EXAMENES DE LABORATORIO

1. EXÁMENES DE LABORATORIO
UNIDAD III

2. ASPECTOS ADMINISTRATIVOS GENERALES
A) Coordinación con Laboratorio Central
1.- Conocer las normas del laboratorio del hospital en cuanto a:
– Condiciones del paciente para realizar examen.
– Tipo de frasco o tubo, utilización de anticoagulante,
jeringa heparinizada, etc.
– Cantidad de sangre requerida.
– Datos complementarios del paciente, en algunos
exámenes se solicita por ejemplo, el peso, la talla, la edad,
la temperatura, uso de antibióticos, etc.
2.- Obtener de manera correcta la muestra.
3.- Conocer el horario de recepción de muestras en laboratorio y
los exámenes que son considerados de urgencia y que se
pueden enviar las 24 horas del día.
4.- Constatar la correcta rotulación de los frascos y adjuntar la
orden de solicitud al ser enviadas las muestras al laboratorio.

3. 5.- Registro en el cuaderno de entrega y recepción
de muestras de cada servicio.
6.- Informar al personal encargado del transporte de
las muestras, sobre las medidas de seguridad en el
manejo de estas, uso de receptáculo plástico
tapado y frascos en posición vertical, evitando que
se destapen o volteen, no utilizar frascos con tapón
de algodón.
7.- Al recibir el informe de los resultados, interpretarlos
y controlarlos por médico residente o tratante, si se
presentan valores alterados.
8.- Obtener prioritariamente los exámenes de
urgencia y preocuparse del control de los
resultados.
ASPECTOS ADMINISTRATIVOS GENERALES

4. B) Consecuencias de una mala técnica en la
toma de muestras de exámenes:
1. Daño para el paciente al atrasar o perder la
oportunidad de un diagnóstico precoz, de una
valoración de la evolución o ajuste oportuno de
una terapia.
2. Pérdida de tiempo y material.
3. Pérdida de confianza del paciente.
4. Alteración de los resultados.
5. Alteración del rodaje del servicio y del laboratorio.
ASPECTOS ADMINISTRATIVOS GENERALES

5. NORMAS ESTABLECIDAS POR EL MINISTERIO DE
SALUD
• El Ministerio de Salud ha establecido
algunas consideraciones que se deben
tener en cuenta, al extraer muestras de
fluidos corporales considerados de riesgo,
en pacientes ambulatorios y hospitalizados,
como una manera de realizar técnicas con
un margen de seguridad, tanto para el
personal de salud, como para los pacientes
que son atendidos en consultorios y
hospitales.

6. Estas medidas son las siguientes:
• Personal: Las punciones vasculares deben ser
realizadas por profesionales capacitados y
constantemente evaluados.
• Materiales: Todo material de uso venoso o intra-
arterial debe ser estéril y de un solo uso. No se
debe usar material desechable reesterilizado.
(Medidas de Asepsia)

7. • Lavado de Manos: El profesional responsable de la
punción debe lavarse las manos antes y después
del procedimiento.

8. • Uso de guantes: Todas las punciones venosas y
arteriales deben realizarse con guantes protectores
(Precauciones Estándares con sangre y fluidos
corporales)

9. • Elección del sitio de
punción: La piel del
sitio de punción
elegido, debe estar
indemne y limpia.
Se deben utilizar
preferentemente,
venas del pliegue
del codo, medianas
basílicas o
cefálicas.

10. Preparación del sitio de punción:
• Piel limpia, en caso contrario se debe lavar con
agua y jabón antes de aplicar el antiséptico.
• La pincelación del sitio de punción debe ser con
alcohol de 70º, una vez aplicado, esperar que
tome contacto con la piel al menos por 30
segundos, antes de puncionar.

11. • Desecho de Material: La
eliminación de la jeringa y
aguja debe ser en
receptáculo especialmente
designado (tarro o botella
plástica desechable) sin
doblar, lavar, quebrar o
recapsular la aguja.

12. Soltar la aguja con pinzas
no tocar con las manos
Eliminar aguja en recipiente
resistente a punciones
Eliminar aguja y jeringa
sin desconectarla

13. Receptáculo para desecho material corto
punzante

14. EXÁMENES DE LABORATORIO
• DEFINICIÓN: Es la obtención de una muestra de
sangre, mediante una punción venosa periférica o
central del paciente para realizar el posterior
análisis en el laboratorio clínico.

15. OBJETIVOS:
- Ayudar al diagnóstico médico (reacción de
aglutinación: en fiebre tifoidea)
- Indicar tratamiento específico (vitamina B12: en
anemia perniciosa)
- Controlar la evolución de una enfermedad
(bilirrubinemia: en hepatitis)
- Investigación clínica (presentación casos en eventos
científicos)
- Evaluar el efecto al tratamiento y ajustar dosis
terapéutica (niveles plasmáticos de drogas)

16. INDICACIONES GENERALES TOMA MUESTRAS
EXAMENES DE SANGRE
• Explicar al paciente acerca de la indicación
médica del examen, dando instrucciones respecto
a la preparación, necesidad de ayuno, tipo de
régimen y objetivos del examen.
• Constatar que el paciente está en las condiciones
requeridas para el examen (ayunas u otra) En
general los exámenes de sangre se toman en
ayunas, pues la ingesta de alimentos puede hacer
variar los resultados de algunos exámenes (Ej:
glicemia basal)
• Controlar que el paciente ingiera desayuno
después de la toma de la muestra.
• No tomar en vena donde esté pasando
medicamentos o soluciones terapéuticas.

17. • Una vez tomadas las muestras deben ser enviadas
a la brevedad al laboratorio, ya que éstas
continúan con su metabolismo, al permanecer a
temperatura ambiente, produciéndose alteración
de los valores reales del paciente.
• No deben utilizarse frascos que merezcan dudas,
sin tapas, sucios o con cantidad insuficiente de
anticoagulante.
INDICACIONES GENERALES TOMA MUESTRAS
EXAMENES DE SANGRE

18. • Al tomar la muestra de sangre, evitar la formación
de espuma sanguinolenta, ya que esta favorece la
coagulación y la hemólisis (ruptura del glóbulo
rojo).
• Se debe vaciar suavemente la sangre por las
paredes del frasco, esta acción evita la hemólisis
de la muestra, situación que al ocurrir podría alterar
los valores reales del paciente.
• Llenar primero los frascos que contengan
anticoagulante y mezclar suavemente.

19. EXTRACCIÓN DE SANGRE
• En la actualidad se utilizan tubos para exámenes
sellados al vacío, en los cuales viene indicada la
cantidad de muestra requerida, estos se puncionan
cuidadosamente en el tapón de goma y se llenan
por gradiente de presión con la cantidad de
sangre determinada, no siendo necesario realizar
presión con el émbolo de la jeringa. En este caso
hay que tener la precaución de retirar suavemente
la jeringa, evitando acercarla demasiado al rostro,
pues se pueden producir pequeñas pulverizaciones
de sangre y penetrar en la conjuntiva ocular.

20. Extracción de sangre

21. INDICACIONES ESPECÍFICAS
Procedimiento normalizado
Toma de muestras después de 12 horas de ayuno y
de baja actividad o reposo, para una correcta
interpretación de los resultados de laboratorio.
Hora de toma de muestra
- Regla General: Momento más apropiado entre 07:00 y
09:00 h, anotar hora de toma de muestra.
Ayuno relativo: El examen puede tomarse con ayuno de 3
horas.
Ayuno estricto (algunos exámenes requieren este ayuno)
- El día previo a la toma de muestra NO ingerir alimentos
ricos en grasas (cerdo, cecinas, frituras, mantequilla,
lácteos).
- La última comida se debe ingerir a más tardar a las 19
hrs. Consumir alimentos livianos, no beber alcohol.
Se requieren 14 horas de ayuno.

22. Controlar que la orden de solicitud del examen esté
con todos los datos:
• Nombre Completo del Paciente
• Nº de Ficha y Nº de Cuenta Corriente (datos en hoja de estadísticas)
• Servicio y Nº de cama
• Tipo de Examen
• Diagnóstico del paciente en algunos casos
• Condiciones en que fue tomado, por ejemplo si los exámenes son
para determinar gases venosos o arteriales, especificar si fueron
tomados con O2, (señalar litros por minuto) o con aire ambiental.
• En caso de tomar hemocultivos, consignar en la orden, si se está
administrando antibióticos, dosis, vía, la última dosis administrada y
la temperatura axilar del paciente.
• Al solicitarse niveles plasmáticos de drogas registrar dosis y hora de
la última administrada.
• Código de barra. (Los Ángeles), ingresar los datos del usuario al
sistema informático del Laboratorio.
• Pegar el código sobre el papel del frasco, respetando el espacio
libre del frasco.

23. • Pegar la etiqueta SOBRE la etiqueta propia del tubo, DESDE LA TAPA HACIA EL
FONDO, de modo que los datos puedan leerse en este sentido.
La ventana del tubo
debe quedar SIEMPRE
DESCUBIERTA, de
manera que se vea el
nivel y las condiciones
de la muestra.

24. • Recuerde que es responsabilidad del profesional
de enfermería el realizar una correcta toma de
muestras solicitadas, su envío oportuno al
laboratorio, el solicitar los resultados y su posterior
control con el médico tratante o residente.
• El paciente que se encuentre capacitado, debe
estar informado de los resultados de los análisis
realizados.

25. La vena cubital es la que se utiliza con
más frecuencia en la punción venosa de
adultos ya que es grande, está cercana a
la piel y es la menos dolorosa.
En pacientes con venas difíciles,
maltratadas por haber sufrido
extracciones frecuentes o haber recibidos
tratamientos intravenosos, obesos o en
niños, se utilizan otras venas de la parte
posterior del brazo, las muñecas, las
manos, el cuello, los tobillos o los pies.
Toma de muestras para exámenes: tubos de recolección

26. NO OLVIDAR en Toma de muestras para exámenes
Verificar rigurosamente con la orden médica el nombre del paciente y
los exámenes a tomar.
• Verificar el tipo de tubos a utilizar antes de tomar la muestra. Las
técnicas de análisis varían en cada institución, por lo tanto, es
importante confirmar con el laboratorio el tipo de tubo, cantidad de
muestra y condiciones específicas de manejo de las muestras.
• Rotular los tubos con los datos del paciente, fecha y exámenes a
realizar antes de tomar la muestra.
• Enviar la muestra al laboratorio en el menor tiempo posible.
Llenar los tubos al vacío hasta el nivel marcado; es imprescindible que
estén llenos justo hasta la señal.

27. Ligar y buscar vena por palpación Limpiar el sitio de punción
Desligar antes de retirar la aguja Presionar el sitio de punción 1 a 5 min.

28. Pasos a seguir en una toma de muestra al vacío

29. Nota: Si la sangre no fluye en el tubo se deberá
girar ligeramente la aguja para excluir que este
ocluida por la pared interna de la vena. Si la
sangre sigue sin fluir puede ser que no haya
encontrado la vena en la punción. Antes de
retirar la aguja saque el tubo para preservar el
vacío para una utilización posterior.

30. Toma de Muestras para Exámenes: Tubos de
Recolección
Existen códigos estandarizados
(ISO 6710) para las diferentes
presentaciones comerciales de
los tubos. Cada color de tapón
indica que ese tubo tiene
determinado aditivo o no.

31. Frascos de exámenes
Anticoagulante
La sangre una vez extraída sufre un proceso de coagulación que
comienza espontáneamente, para evitar este fenómeno se
utilizan anticoagulantes
Los anticoagulantes utilizados con mayor frecuencia son:
EDTA: (ETILENDIAMINO TETRACETATO) quelante del calcio
Citrato de sodio: precipita el calcio
Heparina: inhibe que la protrombina se trasforme en trombina

32. Tubo ROJO sin anticoagulante: utilizado en los análisis de hormonas e
inmunológicos.
Tubo LILA con EDTA: utilizado para determinaciones de Hematología
(hemograma y lactato).
Tubo NEGRO con citrato: utilizado para medir la velocidad de
sedimentación, VHS.
Toma de Muestras para Exámenes: Tubos de Recolección

33. Tubo CELESTE con Citrato trisódico: utilizado para pruebas de caogulación (TTPK;
TP e INR).
Tubo VERDE con heparina sódica: es utilizado para pruebas de bioquímica .
Toma de Muestras para Exámenes: Tubos de Recolección

34. Exámenes de sangre
Hematología clínica

35. Hemograma
• Estudio sanguíneo
• Muy común y utilizado
• Estudio de las células sanguíneas

36. Hemograma
• Recuento celular
– Glóbulos rojos (GR)
– Leucocitos
– Plaquetas
• Morfología al microscopio
• 2 cc Sangre venosa
• Tapón lila

37. Hemograma
• Hematocrito
• Hemoglobina (Hb)
• VCM (volumen corpuscular medio)
• CHCM (concentración hemoglobina
corpuscular media)
• HCM (hemoglobina corpuscular
media)

38. Hemograma
• Glóbulo Rojo (GR) o
hematíes
– Valor normal:
• Hombre: 4.5 a 5.9 x
106 mm3
• Mujer: 4.1 a 5.1 x 106
mm3

39. Hemograma
• Hematocrito: En un volumen
determinado de sangre, el volumen
total de glóbulos rojos es conocido
como hematocrito. Se expresa en %
• Valor normal:
– Hombre: 40 – 52%
– Mujer: 35 – 47%

40. Hemograma
• Hemoglobina
– Proteína del GR que
transporta O2
– Valor normal
– Hombre: 14 – 17,5 gr/dl
– Mujer: 12.3– 15.3 gr/dl

41. Hemograma
• VCM: mide tamaño de
los GR
– Normocítico
– Microcítico
– Macrocítico
• Valor normal:
• 80 – 96 fl (fentolitros)

42. Hemograma
• HCM: mide
cantidad de Hb en
GR
– GR normocrómico
– GR hipocrómico
– GR hipercrómico
• Valor normal:
• 28 – 33 pg
(picogramos)

43. Hemograma
• Plaquetas:
elemento figurado
necesario para la
coagulación
– Valor normal 150.000
a 400.000/mm3
– Trombocitosis: >
400.000/mm3
– Trombocitopenia: <
150.000/mm3

44. Hemograma
• Glóbulo blanco o leucocito
• Valor normal: 4400 a 11300
mm3
– Neutrófilos
– Basófilos
– Eosinófilos
– Linfocitos
– Monocitos
• Leucocitosis: >11300
• Leucopenia: < 4400

45. Leucocitos
• Granulocitos
– Neutrófilos:
– Basófilos
– Eosinófilos
• Mononucleares
– Monocitos
– Linfocitos
Orden de maduración
Mieloblastos
Pro mielocitos
Mielocitos
Juveniles
Baciliformes
Segmentados

46. Leucocitos
• Formas inmaduras:
– Juveniles: 0 x mm3
– Mielocitos: 0 x mm3
– Mieloblastos: 0 x mm3
Si aparece en la fórmula leucocitaria alguna de estas
formas inmaduras, decimos que “hay desviación a la izquierda”

47. • VHS: velocidad de
sedimentación (velocidad a
la que decantan los GR )
• Muestra: sangre venosa
– Valor normal:
hombre mujer
– < 50 años <15 <25
– > 50 años <20 <30mm/hr

48. Pruebas de coagulación
• TTPK (tiempo de tromboplastina parcial)
• Útil para comprobar la existencia de todos los factores de la
coagulación, además se utiliza para realizar seguimiento a
pacientes en terapia con heparina, es muy sensible y seguro
y su resultado se expresa en segundos
– Valor normal: <38 seg
• TP (tiempo de protrombina)
• Su utilidad clínica principal es la monitorización y control
terapéutica anticoagulante y como prueba funcional
hepática. Se suele expresar su resultado en porcentaje.
– Valor normal: 70 a 100 %
• INR (International Normalized Ratio)la utilidad es la
estandarización de los resultados de TP de pacientes bajo tto.
con cumarínicos, expresión que representa las veces que se
prolonga el tiempo normal.

49. BIOQUÍMICOS

50. Bioquímicos
• Uremia
• Acido úrico
• Creatinemia
• Perfil hepático
• Perfil lipídico
• Glicemia
• Lactato
• ELP
• Enzimas cardíacas
• PCR
Tapón verde
• 4 cc sangre venosa

51. Bioquímicos
• Glicemia
– Valor normal entre
70 mg/dL y 100
mg/dL
Mide la cantidad de
este monosacárido
que circula por la
sangre. Estas cifras
se miden cuando la
persona se
encuentra en
ayunas.

52. • Test de tolerancia a la glucosa: se utiliza
para diagnosticar diabetes en pacientes
con glicemias normales en ayunas, pero
deficientes en el metabolismo de
carbohidratos luego de ingeridos
• Curva normal:
– Basal 70 a 100 mg/dl
– 2 horas menor o igual a 140 mg/dl
• El diagnóstico de diabetes se confirma
cuando el valor en ayunas o a las 2 horas
supera los valores normales.
Bioquímicos

53. • Glucosa postprandial
• Es una abreviación de la prueba de
tolerancia
• Se mide la glicemia del paciente
luego de 2 horas de haber ingerido
alimentos, aprox. 100g de CH
(desayuno, almuerzos, etc)
• Nivel normal tras dos horas:
• Menor a 140 mg/dl
Bioquímicos

54. • Hemoglobina glicosilada: producto
formado por la adición de glucosa a
la hemoglobina.
• Determina valores de glicemia de los 2
a 3 meses anteriores al análisis.
• Valor normal:
• 4.4 – 5.7%
Bioquímicos

55. Bioquímicos
• Creatinina
– Valor normal entre (0.6
a 0.9 mujeres y 0.9 a 1.2
hombres mg/dl)
– Es una proteína derivada
del músculo que circula
por la sangre y se
elimina a través de la
orina. Se emplea para
valorar la función de los
riñones.

56. Bioquímicos
• Uremia
– Producto final del
catabolismo proteico.
– También se expresa
como BUN
– Es otra medida de la
función renal
– Depende de la ingesta y
estado de hidratación
– Valor normal entre 20 y
40 mg/dl
– BUN: 9 - 19 mg/dl

57. Bioquímico
• Ácido Úrico
– Producto final del
catabolismo de las purinas
– Puede cristalizarse en la
orina y formar cálculos o
depositarse en tejidos
cartilaginosos (Gota)
– Toma de muestra: en
ayunas, sangre venosa;
orina, debe ser de 24 horas
– Valor normal:
– hombre: 3.6 y 8.7 mg/dl
– Mujer: 2.3 – 6.1 mg/dl
– Orina : 0.20 – 1.0gr/24 horas

58. Perfil lipídico
• Colesterol total:
– Valor normal entre < 200
mg/dL
Es un lípido o grasa que
circula por la sangre,
transportado por
lipoproteínas
– HDL: valor > 35 mg/dl
– LDL: valor < 155 mg/dl
Triglicéridos
• Valor normal entre < 150 mg/dL
Son también un tipo especial
de grasas que circulan en la
sangre, varía con la ingesta.
• La obtención de la muestra
requiere del paciente ayuno
de 12 horas.

59. Pruebas hepáticas
• Bilirrubina: Es un pigmento
que se almacena en la
vesícula y se elimina por la
bilis al tubo digestivo.
• Se emplea
fundamentalmente para
valorar la función de la vía
biliar y del hígado.
• Valor normal:
– Total: <1.0 mg/dl
– Directa (conjugada): < 0,2
mg/dl
– Indirecta (no conjuda):
< o.8 mg/dl

60. Pruebas hepáticas
• Transaminasas
– Son enzimas que se
encuentran en el interior de
las células hepáticas
(hepatocitos). Existen tres
tipos principales:
GOT - ALT: (transaminasa
glutámico oxalacética)
Valor normal < 35 U/L
hombres; <31 mujeres
GPT - AST: (transaminasa
glutámico pirúvica) Valor
normal <45 hombres; <34
mujeres U/L
GGT: (glutamil transferasa)
Valor normal entre < 49 U/L
Sirven para medir la función
del hígado

61. Pruebas hepáticas
• Fosfatasa Alcalina
Es una sustancia (enzima)
presente en diferentes
partes del organismo,
como el hígado, el hueso
o el intestino. Puede
alterarse en situaciones
de enfermedad, pero
también durante el
crecimiento.
• Valor normal entre 40 y
100 U/L

62. Lactato (ácido láctico)
• Se utiliza para detectar si la
acumulación de ácido láctico es la
responsable de la acidosis
• Valor normal: 4.5- 19.8 mg/dl venoso
4.5- 14.4 mg/dl arterial

63. Electrolitos plasmáticos
• Sodio: 138 – 148 mEq/L
• Potasio: 4.0 – 5.0 mEq/L
• Cloro: 98 – 104 mEq/L
• Calcio: 8.6 – 10.3 mg/dl
• fósforo: 2.7 – 4.5 mg/dl

64. Proteína C reactiva
• Proteína liberada por hígado y vasos
sanguíneos, como respuesta
inflamatoria
• Valor normal < 5 mg/dl
• Es un marcador inespecífico.

65. Pruebas cruzadas
• TAPÓN ROJO
CAPACIDAD 9 cc
• Tubo sin
anticoagulante, se
obtiene suero tras
retracción del
coágulo.

66. Enzimas cardíacas
• Troponina (enzima cardíaca
específica): 0.02 – 0.04 ng/ml
• CKMB: 0 – 24 U/L (6% de CK)
– Aparece en el suero 6 a 12 horas post
infarto y se mantiene 18 a 32 horas
después de este
• CK total: < 190 U/L

67. • Es un examen microbiológico que permite la detección
en el laboratorio, de una bacteremia, lo cual contribuye
a adecuar la terapia antimicrobiana de acuerdo al
microorganismo aislado.
• La muestra debe obtenerse por punción periférica,
siempre por una nueva punción y debe ser la primera
muestra que debe obtenerse si existe indicación de
otros exámenes.
• El momento óptimo de la toma de la muestra es
previo al peack febril, que muchas veces se manifiesta
con escalofríos.
Hemocultivo: cultivo de sangre

68. Técnica Hemocultivo
• Lavar zona con agua y jabón y luego desinfectar
con antiséptico.
• Usar guantes estériles.
• 2 muestras.
• Se toman las muestras en forma consecutiva, en
distintos lugares de punción (idealmente en
distintas extremidades).
• Muestra 8 a 10cc sangre venosa.
• Cambiar aguja para vaciar la sangre.
• Desinfectar tapón del frasco.

69. • La solicitud del examen debe incluir:
– Nombre completo del usuario, con 2 apellidos.
– Edad y RUT
– Diagnóstico
– Temperatura del paciente.
– Tratamiento antimicrobiano previo a la toma de
muestra.
– Especificar si requiere cultivo especial, ejemplo
hongos.
– Nombre de la persona que toma la muestra.

70. • Nota: los valores de exámenes varían de un
laboratorio a otro, depende de los equipos
que dispongan.

71. • Bibliografía:
• Manual de Toma de muestra Laboratorio
Clínico Complejo Asistencial Dr. Víctor Ríos
Ruiz.