1. E.P. NANCY CASTILO
E.E.G. PAULINA QUIÑONEZ M.
E.E.G. DIANA GARCIA
E.E.G. ROSA LUPIO
E.E.G. FABIOLA TRUJILLO

2. EXTRACCION VENOSA

3. CONCEPTO
 Consiste en recoger muestras sanguíneas para el
análisis de la sangre en el laboratorio.

4. OBJETIVO
 Obtener una muestra de sangre para conocer los
elementos normales de la sangre.
 Determinar la presencia de tóxicos y otras sustancias
en la sangre.
 Vigilar y controlar el equilibrio acido – base en la
gasometría venosa.
 Aislar el agente infeccioso en los estudios
bacteriológicos.

5. SITIOS DE PUNCION
 Cuero cabelludo: venas superficiales del cráneo
 Cuello: yugular externa.
 Axila: vena axilar.
 Fosa ante cubital: vena basílica, cefálica y mediana.
 Antebrazo: vena radial, cubital y mediana.
 Mano: venas dorsales de la mano.
 Tobillo: safena interna y externa.
 Pie: venas dorsales del pie.

7. MATERIAL Guantes desechables
 Palomillas con sistema de vacío
 Vacutainer
 Tubos de vacío
 Frascos de hemocultivo
 Jeringa para gasometría o heparinizada
 Torundas
 Ligadura
 Jeringa con aguja
 Etiquetas adhesivas (curitas)

8. PROCEDIMIENTO
 Preparar el material
 Identificar al niño
 Explicar a la madre el procedimiento que vamos a
realizar.
 Lavado de manos
 Colocarse los guantes
 Colocar cómodamente e inmovilizar al niño
 Colocar ligadura

10.  Seleccionar el vaso mediante el tacto
 Desinfectar el punto de punción con torundas
alcoladas

11.  Para recogida de hemocultivo se colocan guantes
estériles y se usa gasas estériles con clorhexidina
acuosa al 2%.
 Pinchar la piel y posteriormente la vena en dirección
contraria al flujo sanguíneo en un ángulo entre 15 y 30
grados respecto a la piel.

13.  Soltar la ligadura cuando refluya la sangre.
 Conectar el frasco de hemocultivo al sistema de
trasvase.

14.  Colocar la palomilla en la campana o adaptador de
vacío.
 Conectar el sistema de trasvase al tubo para recoger la
cantidad de sangre deseada.

15.  Cambiar de tubos

16. Si se recogiera sangre para gasometría venosa:
 Sacar la aguja y aplicar presión suave hasta lograr
hemostasia
 Colocar apósito en el sitio de punción.

17.  Etiquetar los tubos para su envío al laboratorio, con la
petición correspondiente.
 Retirar el material usado
 Lavado de manos
 Registrar el procedimiento en la historia de
enfermería.

18. COMPLICACIONES Sangrado excesivo por el punto de punción
 Formación de hematomas
 Infecciones por perdida de integridad de la piel
 Punciones múltiples para localizar las venas
 Laceración de arteria o nervio adyacente
 Trombosis o embolia en punción de grandes vasos
 Desmayo o sensación de mareo

19. OBSERVACIONES
 Mantener asepsia durante la extracción.
 Provocar el menor traumatismo posible en el sitio de
punción
 Cambiar de aguja en caso de fallo en la punción
 No extraer sangre de una vena donde este canalizado
un goteo, ya que la muestra estaría diluida y no daría
valores reales.
 No pinchar en zonas con infección local o hematomas

20.  No pinchar venas profundas en niños con alteración de
coagulación
 No aplicar ninguna solución antiséptica sobre el tapón
del hemocultivo
 No tapar los frascos de hemocultivo con algodón.
 Presionar unos 5 minutos hasta hacer hemostasia, en
la zona de punción.
 Vigilar inflamación, calor o sangrado en el sitio de
punción.

21. EXTRACCION DE MUESTRAS
POR PUNCION CAPILAR

22. CONCEPTO
 Consiste en la recogida de una muestra de sangre para
el análisis realizado por micro método:
bilirrubinemias, glucemias, hematocrito, etc. , a partir
de la punción capilar. Es un procedimiento habitual en
recién nacidos y lactantes.

23. OBJETIVO
Obtener una muestra de sangre, evitando la
venopucnion para:
 Conocer el hematocrito y bilirrubina capilar
 Determinación rápida de la glucemia
 Determinación de las pruebas metabólicas
(hipotiroidismo y fenilcetonuria) en el R/N
 Conocer el pH, gases y equilibrio acido-base de la
sangre.

24. SITIOS DE PUNCION
 Lateral extremo o interno del talón
 Caras laterales de las falanges distales de los dedos de
la mano.

25. MATERIAL Y EQUIPO
 Guantes
 Lanceta
 Capilares de micro hematocrito
 Plastilina para sellar los capilares
 Tubos microtainer para recogida de muestras
 Tiras reactivas para la determinación de glucosa
capilar
 Aparato de determinación de glucemia

26.  Papel de filtro especial para pruebas metabólicas
 Torunda alocadas
 Aposito y/o gasas
 Palangana con agua caliente
 Etiquetas identificativas

27. PROCEDIMIENTO
 Lavado de manos con agua y jabón
 Colocación de guantes
 Calentar el pie del cual se va a extraer sangre
introduciéndolo en una palangana con agua templada
con el fin de producir vasodilatación incrementando
así el flujo sanguíneo

29.  Sujetar el talón con los dedos pulgar e índice
 Secar con una compresa y desinfectar con torundas
alcoladas.
 Puncionar con una lanceta enérgica y
perpendicularmente al lateral externo o interno del
talón.

30.  Presionar de forma intermitente el talón para favorecer
la formación de la gota de sangre.

31.  Rellenar los capilares de micro hematocrito (evitando
burbujas de aire), tubo de micro muestra o tira reactiva
tomando sangre de la gota que se forma
espontáneamente.

32.  Para la recogida de las metabolopatias, se necesita
impregnara los círculos de las tarjetas (papel de filtro
especial).

33.  Limpiar y comprimir el sitio de punción.
 Colocar apósito o gasa anudada al talón.

34.  Sellar los capilares de hematocrito con plastilina en un
extremo o tapar el tubo de micro muestra.

35.  Etiquetar las muestras para su envió al laboratorio, con
la petición correspondiente.
 Retirar el material usado
 Lavado de manos
 Registrar el procedimiento en la historia de
enfermería.

36. COMPLICACIONES
 Infecciones de tejidos blandos
 Infecciones en el hueso (osteomielitis)
 Celulitis por formación de abscesos
 Sangrado excesivo por el punto de punción
 Formación de hematomas.

37. OBSERVACIONES
 Evitar zonas frías de punción
 No pinchar en la curvatura posterior del talón, la
distancia entre el hueso y la piel es mínima pudiéndose
lesionar el hueso.
 No pinchar en zonas con infección local o hematomas.
 No pinchar con vasoconstricción periférica o cianosis.

38.  No pinchar en niños edematosos
 En preescolares y escolares se elegirá preferentemente
los laterales de los dedos como zona de punción.
 No presionar junto a la punción, al producirse
hemolisis se mezclan fluidos intersticiales e
intracelulares con la sangre alterando los resultados.

39.  No existen diferencias significativas entra la glucemia
capilar despreciando o no la primer gota.
 Evitar la entrad e aire en el capilar, ya que podía falsear
resultados
 Utilizar capilares haparinizados para evitar la
coagulación de la muestra.

40. EXTRACCION DE SANGRE ARTERIAL

41. CONCEPTO
 La punción arterial es un procedimiento destinado
fundamentalmente a la extracción de sangre arterial,
en especial para determinar la presión parcial de
oxigeno PaO2 y el recambio sanguíneo parcial.

42. OBJETIVO
 Para determinar los gases de sangre arterial
 Para estudio de laboratorio, cuando no es posible
obtener muestra de sangre venosa o capilar.
 Para ciertos estudios especiales, tales como la
determinación de amonio.
 Para la extracción de sangre en el recambio sanguíneo
parcial.

43. SITIOS DE PUNCION
 Punción radial
 Punción arteria temporal superficial
 Punción arteria humeral
 Punción arteria tibial posterior

44. EQUIPO Y MATERIAL
 Bandeja o riñón estéril
 Torundas de algodón alcoladas
 Material para hemostasia: gasa estéril y tela adhesiva
cortada para el efecto
 Jeringas : de 1 ml para muestra de gases en sangre
arterial, heparinizada y rotulada con nombre, servicio,
sala, cama, FIO2 y temperatura del RN.

45.  Jeringa de 5ml para otros exámenes solicitados si los
hubiere.
 Guantes
 Frascos para exámenes adicionales

46. TEST DE ALLEN
Prueba que permite evaluar el suministro sanguíneo de
las arterias colaterales de la arterial radial.

47. PASOS
 Hacer que el paciente cierre el puño mientras se
ocluyen las arterias radial y cubital
 Hacer que el paciente abra su mano
 Dejar de comprimir la arteria cubital
 El color debe volver a la mano del paciente en 15
segundos
 En caso contrario elija otro sitio para realizar la
punción arteria.

48. PROCEDIMIENTO
 Lavado clínico de manos, recolectar material y verificar
su esterilidad, prepara riñón con técnica aséptica y
trasladar a la unidad del RN.
 Lavado clínico de manos, inmovilizar al paciente,
colocación de guantes.
 Elegir el sitio de punción mediante palpación de pulso
arterial humeral o radial

49.  Asepsia de piel y puncionar sitio en ángulo de 45
grados sin ligar
 Cubrir sitio de punción con gasa estéril y tela adhesiva.
 Eliminar material usado
 Lavado clínico de manos

50.  Punción de la arteria radial: puncionar en 45 grados.
 En prematuros pequeños: puncionar 15 y 20 grados.
 Punción de la arteria pediadorsal: punción entre 15 y
20 grados
 Punción de la arteria tibial posterior: puncionar en 45
grados.

51. CONTRAINDICACIONES
 Alteración de la coagulación, trombocitopenia
 Compromiso de la circulación en extremidades, shock.
 Arteria inapropiada, que sea fácil de colapsarse.
 Infección en el área de punción

52. CUIDADOS DE ENFERMERIA
 Evitar puncionar zonas enrojecidas con ´presencia de
infección y dolor excesivo, hematomas, quemaduras o
piel alterada.
 Procurar mover la aguja, así evitaremos lesiones en los
tejidos y catéter lo menos posible, extravasación de la
arteria por el catéter o aguja.

53.  Efectuar la inserción con las máximas medidas de
asepsia evitando a transmisión de microorganismos.
 Presionar durante 5 minutos la zona de punción para
evitar sangrado o la formación de hematomas
posterior a la punción.
 Observar la aparición de posibles complicaciones en el
paciente para actuar a tiempo.

54. GRACIAS !

55.  http://www.eccpn.aibarra.org/temario/seccion2/capit
ulo33/capitulo33.htm