientos con anticoagulantes.
 La hipoprotrombinemia severa se trata, pero no debe retrasar la endoscopia.
c) Bioquímica:
 Un índice urea/creatinina > 110 indica hemorragia de origen alto.
 Si la urea permanece elevada puede ser indicativo de persistencia/recidiva.
 Un descenso de la Hb con urea normal indica hemodilución.
 El Na+ y el K+ se alteran por el cuadro de deshidratación asociado.
 Solicitar enzimas cardiacas ante sospecha de cardiopatía isquémica o antecedente
previo de la misma. (17)
Diagnóstico del sangrado gastrointestinal
¿Cómo diagnostican los médicos el sangrado
gastrointestinal?
Para diagnosticar el sangrado gastrointestinal, el médico
determinará primero el lugar del sangrado con base en la
historia clínica del paciente, incluidos los medicamentos
que toma, y los antecedentes familiares, un examen físico
y las pruebas diagnósticas.
Examen físico
Durante un examen físico, el médico por lo general:
 Evaluación física completa
 Repercusión hemodinámica
 Estigmas de enfermedad hepática
 Tacto rectal (18)
Pruebas diagnósticas
Dependiendo de los síntomas del paciente, el médico ordenará una o más pruebas diagnósticas
para confirmar si tiene sangrado en el aparato digestivo y, en caso afirmativo, para encontrar
la fuente del mismo.
¿Qué pruebas utilizan los médicos para diagnosticar el sangrado gastrointestinal ( HDA) ?
El médico puede realizar las siguientes pruebas para ayudar a diagnosticar la causa del
sangrado gastrointestinal
1. Análisis de laboratorio
Los análisis de laboratorio para ayudar a diagnosticar la causa del sangrado
gastrointestinal incluyen:
Análisis de heces. Es el análisis de una muestra de heces. El médico le dará al paciente un
recipiente para recoger y almacenar una muestra de heces, y el paciente incidente sobre
dónde enviar o llevar la muestra para su análisis. Los análisis de heces pueden mostrar
sangrado oculto.
Análisis de sangre. Un profesional de atención médica puede tomar una muestra desangre del
paciente y enviarla a un laboratorio para que la analicen. El análisis de sangre puede ayudar a
determinar el alcance del sangrado y si el paciente tiene anemia.
2. Lavado gástrico o succión gástrica
Un lavado gástrico o succión gástrica es un procedimiento en el cual el médico pasa un tubo
a través de la nariz o la boca hasta el estómago del paciente para extraer el contenido del
estómago y determinar la posible ubicación del sangrado gastrointestinal. Este
procedimiento lo hace el médico en un centro para pacientes ambulatorios o en un hospital.
La mayoría de las veces el paciente recibe anestesia líquida para adormecer la garganta.
3. Endoscopia
Los procedimientos de endoscopia los hace un médico que examina un pasaje hueco en el
organismo con un instrumento especial. Una endoscopia puede ayudar al médico a
determinar si el paciente tiene sangrado gastrointestinal, dónde lo tiene y la causa. Los
médicos con mayor frecuencia usan la endoscopia gastrointestinal y la colonoscopia para
determinar si el paciente tiene sangrado gastrointestinal agudo en la parte superior e inferior
del sistema digestivo.
Endoscopia gastrointestinal. En una endoscopia gastrointestinal , el médico pasa un
endoscopio a través del esófago hasta el estómago y duodeno del paciente. Este
procedimiento lo hace un especialista en un hospital o en un centro para pacientes
ambulatorios. Por lo general el paciente recibe anestesia líquida para adormecer la
garganta y un sedante suave que le ayudará a mantenerse relajado y cómodo durante el
procedimiento. Enteroscopia. Durante una enteroscopia NIH external link , el médico
examina el intestino delgado del paciente con un endoscopio especial más largo.
Cápsula endoscópica. Con la cápsula endoscópica NIH external link , el paciente se traga
una cápsula que contiene una cámara diminuta que le permite al médico ver dentro del
aparato digestivo. No se necesita anestesia NIH external link para este procedimiento.
El examen comienza en el consultorio del médico, donde el paciente se traga la cápsula. A
medida que la cápsula pasa a través del aparato digestivo, la cámara grabará las imágenes
que el médico luego descargará y revisará. El organismo expulsa la cápsula con la cámara
durante una deposición.
Colonoscopia. La colonoscopia es un procedimiento en el cual el médico usa un tubo largo,
flexible y estrecho con una cámara liviana y diminuta en un extremo, llamado colonoscopio
o endoscopio, para examinar dentro del recto y el colon del paciente. Este procedimiento lo
hace un especialista en un hospital o en un centro para pacientes ambulatorios.
El paciente ocurrió sedantes, anestesia, o un medicamento para el dolor durante el
procedimiento. Con una colonoscopia, el médico puede ver y tratar cualquier sangrado
gastrointestinal.
Sigmoidoscopia flexible. La sigmoidoscopia flexible es un procedimiento en el cual el
médico usa un tubo delgado y flexible con una cámara liviana y diminuta en un extremo,
llamado sigmoidoscopio o endoscopio, para mirar dentro del recto y el colon sigmoide del
paciente y tratar cualquier sangrado.
El especialista realiza una sigmoidoscopia flexible en el consultorio médico, en un hospital
o en un centro para pacientes ambulatorios. No se necesita anestesia para este
procedimiento.
Una endoscopia gastrointestinal puede ayudar al médico a ver
si el paciente tiene sangrado gastrointestinal, dónde lo tiene y
la causa.
4. Pruebas de diagnóstico por la imagen
Para ayudar a encontrar la causa del sangrado
gastrointestinal, el médico podría ordenar una o más de las
siguientes pruebas de diagnóstico por la imagen. No se
necesita anestesia para estas pruebas.
Tomografía abdominal computarizada. Una tomografía
abdominal computarizada usa una combinación de radiografías y tecnología computarizada
para crear imágenes del aparato digestivo. Un técnico en radiología hace el procedimiento
en un centro para pacientes ambulatorios o en un hospital, y un radiólogo lee y hace un
informe de las imágenes.
Tránsito de la parte inferior del aparato digestivo. Un tránsito de la parte inferior del
aparato digestivo es un procedimiento en el cual el médico usa radiografías y un líquido
calcáreo llamado bario para ver el intestino grueso del paciente. Un técnico en radiología y
un radiólogo hacen este procedimiento en un hospital o en un centro para pacientes
ambulatorios.
Tránsito de la parte superior del aparato digestivo. Un tránsito de la parte superior del
aparato digestivo es un procedimiento en el cual el médico usa radiografías, fluoroscopia y
un líquido calcáreo llamado bario para ver la parte superior del aparato digestivo del
paciente. Un técnico en radiología y un radiólogo hacen este procedimiento en un hospital
o en un centro para pacientes ambulatorios.
Angiograma. Un angiograma es un tipo especial de radiografía en el cual el radiólogo
introduce un catéter a través de las arterias grandes del paciente. El radiólogo hace el
procedimiento e interpreta las imágenes en un hospital o en un centro para pacientes
ambulatorios. El paciente podría recibir un sedante suave que le ayudará a mantenerse
relajado y cómodo durante el procedimiento.
Exploración con radionúclido. Una exploración con radionúclido NIH external link puede
ayudar al médico a determinar la causa de un sangrado gastrointestinal. Un técnico
especializado hace esta exploración en un centro para pacientes ambulatorios o en un
hospital. El técnico inyecta en el organismo del paciente una mezcla de su sangre y material
radioactivo para resaltar la
zona del organismo que está sangrando.
La dosis de los químicos radioactivos es pequeña, por lo
que la probabilidad de que cause daño
a las células es baja. Una cámara especial toma fotografías
que resaltan el material radioactivo.
Para ayudar a determinar la causa del sangrado gastrointestinal, el médico podría ordenar
una o más pruebas diagnósticas, como una tomografía abdominal computarizada.
5. Procedimientos para examinar el aparato digestivo
Si ninguna de las otras pruebas ayuda al médico a diagnosticar la fuente del sangrado
gastrointestinal, un cirujano puede realizar una de las siguientes operaciones para examinar
el aparato digestivo:
Laparotomía. Durante una laparotomía, el cirujano hará un solo corte en el abdomen del
paciente para explorarlo. Durante la operación, el cirujano puede tratar los problemas que
causan el sangrado; el paciente ocurrió anestesia general.(19)
ANALISIS:
Se analiza la capacidad de aislar microorganismos es muy importante ya que a diario no
solo es necesario para la investigación, sino que también para las clínicas. Asimismo, la
obtención de colonias aisladas con fuerte crecimiento de determinadas especies bacterianas
(patógenas o no) presentes en cada muestra siempre es fundamental para poder realizar las
mismas mediciones. El medio ha sido una herramienta esencial débil desde el nacimiento de
la microbiología, Un medio de cultivo es una colección de nutrientes con factores de
crecimiento y otros ingredientes que crean las condiciones para el crecimiento de un
microorganismo, La diversidad metabólica de estos es asombrosa. Mientras la diversidad
de culturas sea muy importante, no existe una cultura universal de adecuada para todos, y
mucho menos las bacterias dedicadas. Las limitaciones en la identificación de infecciones
fúngicas justifican un mejor diagnóstico de las infecciones fúngicas invasivas oportunistas y
endémicas, que se estima que afectan a más de 300 millones de personas con infecciones
fúngicas agudas o crónicas que no son accesibles a los métodos de diagnóstico óptimos.
CONCLUSION:
Para que los microorganismos puedan crecer en el laboratorio, un medio que proporcione los
nutrientes y las condiciones fisicoquímicas suficientes para el crecimiento de los
microorganismos en un medio es un medio que contiene agua y un conjunto de nutrientes
necesarios para su metabolismo. Además del medio tubular, se debe usar y recomendar una placa
de Petri que contenga agar y algunos nutrientes esenciales dependiendo de los microorganismos
que se decida aislar, pero las placas de Petri son sólidas y un campo tubular medio en el fondo
en el crecimiento microbiano existen áreas de color rosa oscuro y se puede ver en la placa de
agar en la placa del área de crecimiento que tengamos aislada siendo esta una masa de células
que han evolucionado a partir de ciertas células originales y son denominadas colonias sabiendo
que no todos los microorganismos pueden crecer en el laboratorio. Podemos hablar de cultivos
bacterianos porque la mayoría de las veces se cultivan en laboratorios clínicos y son bacterias,
pero otro tipo de microorganismos, como los casos de hongos, pueden hacer lo mismo. Así que
es mejor hablar de cultivos microbianos. La identificación definitiva de una especie requiere de
pruebas bioquímicas estas permiten conocer las actividades metabólicas y enzimáticas de los
microorganismos.
Bibliografía
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Práctica de laboratorio n°6 medios de cultivo, pruebas bioquímicas

  • 1. Carrera de laboratorio clínico Tema: MEDIOS DE CULTIVO, PRUEBAS BIOQUÍMICAS Asignatura: MICOLOGÍA. Semestre: SEXTO “C” Estudiante: Rodríguez Castillo Lucciola Docente: LIC. ELSA LUCAS PARRALES 2do Periodo Académico 2021: Noviembre - Marzo
  • 2. MEDIOS DE CULTIVO INTRODUCCIÓN Los medios de cultivo son una mezcla de nutrientes que, en concentraciones adecuadas y en condiciones físicas óptimas, permiten el crecimiento de los microorganismos. Estos medios son esenciales en el Laboratorio de Microbiología por lo que un control en su fabricación, preparación, conservación y uso, asegura la exactitud, confiabilidad y reproducibilidad de los resultados obtenidos. En los laboratorios de microbiología se utilizan diferentes tipos de medios de cultivo que pueden ser preparados en forma líquida o en forma sólida. Usualmente para preparar un medio sólido, se parte de un medio líquido al que se le añade un agente solidificante como el agar, la gelatina o la sílicagel. DESARROLLO Un medio de cultivo es un sustrato o solución de nutrientes en los que crece y se multiplican los microorganismos en el laboratorio, con el objeto de aislar diferentes especies bacterianas, con el din de identificarlas y realizar estudios complementarios (1). Clasificación Consistencia Líquidos: contienen nutrientes a los cuales se les adicionan sustancias con la capacidad de mantener estables un pH, entre ellos podemos encontrar el caldo nutritivo y caldo peptona.
  • 3. Solidos: se obtienen agregando agar (sustancia de tipo polisacárido que se obtiene de algas marinas) a un medio liquido determinado. Al tener un medio sólido, nos facilita obtener colonias bacterianas aisladas. Semisólidos: similares a los medios sólidos, la única diferencia es que a estos se les disminuye la cantidad de agar, lo que permite conservar cepas bacterianas y la observación y registro de bacterias móviles (2). ORIGEN Según su origen los medios de cultivo se dividen en medios sintéticos y medios naturales. -Los medios sintéticos o químicamente definidos son medios compuestos por productos químicos conocidos y se utilizan para realizar estudios metabólicos, por ejemplo: agar blando, caldo nutritivo, agar eosina azul de metileno, etc. -Los medios naturales o químicamente no definidos son aquellos medios que se preparan a partir de sustancias naturales animales o vegetales, por ejemplo: suero, leche, papa, etc (3). COMPOSICIÓN Y UTILIZACIÓN Según su utilización y su composición los medios de cultivo se pueden clasificar en:  Simples  Enriquecidos  Selectivos  Diferenciales  Enriquecimiento
  • 4. 1. Medios Simples  Poseen los requisitos nutricionales para permitir el desarrollo bacteriano general, ejemplos: agar nutritivo,caldo nutritivo, entre otros (4). 2. Medios enriquecidos  Son medios simples o comunes, a los que se le añaden ciertos elementos como sangre, suero, líquido ascítico, huevo, glucosa, vitaminas, etc. lo que permite el aporte de factores de crecimiento o sustancias que neutralizan agentes inhibidores del crecimiento en bacterias exigentes nutricionalmente, entre algunos ejemplos: agar sangre, medio de Löwenstein-Jensen, enriquecido con huevo para facilitar el crecimiento de Mycobacterium; agar desoxicolato-lactosa (DLA), enriquecido con lactosa y desoxicolato. 3. Medios selectivos  Se consiguen añadiendo al agar nutritivo compuestos químicos nocivos para algunas bacterias cuyo crecimiento no es de interés o también mediante una alteración de las condiciones físicas del medio, entre algunos ejemplos tenemos  El agar Mac Conkey que contiene cristal violeta.
  • 5.  Thayer-Martin medio selectivo para Neissar, ya que este posee antibióticos como la vancomicina colistina y nistatina.  Caldo lactosado bilis verde brillante en donde la bilis inhibe el crecimiento de bacterias gran positivas.  Löwenstein-Jensen con verde de malaquita es selectivo para Mycobacterium (5). 4. Medios diferenciales  A estos medios se le adiciona sustancias para que solo crezcan ciertas bacterias y estas, al actuar sobre alguna de las sustancias adicionadas, permiten observar macroscópicamente cierta s propiedades de crecimiento que ayudan a diferenciar sus colonas de otras especies diferentes, entre algunos ejemplos encontramos:  Agar eosina azul de metileno (EMB), diferencia E. coli (color verde metálico brillante) de colonias de Enterobacter aerogenes (color rosado, consistencia mucosa y crecimiento abundante).  Agar sangre, diferencia variedades de Streptococcus pyogenes en Streptococcus betahemolíticos de Streptococcus alfa hemolítico y gama hemolítica.  Agar Salmonella-Shigella tiene lactosa y un indicador de pH que permite diferenciar las colonias de bacterias fermentadoras de este disacárido (6). 5. Medios de enriquecimiento  Son medios líquidos que favorecen o permiten la multiplicación de las bacterias cuando la muestra obtenida es muy pobre, por ejemplo:  Caldo tioglicolate, favorece el crecimiento de las bacterias anaeróbicas.  Caldo tetrationato favorece crecimiento de bacterias microaerófilas.
  • 6.  Los caldos bilis y de Muller-Kauffman, favorecen el crecimiento del género Salmonella.  Caldo o agua peptonada se utiliza para el crecimenot de Vibrio Cholerade (7). Los medios de cultivo se pueden clasificar de acuerdo a la naturaleza de sus constituyentes en: • Medios naturales o complejos: constituidos por sustancias complejas de origen animal o vegetal, las que son usualmente complementadas por la adición de minerales y otras sustancias. En ellos no se conocen todos los componentes, ni las cantidades exactas presentes de cada uno de ellos. • Medios definidos o sintéticos: son los medios que tienen una composición química definida cuali y cuantitativamente. Generalmente se usan en trabajos de investigación. De acuerdo al uso del medio de cultivo, éstos se clasifican en: Medios de enriquecimiento: son medios líquidos que favorecen el crecimiento de un tipo de microorganismo en particular. Permiten aumentar el número de microorganismos de ese tipo. Usualmente contienen una o más sustancias inhibidoras del crecimiento de los microorganismos con excepción de los que se quieren cultivar. Medios selectivos: son parecidos a los de enriquecimiento, se diferencian por ser medios sólidos y están diseñados para el aislamiento de microorganismos específicos. Medios diferenciales: son medios que contienen indicadores de productos derivados de la actividad microbiana de los microorganismos. No contienen ningún tipo de sustancia con actividad antimicrobiana. Permiten revelar características fisiológicas de los microorganismos. Los medios de cultivo se pueden preparar en el laboratorio a partir de cada uno de sus constituyentes básicos, o por simple rehidratación de productos asequibles comercialmente (medios de cultivo deshidratados). Generalmente se prefiere el uso de los medios de cultivo deshidratados porque, además de simplificar el trabajo, con ellos se tiene mayor probabilidad de obtener resultados reproducibles. Para su preparación se deben tener en cuenta los siguientes aspectos: Prepararlos sólo a partir de productos que provengan de fabricantes o proveedores que suministren productos de calidad. Utilizar agua destilada o desmineralizada con una calidad microbiológica y fisicoquímica adecuada. Utilizar materiales de vidrio bien lavados y enjuagados con agua destilada o desmineralizada.
  • 7. Controlar el tiempo y la temperatura recomendada durante su esterilización. Nunca se deben exceder las condiciones señaladas por el fabricante (8). ALMACENAMIENTO DE LOS MEDIOS DE CULTIVO Los medios de cultivo deshidratados se deben almacenar en envases sellados bajo las condiciones que señale el fabricante. Generalmente se almacenan en un lugar fresco (entre 15 y 25°), con poca humedad y protegidos de la luz solar directa. Nunca se deben almacenar cerca de autoclaves, hornos, ni otra fuente de calor o vapor. Los medios de cultivo deshidratados son higroscópicos. Cuando los envases de estos medios de cultivo deshidratados son abiertos para su uso inicial, se debe tener la precaución de cerrarlos tan pronto como sea posible y mantenerlos bien cerrados para prevenir la entrada de humedad. La absorción de agua produce cambios de pH, formación de grumos, decoloraciones del polvo, etc., lo cual indica que deben ser descartados porque pueden haber sufrido cambios químicos o estar contaminados. Una vez que el medio de cultivo ha sido preparado y esterilizado, puede almacenarse a temperatura ambiente por un periodo máximo de 2 semanas protegido de la luz, o por periodos mayores a 12 -15ºC. Sin embargo, almacenados bajo refrigeración entre 2 y 8°C se prolonga la vida útil de los mismos, (nunca por debajo de 0ºC porque se destruye la estructura del gel). Los medios de cultivo se deben mantener en recipientes bien cerrados para evitar su deshidratación y cuando se usa tapón de algodón, se debe colocar por encima una envoltura de papel (Craft). Otro punto importante a tomar en cuenta, es que cada lote de medio de cultivo preparado debe pasar por un riguroso proceso de control de calidad, en donde se determinan sus propiedades fisicoquímicas (apariencia, pH, etc.) y microbiológicas (esterilidad y promoción de crecimiento) verificando que cumplan con los requisitos de calidad establecidos y por ende demostrar que son aptos para su uso (9).
  • 8. FUNDAMENTO La preparación adecuada de un medio de cultivo nos permite disponer de los nutrientes y condiciones necesarias para favorecer el crecimiento de los microorganismos en el laboratorio. PROCEDIMIENTO 1. Leer cuidadosamente las instrucciones de preparación del medio de cultivo asignado. 2. Pesar la cantidad exacta del medio deshidratado o las porciones correctas de cada uno de los ingredientes. Cerrar inmediatamente el frasco de medio de cultivo. 3. Disolver la porción pesada de acuerdo con las indicaciones del fabricante. Si es necesario calentar se debe tener cuidado de no sobrecalentar. 4. Ajustar el pH final de cada lote de medio preparado, preferiblemente a temperatura ambiente (25°C). Para ello se debe tomar una alícuota de 50 mL, medir el pH y de ser necesario ajustar al pH indicado utilizando HCl 0,1N o NaOH 0,1N. Luego hacer el ajuste de pH al resto del medio de cultivo utilizando la solución correspondiente pero 1 N. 5. Distribuir el medio de cultivo de acuerdo a las indicaciones señaladas por el profesor. 6. Identificar el lote de medio de cultivo preparado indicando su nombre, distribución y fecha de preparación. 7. Esterilizar de inmediato el medio de cultivo siguiendo las instrucciones señaladas en el trabajo práctico N° 8. Si se presenta algún inconveniente que impida su inmediata esterilización, el medio de cultivo se puede almacenar por un periodo máximo de 12 horas bajo refrigeración (10).
  • 9. Pruebas bioquímicas Las pruebas bioquímicas consisten en distintos test químicos aplicados a medios biológicos en los cuales es conocida su reacción, nos permiten identificar distintos microorganismos presentes.Su sistema de funcionamiento generalmente consiste en determinar la actividad de una vía metabólica a partir de un sustrato que se incorpora en un medio de cultivo y que la bacteria al crecer incorpora o no se emplean para identificar de forma clara y precisa, la presencia o ausencia de una enzima, de un grupo de enzimas, o de una vía metabólica completa en uno o más microorganismos. Son empleadas principalmente la identificación y clasificación de bacterias y hongos.(11) Hemorragia digestiva HDA (Sangrado gastrointestinal) Se considera hemorragia digestiva alta aquella cuyo origen está localizado proximal al ángulo de Treitz, situado en la parte distal del duodeno. Su incidencia no está bien definida en niños y, además, la mayoría de los estudios publicados al respecto han sido elaborados en las Unidades de Cuidados Intensivos (UCI), con el sesgo que esto conlleva. Supone la segunda causa de sangrado agudo en niños tras el traumatismo, y alrededor del 20% de las hemorragias digestivas en este grupo de edad. (12) Clasificaciones Hemorragia digestiva ( HDA) Desde el punto de vista práctico, resulta de utilidad clasificar las HDA según criterios de gravedad, porque ello orienta sobre la actuación más adecuada en cada caso. Deben tenerse en cuenta tres parámetros: 1. Criterios clínicos de gravedad. Según los hallazgos clínicos, puede estimarse la pérdida de volumen debido a la hemorragia, lo que la define como leve, moderada, grave o masiva. 2. Origen del sangrado. Según el punto sangrante, la HDA puede catalogarse como de alto, medio o bajo riesgo.
  • 10. 3.Signos endoscópicos de riesgo. La endoscopia digestiva es la exploración de elección para todos los casos de HDA. Debe realizarse dentro de las primeras 12 horas ya que, aparte de su valor diagnóstico y pronóstico, tiene también utilidad terapéutica, de forma que pueden ser tratadas localmente las lesiones detectadas. (13) TRATAMIENTO. Evaluación inicial de un paciente con HDA. 1) Evaluación inicial del paciente y reanimación hemodinámica 2) Establecer el origen del sangrado 3) Detener la hemorragia si es posible 4) Tratar el trastorno causal Prevenir recurrencias. (14) Causas posibles La sangre puede ser visible en el vómito (hematemesis), lo que indica que proviene del tubo digestivo alto, por lo general del esófago, estómago o la primera porción del intestino delgado. Cuando se vomita sangre, el vómito es de color rojo intenso si la hemorragia es activa y persistente. La sangre también puede salir del recto:  En forma de heces negras y alquitranadas (melena)  En forma de sangre roja brillante (hematoquecia)  En heces aparentemente normales si la hemorragia se limita a unas pocas cucharaditas por día  La melena: Es más probable cuando la hemorragia procede del esófago, el estómago o el intestino delgado. El color negro de la melena se debe a que la sangre ha estado expuesta
  • 11. durante varias horas al ácido y las enzimas del sistema digestivo, y a las bacterias que residen normalmente en el intestino grueso. La melena puede continuar durante varios días después de que la hemorragia se haya detenido.  La rectorragia: Es más probable si la hemorragia procede del intestino grueso, aunque también puede deberse a una hemorragia muy activa procedente de la parte alta del tubo digestivo.  Esofagitis: puede aparecer en niños con enfermedad por RGE grave, en aquellos con vómitos recurrentes (vómitos cíclicos, pancreatitis, gastroparesia postviral) o tras la ingesta de caústicos o fármacos. Un grupo de riesgo son los niños con parálisis cerebral infantil y retraso psicomotor.  Síndrome de Mallory-Weiss. Por vómitos repetidos se pueden ocasionar desgarros en la mucosa esofágica distal y, secundariamente a estos, hemorragia.  Varices esofágicas: pueden presentarse en niños con patología intra- o extrahepática que origine una hipertensión portal.  Gastritis: pueden producirse en situación de estrés (ingreso en la UCI, quemaduras extensas, traumatismos, sepsis…), en cuyo caso será una gastritis difusa, o bien gastritis localizadas, generalmente asociadas al uso de antiinflamatorios no esteroideos (AINE), o secundarias a ingesta de tóxicos (cocaína, alcohol) o cáusticos  Ingesta de fármacos gastroerosivos: entre los fármacos relacionados con sangrado intestinal, los que presentan más riesgo son los AINE, existiendo factores de riesgo como la existencia de patología gastrointestinal previa (hipertesión portal, gastritis, infección por Helicobacter pylori), uso crónico o prolongado de corticoides, antiepilépticos o antibióticos, pero también se ha descrito durante su uso en dosis bajas y durante periodos cortos. (15) Factores de riesgos Dentro de los factores de riesgo se encuentran principalmente medicamentos, síndromes característicos y enfermedades concomitantes. Edad: mayor a 70 años. Infeccioso: Helicobacter pylori, citomegalovirus, virus del herpes simple.
  • 12. Medicamentos: ácido acetilsalicílico, cloplidogrel, un dato importante es que la combinación de estos dos medicamentos produce un aumento del doble hasta el triple del número de los pacientes. Enfermedades concomitantes frecuentes: Ulcera gástrica, ulcera duodenal, varices esofagogastricas, desgarro de Mallory-Weiss, erosiones gástricas, esofagitis, duodenitis erosiva. Causas infrecuentes de HDA: Lesión de Cameron, Síndrome de Dieulafoy , reflujo gastroesofágico, úlcera por estrés, erosiones provocadas por fármacos, angioma, Síndrome de Zollinger Ellison, tumores benignos, tumores malignos. Factores de riegos, para pronósticos desfavorables: PRESION ARTERIAL: SISTOLICA MENOR DE 100 mmHg  Pulso mayor a 100 latidos por minuto  Edad: mayor de 60 años  Carcinoma  Varices que originen la hemorragia  Inicio nosocomial  Coagulopatía grave  Hemorragia activa y/o recidivante , Enfermedades concomitantes (16) PRUEBAS COMPLEMENTARIAS HDA (Sangrado gastrointestinal) LABORATORIO: a) Hemograma:  Primeras horas tras HDA sin alteraciones.
  • 13.  Entre la 2ª y 6ª horas se inicia la hemodilución, que llega hasta las 72h. Caídas  de Hb inferiores a 2 gr. en este periodo no son indicativas de recidiva o persistencia.  Solicitar controles evolutivos cada 6/12h durante los dos primeros días.  Un VCM bajo al ingreso indica pérdidas crónicas. b) Coagulación:  Valorar coagulopatías y tratamientos con anticoagulantes.  La hipoprotrombinemia severa se trata, pero no debe retrasar la endoscopia. c) Bioquímica:  Un índice urea/creatinina > 110 indica hemorragia de origen alto.  Si la urea permanece elevada puede ser indicativo de persistencia/recidiva.  Un descenso de la Hb con urea normal indica hemodilución.  El Na+ y el K+ se alteran por el cuadro de deshidratación asociado.  Solicitar enzimas cardiacas ante sospecha de cardiopatía isquémica o antecedente previo de la misma. (17) Diagnóstico del sangrado gastrointestinal ¿Cómo diagnostican los médicos el sangrado gastrointestinal? Para diagnosticar el sangrado gastrointestinal, el médico determinará primero el lugar del sangrado con base en la historia clínica del paciente, incluidos los medicamentos que toma, y los antecedentes familiares, un examen físico y las pruebas diagnósticas. Examen físico Durante un examen físico, el médico por lo general:  Evaluación física completa  Repercusión hemodinámica  Estigmas de enfermedad hepática  Tacto rectal (18)
  • 14. Pruebas diagnósticas Dependiendo de los síntomas del paciente, el médico ordenará una o más pruebas diagnósticas para confirmar si tiene sangrado en el aparato digestivo y, en caso afirmativo, para encontrar la fuente del mismo. ¿Qué pruebas utilizan los médicos para diagnosticar el sangrado gastrointestinal ( HDA) ? El médico puede realizar las siguientes pruebas para ayudar a diagnosticar la causa del sangrado gastrointestinal 1. Análisis de laboratorio Los análisis de laboratorio para ayudar a diagnosticar la causa del sangrado gastrointestinal incluyen: Análisis de heces. Es el análisis de una muestra de heces. El médico le dará al paciente un recipiente para recoger y almacenar una muestra de heces, y el paciente incidente sobre dónde enviar o llevar la muestra para su análisis. Los análisis de heces pueden mostrar sangrado oculto. Análisis de sangre. Un profesional de atención médica puede tomar una muestra desangre del paciente y enviarla a un laboratorio para que la analicen. El análisis de sangre puede ayudar a determinar el alcance del sangrado y si el paciente tiene anemia. 2. Lavado gástrico o succión gástrica Un lavado gástrico o succión gástrica es un procedimiento en el cual el médico pasa un tubo a través de la nariz o la boca hasta el estómago del paciente para extraer el contenido del estómago y determinar la posible ubicación del sangrado gastrointestinal. Este procedimiento lo hace el médico en un centro para pacientes ambulatorios o en un hospital. La mayoría de las veces el paciente recibe anestesia líquida para adormecer la garganta.
  • 15. 3. Endoscopia Los procedimientos de endoscopia los hace un médico que examina un pasaje hueco en el organismo con un instrumento especial. Una endoscopia puede ayudar al médico a determinar si el paciente tiene sangrado gastrointestinal, dónde lo tiene y la causa. Los médicos con mayor frecuencia usan la endoscopia gastrointestinal y la colonoscopia para determinar si el paciente tiene sangrado gastrointestinal agudo en la parte superior e inferior del sistema digestivo. Endoscopia gastrointestinal. En una endoscopia gastrointestinal , el médico pasa un endoscopio a través del esófago hasta el estómago y duodeno del paciente. Este procedimiento lo hace un especialista en un hospital o en un centro para pacientes ambulatorios. Por lo general el paciente recibe anestesia líquida para adormecer la garganta y un sedante suave que le ayudará a mantenerse relajado y cómodo durante el procedimiento. Enteroscopia. Durante una enteroscopia NIH external link , el médico examina el intestino delgado del paciente con un endoscopio especial más largo. Cápsula endoscópica. Con la cápsula endoscópica NIH external link , el paciente se traga una cápsula que contiene una cámara diminuta que le permite al médico ver dentro del aparato digestivo. No se necesita anestesia NIH external link para este procedimiento. El examen comienza en el consultorio del médico, donde el paciente se traga la cápsula. A medida que la cápsula pasa a través del aparato digestivo, la cámara grabará las imágenes que el médico luego descargará y revisará. El organismo expulsa la cápsula con la cámara durante una deposición. Colonoscopia. La colonoscopia es un procedimiento en el cual el médico usa un tubo largo, flexible y estrecho con una cámara liviana y diminuta en un extremo, llamado colonoscopio o endoscopio, para examinar dentro del recto y el colon del paciente. Este procedimiento lo hace un especialista en un hospital o en un centro para pacientes ambulatorios. El paciente ocurrió sedantes, anestesia, o un medicamento para el dolor durante el procedimiento. Con una colonoscopia, el médico puede ver y tratar cualquier sangrado gastrointestinal. Sigmoidoscopia flexible. La sigmoidoscopia flexible es un procedimiento en el cual el médico usa un tubo delgado y flexible con una cámara liviana y diminuta en un extremo,
  • 16. llamado sigmoidoscopio o endoscopio, para mirar dentro del recto y el colon sigmoide del paciente y tratar cualquier sangrado. El especialista realiza una sigmoidoscopia flexible en el consultorio médico, en un hospital o en un centro para pacientes ambulatorios. No se necesita anestesia para este procedimiento. Una endoscopia gastrointestinal puede ayudar al médico a ver si el paciente tiene sangrado gastrointestinal, dónde lo tiene y la causa. 4. Pruebas de diagnóstico por la imagen Para ayudar a encontrar la causa del sangrado gastrointestinal, el médico podría ordenar una o más de las siguientes pruebas de diagnóstico por la imagen. No se necesita anestesia para estas pruebas. Tomografía abdominal computarizada. Una tomografía abdominal computarizada usa una combinación de radiografías y tecnología computarizada para crear imágenes del aparato digestivo. Un técnico en radiología hace el procedimiento en un centro para pacientes ambulatorios o en un hospital, y un radiólogo lee y hace un informe de las imágenes. Tránsito de la parte inferior del aparato digestivo. Un tránsito de la parte inferior del aparato digestivo es un procedimiento en el cual el médico usa radiografías y un líquido calcáreo llamado bario para ver el intestino grueso del paciente. Un técnico en radiología y un radiólogo hacen este procedimiento en un hospital o en un centro para pacientes ambulatorios.
  • 17. Tránsito de la parte superior del aparato digestivo. Un tránsito de la parte superior del aparato digestivo es un procedimiento en el cual el médico usa radiografías, fluoroscopia y un líquido calcáreo llamado bario para ver la parte superior del aparato digestivo del paciente. Un técnico en radiología y un radiólogo hacen este procedimiento en un hospital o en un centro para pacientes ambulatorios. Angiograma. Un angiograma es un tipo especial de radiografía en el cual el radiólogo introduce un catéter a través de las arterias grandes del paciente. El radiólogo hace el procedimiento e interpreta las imágenes en un hospital o en un centro para pacientes ambulatorios. El paciente podría recibir un sedante suave que le ayudará a mantenerse relajado y cómodo durante el procedimiento. Exploración con radionúclido. Una exploración con radionúclido NIH external link puede ayudar al médico a determinar la causa de un sangrado gastrointestinal. Un técnico especializado hace esta exploración en un centro para pacientes ambulatorios o en un hospital. El técnico inyecta en el organismo del paciente una mezcla de su sangre y material radioactivo para resaltar la zona del organismo que está sangrando. La dosis de los químicos radioactivos es pequeña, por lo que la probabilidad de que cause daño a las células es baja. Una cámara especial toma fotografías que resaltan el material radioactivo. Para ayudar a determinar la causa del sangrado gastrointestinal, el médico podría ordenar una o más pruebas diagnósticas, como una tomografía abdominal computarizada. 5. Procedimientos para examinar el aparato digestivo Si ninguna de las otras pruebas ayuda al médico a diagnosticar la fuente del sangrado gastrointestinal, un cirujano puede realizar una de las siguientes operaciones para examinar el aparato digestivo:
  • 18. Laparotomía. Durante una laparotomía, el cirujano hará un solo corte en el abdomen del paciente para explorarlo. Durante la operación, el cirujano puede tratar los problemas que causan el sangrado; el paciente ocurrió anestesia general.(19) ANALISIS: Se analiza la capacidad de aislar microorganismos es muy importante ya que a diario no solo es necesario para la investigación, sino que también para las clínicas. Asimismo, la obtención de colonias aisladas con fuerte crecimiento de determinadas especies bacterianas (patógenas o no) presentes en cada muestra siempre es fundamental para poder realizar las mismas mediciones. El medio ha sido una herramienta esencial débil desde el nacimiento de la microbiología, Un medio de cultivo es una colección de nutrientes con factores de crecimiento y otros ingredientes que crean las condiciones para el crecimiento de un microorganismo, La diversidad metabólica de estos es asombrosa. Mientras la diversidad de culturas sea muy importante, no existe una cultura universal de adecuada para todos, y mucho menos las bacterias dedicadas. Las limitaciones en la identificación de infecciones fúngicas justifican un mejor diagnóstico de las infecciones fúngicas invasivas oportunistas y endémicas, que se estima que afectan a más de 300 millones de personas con infecciones fúngicas agudas o crónicas que no son accesibles a los métodos de diagnóstico óptimos. CONCLUSION: Para que los microorganismos puedan crecer en el laboratorio, un medio que proporcione los nutrientes y las condiciones fisicoquímicas suficientes para el crecimiento de los microorganismos en un medio es un medio que contiene agua y un conjunto de nutrientes necesarios para su metabolismo. Además del medio tubular, se debe usar y recomendar una placa de Petri que contenga agar y algunos nutrientes esenciales dependiendo de los microorganismos que se decida aislar, pero las placas de Petri son sólidas y un campo tubular medio en el fondo en el crecimiento microbiano existen áreas de color rosa oscuro y se puede ver en la placa de agar en la placa del área de crecimiento que tengamos aislada siendo esta una masa de células que han evolucionado a partir de ciertas células originales y son denominadas colonias sabiendo que no todos los microorganismos pueden crecer en el laboratorio. Podemos hablar de cultivos bacterianos porque la mayoría de las veces se cultivan en laboratorios clínicos y son bacterias, pero otro tipo de microorganismos, como los casos de hongos, pueden hacer lo mismo. Así que es mejor hablar de cultivos microbianos. La identificación definitiva de una especie requiere de pruebas bioquímicas estas permiten conocer las actividades metabólicas y enzimáticas de los microorganismos.
  • 19. Bibliografía 1. ugr.es. PREPARACION DE MEDIOS DE CULTIVO. [Online].; 2018 [cited 2021 junio 30. Available from: https://www.ugr.es/~cjl/medios%20de%20cultivo.pdf. 2. Cuevas LB. TÉCNICAS DE TINCIÓN Y OBSERVACIÓN DE MICROORGANISMOS. [Online].; 2020 [cited 2021 junio 30. Available from: https://www.sintesis.com/data/indices/9788490773185.pdf. 3. MDMADMID. Los medios de cultivo. [Online].; 2019 [cited 2021 JUNIO 30. Available from: https://mdmcientifica.com/medios-cultivo-microbiologia-mas-usados/. 4. goumh. Preparación de Medios. [Online].; 2017 [cited 2021 JUNIO 30. Available from: https://sites.google.com/a/goumh.umh.es/practicas-de-microbiologia/indice/preparacion- de-medios-de-cultivo. 5. Mondino DP. Preparación de medios de. [Online].; 2018 [cited 2021 JUNIO 30. Available from: http://www.pv.fagro.edu.uy/fitopato/cursometodosfito/03-Medios_de_cultivos.pdf. 6. Alessandra P. PREPARACIÓN DE CULTIVOS. [Online].; 2020 [cited 2021 junio 30. Available from: http://www.ucv.ve/fileadmin/user_upload/facultad_farmacia/catedraMicro/10_Preparaci% C3%B3n_de_medios_de_cultivo.pdf. 7. fileadmin. CULTIVO DE LOS MICROORGANISMOS. [Online].; 2017 [cited 2021 junio 30. Available from: http://www.ucv.ve/fileadmin/user_upload/facultad_farmacia/catedraMicro/08_Tema_5_Cu ltivo.pdf. 8. Maria G. Medios de cultivo. [Online].; 2019 [cited 2021 junio 30. Available from: https://edulabc.com.mx/medios-de-cultivo/. 9. PRIETO PB. principales medios de cultivo. [Online].; 2017 [cited 2021 JUNIO 30. Available from: https://medicoplus.com/ciencia/medios-cultivo-bacterias. 10. biomerieux. Medios de cultivo. [Online].; 2018 [cited 2021 junio 30. Available from: https://www.biomerieux.es/microbiologia-industrial/medios-de-cultivo-para-la-realizacion- de-pruebas-de-sensibilidad-los.
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