Annuaire des Plateformes Imagerie et Irradiation Rhône-Alpes Auvergne - CLARA

CLARA / Annuaire des plateformes 2014 1

CLARA / Annuaire des plateformes 20142
INFORMATION
Annuaire disponible en version électronique sur www.canceropole-clara.com/ressources
Si vous souhaitez voir figurer votre plateforme dans l’annuaire en ligne, merci de nous
contacter à infos@canceropole-clara.com

4 ANIPATH - Centre d’Histopathologie du Petit Animal de laboratoire
6 ANIPATH Clermont - Plateforme d'anatomo-pathologie du petit animal
8
CERMEP-imagerie du vivant - Centre d'Etude et de Recherche Multimodal
et Pluridisciplinaire en imagerie du vivant
10 CICS - Centre Imagerie Cellulaire Santé
12 CIQLE - Centre d'Imagerie Quantitative Lyon-Est
14 Clinatec - Une plateforme technologique translationnelle multidisciplinaire
16 EMPLAT - Plateforme de Microscopie Electronique
18 GAIA - Plateforme d'imagerie nucléaire
20 IRMaGe - Plateforme spécialisée en IRM et neurophysiologie
22 M4D - Imagerie Cellulaire
24 MEC - Plateforme de Microscopie électronique de la Cellule
26 MiBiop - Microscopie pour la Biophysique
28 MicroCell - Microscopie Photonique - Imagerie Cellulaire
30 NanOpTec - Centre de Nano-Opto-Technologies
32 OPTIMAL - Plateforme d'imagerie optique du petit animal
34 PAVIRMA - Plateforme d'irradiation en Auvergne
36 PIM Lyon Tech - Plateforme d'Imagerie Multimodale Lyon Tech
38 Radiograaff - Radiobiologie au Van de Graaff
40 X-Ray CERVO Lyon-Sud - Plateforme d'irradiation par rayons X
42 Imagerie intégrée multimodalité
Imagerie
tissulaire
Imagerie
cellulaire
Imagerie
in-vivo
Irradiation

ANIPATH
Centre d’Histopathologie du Petit Animal de laboratoire
DOMAINE D’EXPERTISE
Imagerie cellulaire et tissulaire dédiée à l’étude des modèles
animaux, histologie
INFORMATIONS GENERALES
Responsable de la plateforme : Jean-Yves SCOAZEC
Contact : anipath@univ-lyon1.fr
 Faculté de Médecine Lyon-Est (site Laennec), 7 Rue G.
Paradin, 69372, Lyon cedex 08
@ http://sfrsantelyonest.univ-lyon1.fr/liens/anipath.html
Appartenance : European Mouse Pathology Workgroup
Equipex PHENOCAN
Effectif : 3
DESCRIPTION DE L’ACTIVITE
ANIPATH, née de la volonté commune de Rhône Alpes Genopole et de l'Université
Claude Bernard Lyon 1, est aujourd’hui gérée par l’Université Claude Bernard Lyon 1.
La plate-forme s’est initialement orientée vers le phénotypage et l’étude des animaux
transgéniques, avant de diversifier progressivement son activité à une très large
gamme de modèles animaux.
THEMATIQUE

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
La plate-forme fonctionne selon des standards de qualité professionnels et garantit la
traçabilité des échantillons. Elle dispose d’équipements lui permettant de traiter des
prélèvements cellulaires ou tissulaires, fixés ou congelés (microtome, cryostat,
automate d’IHC). Elle est équipée d'outils d'imagerie tissulaire performants, incluant
des microscopes conventionnels, un microscope à fluorescence, des systèmes de
numérisation d’images et d'analyse morphométrique. Elle peut réaliser à façon des
puces tissulaires (TMA), technique récente d’analyse à haut débit d’échantillons
tissulaires.
PRESTATIONS PROPOSEES
Anipath est dotée d’un plateau technique et d’un personnel qualifié qui lui
permettent de proposer des prestations diversifiées et complémentaires :
- la réalisation de l’ensemble des techniques d’imagerie tissulaire appliquées à
l’animal : histologie, histochimie, immunohistochimie, hybridation in situ
- l’interprétation des résultats, en partenariat avec l'utilisateur, grâce au concours
d'un réseau d'experts dans les différentes disciplines morphologiques
- le conseil technique aux utilisateurs et l’aide à la réalisation de protocoles
d’étude adaptés aux objectifs des chercheurs

ANIPATH Clermont
Plateforme d'anatomo-pathologie du petit animal
Analyses anatomo-pathologiques, histologie, immunohistochimie
et imagerie fond clair, fluorescence
Responsable de la plateforme : Pierre VAL
Contact : pierre.val@univ-bpclermont.fr
 Campus des Cézeaux, 24 avenue des Landais, 63171, Aubière
@ https://www.gred-clermont.fr/directory/platform/en/anipath
Appartenance : CNRS/INSERM/Université Blaise Pascal
Effectif : 1 AI
Le plateau technique permet de réaliser le traitement d'échantillons (inclusion
paraffine/OCT), les coupes (paraffine/OCT), les colorations histologiques,
l'immunohistochimie et l'hybridation in situ sur coupes et tissus entiers. La majorité
des process (inclusion, IHC, HIS) est automatisée. Le plateau dispose également de
matériel de microscopie permettant la dissection, l'observation et l'acquisition
d'images en fond clair et fluorescence. Sont traités aujourd'hui des tissus murins, des
plantes et des insectes.
THEMATIQUE

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
Processeur de tissus STP120 Microm (déshydratation et passage dans la paraffine).
Automate d'inclusion EC350 Microm (inclusion dans la paraffine). Deux microtomes
HM340E Microm, un cryostat HM560 Microm. Colorateur HMS70. Automates IHC/HIS sur
lames ou tissus entiers Intavis InSitu Pro VSi. Deux loupes binoculaires Leica MZ7.5 avec
caméra Leica DFC500. Microscope Zeiss Axioplan 2 avec caméras couleur et N&B.
Moyens biologiques
Modèles animaux de physiopathologie prostatique,
épididymaire, testiculaire et surrénalienne (souris
transgéniques, KO et KI)
Infrastructures spécifiques
Animalerie agréée OGM (capacité 5000 animaux),
plateau de transgenèse
CONDITIONS D’ACCES
Accès gratuit aux équipes du GReD, facturation pour équipes extérieures
Le plateau ne fournit pas de prestation. Il assure par contre la formation et
l'encadrement d'utilisateurs potentiels. L'assistant ingénieur est disponible pour
assurer le bon fonctionnement du plateau (approvisionnement, veille
technologique) et la mise au point de protocoles.
© Pierre Val

CERMEP-imagerie du vivant
Centre d'Etude et de Recherche Multimodal et
Pluridisciplinaire en imagerie du vivant
Imagerie in-vivo pour la recherche sur l'homme et l'animal : TEP,
IRM, MEG . Radio-chimie émetteurs de positons.
Responsable de la plateforme : Gérard GIMENEZ
Contact : gimenez@cermep.fr
 59 boulevard pinel, 69677, BRON Cedex
@ www.cermep.fr
Appartenance : FLI ( France Life Imaging )
Labellisation : ISO 9001, IBiSA ( infrastructures Biologie Santé
Agronomie)
Effectif : 28
Mise en œuvre de protocoles d'imagerie in-vivo pour la recherche sur l'homme et
l'animal. Techniques d'imagerie disponibles : TEP (tomographie par émission de
positons), TDM (tomodensitométrie), TEP/IRM simultanée, IRM (résonance magnétique
nucléaire), MEG (magnéto-encéphalographie)
Développement et production de radio-traceurs émetteurs de positons
Développement d'une R&D méthodologique en propre ou en partenariat avec des
unités de recherche
Ouvert sur la communauté scientifique académique et l'industrie
THEMATIQUE

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
Cyclotron IBA 18 Mev Cyclone 18 / 9. Cellules blindées pour la production de radio-
traceurs. Automates de synthèses de radio-traceurs. Système de contrôle qualité des
radio-traceurs : HPLC, CPG
Caméra TEP/CT SIEMENS BIOGRAPH 64 S
IRM 1.5T Siemens Magnetom Sonata. IRM 3T Siemens Magnetom Prisma
MEG CTF 275
MicroIRM BRUKER 7T . MicroTEP/CT Siemens Inveon . MicroCT Skyscan 1076
IRM/TEP Biograph mMR
Animalerie rongeurs, porcs, chats
Laboratoire de production de radio-traceurs
Laboratoire de radio-pharmacie
Aucune
Accompagnement administratif et scientifique au montage de protocole d'imagerie
Développement de méthodes
Réalisation des examens d'imagerie
Accompagnement aux traitements des images.
Production de radio-traceurs émetteurs de positons
Hébergement d'animaux (rongeurs, porcs)

CICS
Centre Imagerie Cellulaire Santé
Responsable de la plateforme : Philippe VAGO
Contact : pvago@chu-clermontferrand.fr
 Faculté de Médecine, 28 place Henri Dunant, 63000,
Clermont Ferrand
Appartenance : Université d'Auvergne
Réseaux : RCCM, AFC
Effectif : 3 ETP(1 IE, 2 Tech)
Analyse en Microscopie Electronique en Transmission (MET) et en Microscopie
Electronique à Balayage (MEB) :
Etudes ultrastructurales pour des échantillons biologiques (tissus, cellules, ...)
ou non biologiques (microparticules...)
Immunolocalisation en MET
Analyse en microscopie optique :
Tissus, cellules, micro-organismes
Immunomarquage (marqueurs enzymatiques ou fluorochromes)
Analyse d’images : comptage, colocalisation...
Analyse en cytométrie de flux
Analyse en microdissection laser
Préparation des échantillons pour les études en ME et en histologie
Microscopie électronique, Microscopie photonique, Cytométrie en
flux, Microdissection laser
THEMATIQUE

© CICS
EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
Microscope Electronique en Transmission Hitachi H-7650
Microscope Electronique à Balayage Jeol 6060-Low Vacuum
Microscopes Olympus + caméras (couleur, NB) + logiciel d’analyse d’images Metamorph
Cytomètre en flux BD LSRII
Microdissecteur Laser Arcturus Pixcell II
AFS II, AMW, Ultramicrotome Leica pour la préparation des échantillons en ME.
Automate à déshydratation et station à inclusion Microm Microtech, microtomes et
cryostat Leica pour la préparation des échantillons en histologie
Ouvert à tous laboratoires publics ou privés
Prise en charge complète des projets en microscopies optique et électronique de
la préparation des échantillons au rendu des résultats
Expertise technique dans les domaines d’application
Assistance et formation des utilisateurs
Mise à disposition des équipements du CICS

CIQLE
Centre d'Imagerie Quantitative Lyon-Est
Responsable de la plateforme : Ruth RIMOKH
Contact : ruth.rimokh@lyon.unicancer.fr
 Faculté de Médecine Lyon-Est, rue Guillaume Paradin, 69372,
Lyon cedex 08
@ http://sfrsantelyonest.univ-lyon1.fr/plateau31-ciqle.html?
Appartenance : GDR2588, RtMfm, RCCM, RECAMIA
Labellisation : plateforme labellisée Ibisa au titre de membre
fondateur de Lyon Bio-Image
Effectif : 5 ETP (personnels statutaires)
Le CIQLE est un centre commun de l’Université Claude Bernard de Lyon et une
composante fondatrice de Lyon Bio-Image (Plateforme d'Imagerie Lyonnaise labellisée
Ibisa). Sa mission est de mettre à la disposition des communautés académique et
industrielle des équipements et des personnels permanents pour les assister dans
l’utilisation des appareils, pour préparer leurs échantillons et pour mettre en place
des protocoles dans les domaines de la microscopie électronique, photonique et
traitement d'images. A ces fins, l’UCBL et l’Inserm y affectent des personnels. L’achat
des équipements est co-financé (Inserm, CNRS, HCL, UCBL, SFR, Fondations,
Associations, fonds propres) sous la coordination de la SFR Santé Lyon-Est, qui est une
Unité Mixte de Service labellisée Inserm, CNRS et UCBL. L'entretien des équipements
est assuré par la facturation des prestations.
THEMATIQUE
Microscopie électronique, microscopie photonique
(vidéomicroscopie, confocal mono et bi-photon, super-résolution
et microinjection cellulaire). Formation, assistance. Expertise et
prestation en traitement d'images

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
Microscopie électronique : MET Jeol 1400 120 kV, avec caméras numériques et
détecteur EDS, robot de cryosubstitution, ultramicrotomes, contrasteur de grille
automatisée, système informatisé de suivi des échantillons (logiciel TRACEMET
développé en interne). Microscopie photonique : confocal LSM 780 Zeiss mono et multi-
photon avec contrôle environnemental, confocal SP5 X laser blanc Leica avec détecteur
hybride, STORM haute-résolution Nikon, stations de vidéomicroscopie (Biostation
Nikon, axiovert 200-M), logiciels de traitement et de reconsctrucion d'image (ImageJ,
Imaris, Amira)
Plateforme installée sur 3 sites : site Laennec 180 m², site Rockefeller 180 m², site
Centre Léon Bérard 30 m²)
Ouvert aux structures académiques, universitaires et industrielles. La réservation des
équipements se fait sur le site internet. Les tarifs sont disponibles sur le site internet.
Microscopie électronique : prestation complète de l'échantillon à l'image en
ultrastructure conventionnelle, immunogold sur cellules, tissus, bactéries, virus,
pseudoparticule. Assistance pour l'acquisition, la lecture et l'interprétation des
images. Microscopie photonique : formation, assistance et expertise dans les
domaines de la microscopie plein champ, confocale et haute-résolution.
Traitement d'image : formation, conseil et mise en place de protocole de
traitements d'images.

THEMATIQUES
Clinatec
Clinatec: une plateforme technologique translationnelle
multidisciplinaire
Responsable de la plateforme : François BERGER
Contact : francois.berger@chu-grenoble.fr
 CLINATEC CEA LETI 17 rue des Martyrs, 38054, GRENOBLE cedex 09
@ http://issuu.com/co-influence/docs/plaquette-clinatec-ps
Appartenance : Centre Hospitalier Universitaire de GRENOBLE
INSERM UA 01
GDR Nouvelles méthodologies en imagerie du vivant et Microscopie
fonctionelle du vivant
Labellisation : FLI, IBISA
CLINATEC est un centre de recherche technologique translationnel associant le CHU
de Grenoble, l’INSERM, l’UJF et le CEA-LETI. Sa mission est d’accélérer le transfert de
l’innovation technologique au lit du patient dans les meilleures conditions de sécurité.
Sa spécificité est dans son domaine de recherche clinique lié aux pathologies
neurologiques (neurodégénératifs, handicap et cancer) et dans l’utilisation des micro-
nanotechnologies et de l’électronique pour la santé, expliquant sa localisation sur le
campus MINATEC. Clinatec est aussi un hôtel à projet ouvert aux industriels et aux
chercheurs dans d’autres domaines d’activité qui pourraient bénéficier de ses
compétences et de sa plateforme.
THEMATIQUE
Unité préclinique et clinique pour la validation des dispositifs
médicaux innovants participant au développement sécurisé et
accéléré de solutions technologiques nouvelles au service des
patients, micro-nanosystemes et électronique pour la santé,
biomarqueurs

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
Secteur clinique: IRM diagnostique et per op 1,5 tesla (première IRM interventionnelle
en France), robot chirurgical Medtech, SPECT-CT, MEG, micro-endoscopie confocale
(CellVizio), Fluobeam, microscopie de fluorescence interventionelle
Secteur préclinique (animalerie): IRM wide bore 4.7 T, microscopie et endoscopie
intravitale
Un PACS (Picture Archiving and Communication System) centralise l’ensemble des
données de l’imagerie
Secteur biologie : plateforme Affymetrix, Ion torrent, PCR digital, chaine d’analyse de
spectrométrie de masse, imagerie MS, « sample prep » automatisé
Moyens biologiques
Sérothèque, tumorothèque cerveau et tumeurs cérébrales incluant des ressources
cellulaires et moléculaires associées, plusieurs modeles animaux de gliomes chez
souris, rats, primates et porcs
Bloc opératoire et secteur clinique dédié, animalerie avec bloc opératoire et imagerie
multimodale (IRM, X, optique) intégrée, laboratoire de culture cellulaire L2
COMMENTAIRES
Cette plateforme est animée par une équipe dont les compétences sont dans le domaine de la
neuro-oncologie. Cependant elle fonctionne aussi en hôtel à projet et accueille dès à présent
des projets pour d'autres organes. Les coordinateurs cliniques apportent les compétences
spécifiques et la structure ses compétences méthodologiques.
Comité scientifique
CLINATEC est destiné à la validation de preuves de concept précoces dans le
domaine des micro-nano-systèmes pour la santé particulièrement en cancérologie.
Nous mettons à disposition :
1) un comité de concertation technologique translationnel pour guider le plus tôt
possible le dépôt de dossier de recherche clinique auprès des autorités
réglementaires
2) Une équipe multidisciplinaire médicale et paramédicale, intégrant ingénieurs,
biologistes, mathématiciens
3) une PTF préclinique (modèles gros animaux)
4) une PTF d’imagerie multimodale et interventionnelle
5) une PTF biomarqueur
6) Un secteur clinique dédié à des essais de recherche biomédicale. Son activité
inclut des consultations, de l'hospitalisation de jour et de l'hospitalisation
complète. Après ces premiers essais sur 5 à 10 patients qui sont la spécificité de
clinatec ; le rôle de l'équipe est aussi d'assurer la dissémination de la technologie
dans un environnement hospitalier courant et la formation des personnels de santé.

Microscopie électronique, cryo-microscopie électronique,
microscopie électronique cellulaire, contrôle qualité, particules
isolées
Responsable de la plateforme : Guy SCHOEHN
Contact : guy.schoehn@ibs.fr
 IBS 71 Avenue des Martyrs CS 10090, 38044, Grenoble Cedex 9
@ http://www.ibs.fr/groupes/groupe-microscopie-electronique-
et/plateforme-de-microscopie/
Appartenance : UMS3518, Partnership for Structural Biology,
INSTRUCT
Labellisation : Certification ISO9001
Effectif : 6
La plateforme propose trois types de prestations : contrôle qualité (coloration
négative), cryo-microscopie électronique et microscopie électronique cellulaire. La
plateforme propose également la mise à disposition de ses équipements. Des
collaborations scientifiques peuvent être mises en place pour répondre à des
demandes précises nécessitant des développements spécifiques.
THEMATIQUE
EMPLAT
Plateforme de Microscopie Electronique

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
La plateforme possède 3 microscopes électronique (FEI Tecnai12 120 kV, FEI Tecnai
F20 200kV FEG, FEI Tecnai POLARA 300 kV FEG). Les deux derniers microscopes
fonctionnent en mode cryo et le Polara sera équipé d'une caméra à détection directe
d'électrons dans les mois qui viennent. Plusieurs instruments associés aux microscopes
sont également disponibles (évaporateur de carbone, appareil de Glow-Discharge, FEI
Vitrobot, scanner d'images haute résolution). Pour la préparation d'échantillons
cellulaires, la plateforme possède un automate de cryo-fixation sous haute pression
(Leica EM-HPM100), un automate de cryo-préparation (Leica EM-AFS2 + Em-FSP), un
(cryo-)ultra-microtome (Leica EM-UC7 + EM-FC7) et un automate d'immuno-marquage
(Leica EM-IGL).
COMMENTAIRES
La plateforme fait partie de l'Unité Mixte de
Service UMS3518 mais est localisée à l'IBS
Pour nous contacter : ibs-plateforme-
em.contact@ibs.fr
Les services de la plateforme sont soumis à facturation. Les échantillons doivent respecter le
niveau de sécurité L1 ou L2 et être conformes à la déclaration OGM correspondante.
Contrôle qualité (vérification de l'homogénéité d'un échantillon, détermination de
l'état d'oligomérisation de certaines protéines, analyse d'images et reconstruction
tridimensionnelle de complexes protéiques). Cryo-microscopie électronique
(technique permettant d'observer des échantillons biologiques dans leur état natif,
analyse d'images et reconstruction tridimensionnelle de complexes protéiques).
Tomographie électronique. Microscopie électronique cellulaire (études
morphologiques cellulaires/bactériennes, localisation de protéines au niveau sub-
cellulaire). La plateforme propose également la mise à disposition de ses
équipements sous certaines conditions.

GAIA
Plateforme d'imagerie nucléaire
Oncologie, métabolisme, neuroscience, cardiologie, imagerie
TEP, imagerie SPECT, imagerie CT, échographie
Responsable de la plateforme : Catherine GHEZZI
Contact : catherine.ghezzi@chu-grenoble.fr
 CHU Grenoble Rond point de la Chantourne, 38100, Grenoble
@ http://www.imagerie-grenoble.fr/
Appartenance : France Life Imaging
Labellisation : IbiSa
GAIA est localisé au sein de l'UMR 1039 qui regroupe le Laboratoire
Radiopharmaceutique Biocliniques (LRB) et la clinique de Médecine Nucléaire du CHU
de Grenoble. Cette unité développe depuis plus de 25 ans des radiopharmaceutiques,
molécules marquées par des atomes radioactifs et utilisées pour le diagnostic et la
thérapie. Les compétences développées sur la plateforme vont du marquage radioactif
de composés aux études précliniques et cliniques.
THEMATIQUE

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
Caméra SPECT/CT Bioscan
Caméra PET/CT Bioscan
Caméra Cliniques SPECT et TEP
Echographe Vevo
Autoradiographie
Plateforme animalerie : petits et gros animaux, animalerie agrémentée, microchirurgie
Radiochimie : radio-HPLC, radio-CCM, activimètres, compteurs Gamma et Bêta
Prestations de services, mise à disposition d'équipements, conseils/expertise, collaborations
de recherche académiques / industrielles
Radiomarquage de divers composés (molécules organiques, protéines, anticorps,
sucres, peptides, bactéries, ADN, ARN, cellules,…)
Evaluation in vivo de la pharmacocinétique et de la biodistribution d'une molécule
d'intérêt pharmaceutique
Evaluation de l'efficacité thérapeutique de composés d'intérêt (tumeur, ischémie,
métabolisme,...)
Etude de phénommènes biologiques chez l'animal en utilisant des radiotraceurs
existants (suivi de croissance tumorale, mesures de perfusion cérébrale ou
cardiaque, ou encore études métaboliques)
Validation de modèles animaux

IRMaGe
Plateforme spécialisée en IRM et neurophysiologie
IRM, neuroimagerie, explorations fonctionnelles (EEG, TMS, NIRS)
et métaboliques, imagerie fonctionnelle de la vascularisation
Responsable de la plateforme : Chantal REMY
Contact : chantal.remy@ujf-grenoble.fr
 Bâtiment Edmond J. Safra, Université Joseph Fourier - Site
Santé, Chemin Fortuné Ferrini, 38700, La Tronche
@ https://irmage.ujf-grenoble.fr/accueil?destination=node/850
Spécialisée en neuroimagerie et explorations fonctionnelles associées, IRMaGe est le
partenaire idéal pour accompagner des projets de recherche sur petit animal et
primate non humain, des projets de recherche à visée clinique ou cognitive, mais
également pour le développement méthodologique d'imagerie et de spectroscopie
RMN ou neurophysiologie.
Dans le contexte de la cancérologie, peuvent être réalisés, pour des études
pharmacologiques, des suivis longitudinaux du volume tumoral, des œdèmes, du
métabolisme, de la vascularisation et de l'angiogenèse sur des modèles orthotopiques
ou sous-cutanés (rat ou souris) ou chez l'homme.
THEMATIQUE

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
3 IRMs petit animal : 4,7 T, 7,0 T et 9,4 T (rat, souris) - monitoring physiologique
2 IRMs corps entier : 3T
3 EEGs (électro-encéphalographie) haute résolution, compatibles TMS et IRM
TMS (stimulation magnétique transcrânienne) neuronaviguée et robotisée
Appareil de spectroscopie proche infra-rouge (NIRS)
Enregistrements multi-unitaires
Coordination possible pour imagerie multimodale (IRM, optique, nucléaire)
Moyens biologiques
Modèles de tumeurs cérébrales
Accès à une plateforme d'animalerie : souris, rats, primates
Animalerie agréée ISO9001
Salles de microchirurgie
COMMENTAIRES
Lemasson B et al., NMR in Biomedicine 2011; 24:473-482.
Lux F et al., Angewandte Chemie int Ed Engl, 2011, 50: 12299 –12303.
Coquery N et al., PLoS ONE, 2012; 7:e40567
Lemasson B et al, Radiology. 2012; 265:743-752.
Bouchet et al., Radiother Oncol. 2013; 108:143-148.
Prestations de services, mise à disposition d'équipements, conseils, collaborations de
recherche académiques / industrielles
Développement méthodologiques (animal, homme)
Phénotypage de souris transgéniques
Suivi de l'évolution de pathologies (animal, homme)
Études pharmacologiques (animal, homme)
Evaluation de l'efficacité de nouveaux traitements (animal, homme)
Imagerie cellulaire et moléculaire (animal)
Évaluation de nouveaux agents de contraste (animal)
Recherche cognitive (homme)
Exploration fonctionnelles cérébrales (homme)
Evaluation de la compatibilité RMN de matériaux
Etude d'échantillons tissulaires à haute résolution

M4D
Imagerie Cellulaire
Vidéo microscopie, microscopie confocale, cytométrie en flux
Responsable de la plateforme : Jean-Philippe KLEMAN
Contact : jean-philippe.kleman@ibs.fr
 IBS UMR 5075 (CNRS CEA UJF)- Campus EPN - 71 avenue des
Martyrs, 38044, Grenoble Cedex 9
@ http://www.ibs.fr/plates-formes/autres-instruments-et/imagerie-
cellulaire/
Appartenance : Integrated Structural Biology - Grenoble UMS 3518
(CNRS CEA UJF EMBL)
French Integrated Structural Biology network (FrisBi) - IBISA
Plateforme de Biologie Structurale - Grenoble
Labellisation : ISO 9001:2008 LRQA du 3 juillet 2011
Effectif : 3 permanents
La plate-forme accueille les utilisateurs dans un environnement de niveau L2 (pièce
de culture dédiée). Nous mettons à disposition nos microscopes (vidéomicroscope et
confocal à roue de Nipkow - Olympus Perkin-Elmer et Andor) optimisés pour l'étude de
cellules vivantes. Nous sommes également équipés d'un cytomètre en flux (Miltenyi
Biotech) capable de mesurer les fluorescences de 8 canaux simultanément,
compatibles avec l'étude des protéines fluorescentes (Ex. 405, 488 et 561nm).
THEMATIQUE

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
Vidéo-microscope inversé à épifluorescence motorisé, chambre d'incubation, Z-piezo,
4 canaux fluo, DIC, 20X 40X et 60X, acquisition CCD
Microscope confocal inversé motorisé à roue de Nipkow, chambre d'incubation, CO2,
Z-piezo, 6 canaux fluo, DIC, 20X 40X 60X et 100X, acquisition dual EMCCD, module
FRAP/PA
Cytomètre en flux : 3 lasers, 8 canaux fluo, échantillonneur robotisé
Pièce de culture L2 dédiée
Ordinateurs permettant le traitement des données
Légende : acquisition confocale (60x NA
1,42; EMCCD iXon Ultra - Andor;
Z=44x0,28µm) cellules NIH-3T3 exprimant
HA-Survivine (Rouge) et transfectées par
une construction GFP du transporteur
membranaire AIT (vert). ADN (Bleu, DAPI).
© F. Lacroix – IBS
Formation obligatoire et inscription sur le calendrier des réservations
Nos instruments sont mis à disposition des utilisateurs après une formation
obligatoire dispensée par nos soins sur l'instrument concerné. Les utilisateurs sont
également formés pour l'utilisation des logiciels d'acquisition et de traitement des
données. Des ordinateurs pour le traitement sont mis à disposition. L'accès est
possible après réservation du matériel (calendrier).

MEC
Plateforme de Microscopie Electronique de la Cellule
Neurosciences, oncologie, vascularisation, spermatozoides,
ovaires
Responsable de la plateforme : Karin PERNET-GALLAY
Contact : karin.pernet-gallay@ujf-grenoble.fr
 Grenoble Institut des Neurosciences
chemin Fortuné Ferrini, 38700, La Tronche
@ neurosciences.ujf-grenoble.fr/
Appartenance : INSERM U836
Université Jopseph Fourier
Labellisation : plateforme Ibisa
Effectif : 2
Inclusion Epon pour études morphololgiques
Immunomarquage à l'or sur des cryosections pour l'immunolocalisation de protéines
THEMATIQUES

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
Microscope électronique à transmission (JEOL 1200 EX)
Ultra-(cryo)-microtome (Ultracut S, Leica)
Appareil de congélation haute Pression (HPM100, Leica)
Appareil de cryosubstitution (AFS2 Leica)
Laboratoire pour l'inclusion
Local pour la coupe et la préparation cryo des échantillons
Pièce pour le microscope électronique
Facturation à l'heure
Mise à disposition
Microscope électronique à transmission (JEOL 1200 EX)
Ultra-(cryo)-microtome (Ultracut S, Leica)
Appareil de congélation haute pression (HPM100, Leica)
Appareil de cryosubstitution (AFS2 Leica)
Mesures morphométriques (iTEM, Olympus)
Inclusion Epon pour analyse morphologique
Méthode de Tokuyasu pour immunomarquage

MiBiop
Microscopie pour la Biophysique
Microscopie à forces de traction, imagerie ultra-sensible en milieu
diffusant, mesure de mobilité moléculaire, optique adaptative,
microscopie à force atomique, biophysique
Responsable de la plateforme : Antoine DELON
Contact : antoine.delon@ujf-grenoble.fr
 140, rue de la physique - Université Joseph Fourier -
Domaine universitaire, 38402, Saint Martin d'Hères Cedex 9
Appartenance : Laboratoire Interdisciplinaire de Physique (LIPhy)
UJF (Université de Grenoble 1) et CNRS
GDR 2588 (Microscopie fonvtionnelle du vivant)
Effectif : Environ 110 pers. (non permanents compris)
Le plateau MiBiop est un lieu de développement instrumental et méthodologique, qui
met à disposition de ses utilisateurs des instruments de microscopie uniques par leurs
performances en termes de sensibilité, de fonctionnalité et de précision. Ce sont en
général des prototypes qu’on ne retrouve pas sur une autre plate-forme. Développés
au laboratoire par des chercheurs, ils répondent aux besoins des chercheurs : super-
résolution, microscopie à force de traction, microscopie à corrélation de fluorescence,
optique adaptative, microscopie non linéaire, microscopie à force atomique.
THEMATIQUE

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
Microscope bi-photonique droit de très grande étendues spectrale (680 – 1080 nm)
Microscope FCS et multi-FCS (488 et 637 nm)
Microscopes pour multi-FRAP, photoactivation/photoinactivation
Microscope confocal pour l'optique adaptative (561 nm)
Microscope pour la mesure de forces de traction
Microscope à force atomique couplé à un microscope inversé (en milieu liquide)
Microscopie ultra-sensible d’objets en milieux diffusants par rétro-diffusion à 1080 nm
Spectrofluorimètre Jobin-Yvon en absorption (250 – 1000 nm) et fluorescence (290 –
850 nm)
Micro-fabrication
Compte-tenu de l'axe développement de la plate-forme, nous privilégions les "prestations"
sous forme collaborative.
Imagerie ultra-sensible en milieu fortement diffusant
Optique adaptative
Imagerie profonde de tissus biologiques
Mesures de forces exercées par des cellules sur des substrats microstructurés
Mesure de mobilité et d’interactions moléculaires dans des cellules vivantes
Microscopie à force atomique ; mesure de l’adhérence et de la rhéologie
cellulaire

MicroCell
Microscopie Photonique - Imagerie Cellulaire
Prestations et développement des applications innovantes en
microscopie de fluorescence, détection des mobilités et des
complexes moléculaires, cytomtrie de flux et tri cellulaire
Responsable de la plateforme : Alexei GRICHINE
Contact : alexei.grichine@ujf-grenoble.fr
 IAB, CRI-U823, Domaine de la Merci, Rond point de la
Chantourne, 38706, La Tronche
@ http://www-iab.ujf-grenoble.fr/plf_d.php?b=2&c=23&i=9
Appartenance : GDR 2588, RTmfm
Labellisation : GIS IBiSA, Imagerie Sciences du Vivant - In Vitro
(ISdV)
Effectif : 5
Le plateau Micro-Cell IAB fait partie de la plate-forme grenobloise Imagerie Sciences
du Vivant (ISdV) de l’Université Joseph Fourier, labellisée par le GIS IBiSA. Il est
localisé au sein de l’Institut Albert Bonniot (IAB), Centre de Recherche Inserm/UJF
(U823). Les techniques de microscopie de fluorescence dans la cellule vivante sont le
cœur de métier de ce plateau. Nos points forts : microscopie confocale et
biphotonique, spectroscopie de fluorescence, développements technologiques et
méthodologiques, équipements de pointe, microscopies sur cellules vivantes.
MicroCell offre : prestations de services, mise à disposition d’équipements, formations
théoriques et pratiques, collaborations de recherche académique / industrielle.
THEMATIQUES

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
Equipements d’imagerie
4 stations confocales (dont 2 spectrales) (LSM710, 510, Andromeda)
2 modules de spectroscopie à corrélation (Confocor2 ,3)
2 systèmes biphotoniques et FLIM (SPC830)
4 vidéomicroscopes inversés, motorisées
2 modules TIRF et FRAP
5 microscopes droits, motorisés
Equipements de cytometrie
2 analyseurs (LSR2, Accuri), 1 trieur (BD FACS Aria)
5 postes informatiques dédiés à l’analyse
Logiciels d’acquisition et d’analyse : MetaMorph, ZEN, AxioVision,
Volocity, SPCImage, SimFCS, Origin, DIVA
Equipements complémentaires accessibles : spectrophotomètre, spectrofluorimètres,
équipements de métrologie
100 m2
de surface dédiée à l'imagerie de fluorescence à bas niveau de lumière et
température stabilisée, équipement de culture cellulaire, salle d'analyse et traitement
des données
© IAB CRI U823, équipe 1
Tout laboratoire académique ou privé, accès via Floralis/UJF : Valentine PANEL - 04 56 00 60
42, responsable scientifique : Dr. Yves USSON - 04 56 52 00 74, responsable technique : Dr.
Alexeï GRICHINE - 04 76 54 94 89
Imagerie cellulaire multiparamétrique : migration cellulaire, localisation
subcellulaire, interactions in situ, dynamique moléculaire, photomanipulations
Microscopie confocale (3D, spectrale, ultrarapide, FRAP, FLIP, FRET,
photoactivation, anisotropie, imagerie en comptage de photons)
Spectroscopie à corrélation de fluorescence (FCS, FCCS, RICS)
Microscopie biphotonique (2PE, SHG, NIR-NIR, Spectroscopie d’excitation 2P)
Microscopie de fluorescence à onde évanescente TIRF et photo(in-)activation (CALI,
PA)
Optogénétique et photomanipulations multidimentionnelles en cellule vivante
Imagerie en durée de vie de fluorescence (TCSPC-FLIM, FAD)
Microscopie à épifluorescence et contrastes transmises, vidéomicroscopie
Imagerie 3D par illumination structurée
Traitement et analyse d’images et données spectrales

NanOpTec
Centre de Nano-Opto-Technologies
Imagerie et spectroscopie de nanomatériaux et de milieux
biologiques (nanoparticules métalliques, nanoparticules
diélectriques dopées par des terres rares, molécules et
biomolécules, interfaces, membranes cellulaires,…)
Responsable de la plateforme : Pierre-François BREVET
Contact : pierre-francois.brevet@univ-lyon1.fr
 Centre NanOpTec, Dép. de Physique, 14 rue Enrico Fermi, Bât.
G. Lippmann, UCBL La DOUA, 69622, Villeurbanne
@ http://nanoptec.univ-lyon1.fr/
Appartenance : ORA - Pôle Optique Rhône-Alpes
RTmfm - Microscopie Photonique de Fluorescence Multidimensionnelle
LBI associé - Lyon Bio -Image
Effectif : environ 70, majoritairement des permanents de l'Institut
Lumière Matière (ILM)
Les activité de la plateforme NanOpTec s’articulent autour de l'imagerie et la
spectroscopie de nanomatériaux et de milieux biologiques (nanoparticules
métalliques, nanoparticules diélectriques dopées par des terres rares, molécules et
biomolécules, interfaces, membranes cellulaires,…), notamment à l’échelle du nano-
objet unique ce qui constitue l’originalité des approches menées au Centre. Ces études
nécessitent en particulier le développement de nouvelles méthodes de microscopie
optique linéaire et non linéaire.
THEMATIQUES

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
AFM
Dispositifs de spectroscopie de nanoparticules uniques (absorption et diffusion)
Dispositif de spectroscopie SHG aux interfaces et de particules piégées
Microscope confocal achromatique
Microscope confocal multiphotonique (visible, biphoton, SHG, THG)
Microscope confocal SHG
Moyens biologiques
Les utilisateurs du centre NanOpTec apportent
leur propres échantillons (agrégats cellulaires,
tissus biologiques, ADN…).
Si vous souhaitez réaliser des mesures au Centre NanOpTec, la procédure consiste à en faire
la demande à son directeur.
Les activités de la plateforme s’appuient sur les équipes de recherche des
laboratoires fondateurs. Le Centre est aussi ouvert aux collaborations internes à
l’établissement et plus largement aux collaborations extérieures.

OPTIMAL
Plateforme d'imagerie optique du petit animal
Oncologie, thérapie ciblée du cancer, drug delivery,
nanoparticules, angiogénèse
Responsable de la plateforme : Véronique JOSSERAND
Contact : veronique.josserand@ujf-grenoble.fr
 Institut Albert Bonniot, BP170 La Tronche
38042 Grenoble cedex 9
@ http://www.imagerie-grenoble.fr/
Effectif : 4
Au sein de l’équipe «Thérapie ciblée, diagnostic précoce et imagerie du cancer»
dirigée par le Dr Jean-Luc Coll de l’INSERM U823, l’équipe OPTIMAL s’est développée
sous la direction du Dr Véronique Josserand pour promouvoir l’innovation
technologique et méthodologique dans le domaine de l’imagerie optique du petit
animal.
OPTIMAL permet à l'ensemble des chercheurs du monde académique ou industriel
d'avoir accès à des méthodes d'imagerie sophistiquées, sous la forme de projet
collaboratifs ou de prestations de service prises en charge par du personnel hautement
spécialisé.
THEMATIQUE

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
Imagerie de bioluminescence in vivo
Imagerie de fluorescence 2D in vivo en temps réel aux longueurs d’ondes de 480 à 800 nm
Imagerie FRET in vivo, imagerie de fluorescence 3D in vivo
Imagerie de fluorescence macroscopique à capacité de zoom de 1 à 1600x aux longueurs
d’ondes de 360 à 750 nm
Systèmes portatifs d’imagerie de fluorescence pour l’imagerie per opératoire des petits
et gros animaux
Imagerie microCT à haute résolution (<14 µm)
Tous nos instruments sont équipés de systèmes d’anesthésie gazeuse et de maintien de
température
Prestations de services personnalisées, mise à disposition d'équipements, conseils,
collaborations de recherche académiques / industrielles
Etudes pharmacocinétiques de biodistribution in vivo
Nombreuses lignées cancéreuses bioluminescentes
Développement à façon de lignées cancéreuses bioluminescentes
Nombreux modèles in vivo pour l’oncologie
Evaluation de l’efficacité thérapeutique de candidats anticancéreux
Imagerie de l’angiogénèse in vivo
Imagerie per opératoire en fluorescence temps réel
Evaluation de vecteurs pour la thérapie génique in vivo
Suivi d’infections bactériennes, virales ou fongiques in vivo
Moyens biologiques
Nombreuses lignées cellulaires cancéreuses murines ou
humaines exprimant la luciférase de façon stable.
Nombreux modèles animaux de cancers murins ou humains
implantés en sous cutané ou sur leur site naturel
(orthotopique) ou sur leur site métastatique
Animalerie agréée pour l'hébergement des souris (y compris
nudes et transgéniques) et des rats
Laboratoire de culture cellulaire

PAVIRMA
Plateforme d'irradiation en Auvergne
Irradiateur X de petits echantillons pour de la recherche
Responsable de la plateforme : Serge ALZIARI
Contact : serge.alziari@univ-bpclermont.fr
 Campus des Cezeaux, 24 avenue des Landais, 63170, AUBIERE
@ http://start.univ-bpclermont.fr/rubrique17.html
Appartenance : UBP-START (structure de l’Université Blaise
Pascal)
Labellisation : ASN
Equipé d’un irradiateur X (opérationnel) et d’un générateur neutron (en cours), il
permet de réaliser des irradiations de matériel biologique (cellules eucaryotes,
bactéries, petits animaux, végétaux, autres préparations biologiques…) et non
biologique (polymères, composants électroniques…).
THEMATIQUE

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
Dans sa première phase (Pavirma 1), elle est équipée d'un irradiateur à rayon X de
320KV, autoprotégé et pouvant délivrer jusqu'à 5KGy, avec un débit de dose max de
13Gy/min. La chambre d'irradiation (102x86x75cm) permet d'irradier des échantillons
de grande taille ou de petits animaux.
Moyens biologiques
Un "laboratoire de biologie", comprenant une hotte à flux laminaire, un incubateur à
CO2, une centrifugeuse, un bloc froid, deux microscopes (dont un inversé à contraste
de phase) et une paillasse équipée, complète l'équipement de cette plateforme.
Accès libre sur demande aupres du responsable de la plateforme
Irradiations X tariffées à l'heure, le prix de l'heure d'irradiation dépend de
l'appartenance du demandeur (EPST, Université, PME..)

PIM Lyon Tech
Plateforme d'Imagerie Multimodale Lyon Tech
IRM, optique, ultra-sons
Responsable de la plateforme : Denis GRENIER
Contact : denis.grenier@creatis.insa-lyon.fr
 Domaine scientifique de la Doua - CREATIS- 7 avenue Jean
Capelle, 69621, VILLEURBANNE
@ http://www.creatis.insa-lyon.fr/site/
Labex PRIMES, Labex CELYA
Effectif : 4 ingénieurs, 1 technicien
PIM Lyon Tech est une plate-forme préclinique qui couvre un large domaine
d'applications :
- Tests non invasifs ex vivo ou in vivo
- Développements méthodologiques : imagerie et spectroscopie par résonance
magnétique, imagerie ultrasonore, imagerie optique
- Elastographie
- Imagerie haute résolution
- Imagerie anatomique, fonctionnelle
- Etudes de pathologies sur modèles animaux avec le suivi longitudinal associé
- Tests de compatibilité IRM de matériaux
THEMATIQUES

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
IRM : 4,7 T dédié au petit animal
US : 3 échographes
Optique : laser pulsé et échographe (photoacoustique), endoscope fibré, endoscope
rigide, spectromètre multicanaux, endomicroscope confocal fibré Cell-Vizio (MKT®)
Anesthésie gazeuse
Monitoring petit animal
Agrément pour l'utilisation d'animaux à des fins scientifiques : numéro A 69 266 1401
PIM Lyon Tech propose la réalisation de prestations d'imagerie en adéquation avec
la demande : organisation du protocole expérimental, acquisition et analyse des
résultats.
La plate-forme est équipée de matériels dédiés à l'expérimentation sur le petit
animal.
Les ingénieurs de la plate-forme sont habilités à expérimenter sur le petit animal.
La plate-forme dispose aussi d'un cluster de calcul et d'un accès à la grille de calcul
EGEE pour faciliter le traitement massif des donnés acquises.

Radiograaff
Radiobiologie au Van de Graaff
Radiobiologie
Responsable de la plateforme : Michaël BEUVE
Contact : michael.beuve@univ-lyon1.fr
 IPNL, Campus de la Doua 4 Enrico Fermi, 69622, Villeurbanne
Appartenance :
Plateforme du LabEx PRIMES, de l'infrastructure nationale France
Hadron, du GdR MI2B / réseau RESPlaNDir
(http://www.mi2b.fr/spip.php?article30)
Irradiation avec des protons de 3 MeV avec contrôle dosimétrique pour les études de
la réponse de cellules biologiques, de détecteurs, de films radiosensibles...
THEMATIQUE

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
Dose uniforme sur un disque de 2 cm de diamètre à +/- 3%, dose absolue à mieux que
+/- 5%, débit de dose < 10Gy/min
Enceinte thermostatée, porte échantillion automatisé
Laboratoire de cultures cellulaires avec materiel standard (PSM, surpression,
incubateurs, congélateurs, hotte chimique, microscope, compteur cellulaire...)
Tarifs selon prestation, signature d'une charte précisant les conditions d'accès
Irradiation de cellules en monocouche, de détecteurs, de films...
Accès à un laboratoire de cultures cellulaires

X-Ray CERVO Lyon-Sud
Plateforme d'irradiation par rayons X
Radiobiologie, irradiations photoniques cellulaires et du petit
animal
Responsable de la plateforme : Claire RODRIGUEZ-LAFRASSE
Contact : claire.rodriguez@univ-lyon1.fr
 Plateforme CERVO - Faculté de Médecine Lyon-Sud, 69921,
Oullins cedex
L'irradiateur XRad 320 (PXI) est sous la responsabilité du Laboratoire de Radiobiologie
Cellulaire et Moléculaire (équipe 4 de l'EMR3738 - Pr C. Rodriguez-Lafrasse) qui
s'intéresse aux mécanismes de la radiorésistance tumorale et développe des
traitements adjuvants radiosensibilisants. Les irradiations photoïques sont réalisées
sur lignées cellulaires en culture et petit animal (souris, rats).
THEMATIQUE

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
Irradiateur XRad 320 (PXI)
Plateforme technologique CERVO Lyon-Sud
Contacter C. Rodriguez-Lafrasse par e-mail
Irradiations cellulaires et du petit animal

Imagerie intégrée multimodalité
Cancérologie, radiopharmaceutique, ciblage, imagerie TEP petit
animal, imagerie TDM petit animal, scintigraphie, imagerie de
bioluminescence, imagerie de fluorescence, autoradiographie
digitale quantitative corps entier
Responsable de la plateforme : Elisabeth MIOT-NOIRAULT
Contact : elisabeth.noirault@inserm.fr
 UMR 990 INSERM/UdA, 63005, clermont Ferrand cédex
@ http://www.clermont-universite.fr/PLATE-FORME-D-IMAGERIE
Appartenance : INSERM/Université d'Auvergne
Effectif : 2 ETP
Les champs d'application concernent:
(i) les études scanner X de caractérisation anatomique et structurale (ex: mesure de
densité minérale osseuse), avec ou sans injection d'agent de contraste,
(ii) les études de biodistribution et pharamcocinétique de substances d'intérêt
(absorption, distribution, métabolisme, excrétion) tant in vivo qu'ex vivo apres
marquage radioactif ou fluorescent
(iii) le suivi longitudinal de pathologies évolutifs et de leur réponse à la thérapie, au
moyen de traceurs pertinents (croissance tumorale, prolifération, activité
métabolique glucidique, inflammation, remaniement osseux, cartilage, hypoxie,
MMP,...)
THEMATIQUE

EQUIPEMENTS DEDIES
Moyens techniques
Les équipements d'imagerie sont les suivants: (i) un système autoradiographique
quantitatif digital permettant l'analyse corps entier rat et souris (betaImager,
Biospace), (ii) deux têtes de détection de gamma camera permettant l'imagerie
scintigraphique gamma, plane et tomographique (gammaImager, Biospace), (iii) un
scanner X petit animal (Explore CT120, GE Healthcare), (iv) un imageur TEP petit animal
(ExploreVista, GE Healthcare), (v) un equipement d'imagerie optique permettant
l'imagerie 2D et 3D en bioluminescence et fluorescence in vivo (IvisSpectrum, Perkin
Elmer).
Les équipements sont ouverts à la communauté scientifique académique et aux sociétés
privées, sous forme de collaboration ou de prestations de services.
Située à l'UMR 990 iNSERM/UdA, le plateau d'imagerie intégrée multimodalité in
vivo a pour objectif d'offrir à la communauté scientifique des études "multi-
échelles", pouvant aller de la caractérisation tissulaire de l'échantillon, à
l'exploration fonctionnelle in vivo chez le petit animal. Les équipements de haute
technologie du plateau permettent de proposer, tant des approches structurales et
anatomiques à haute résolution (50 µm in vivo pour le scanner), que fonctionnelles
après administration de composés radiomarqués, fluorescents ou bien encore de
cellules bioluminescentes.
Moyens biologiques
Notre unité possède l'expertise nécessaire pour le développement de
modèles expérimentaux en cancérologie, tant in vitro (culture en 2 ou
3 dimensions telle que sphéroïdes), qu'in vivo (modèles de xénogreffes
ou orthotopiques). Les modèles qui sont développés en routine sont
principalement: le mélanome, le chondrosarcome, l'ostéosarcome, les
tumeurs mammaires, de colons, de prostate, de lymphome…
Notre unité dispose des infrastructures nécessaires à l'hébergement des
animaux (animalerie agrée), l'hébergement temporaire des animaux
pendant la durée de leur examen (armoires ventilées dédiées), y
compris pour les animaux ayant reçu une administration de traceur
radioactif (armoire ventilées plombées), les équipements nécessaires
au radiomarquage (enceintes blindées, automates de radiosynthèse),
les locaux nécessaires à la culture cellulaire et aux études de
pharmacologie.

www.canceropole-clara.com
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