El documento describe el sistema reproductor masculino y los efectos de la castración y criptorquidia. Explica que el sistema reproductor masculino incluye los testículos, la uretra y el pene. Los testículos producen espermatozoides y testosterona, mientras que la uretra permite la micción y eyaculación. La castración y criptorquidia causan esterilidad al eliminar la producción de andrógenos testiculares. El documento también describe los métodos utilizados para observar los efectos de la ause

1. 0
INTRODUCCIÓN
El sistema reproductor del macho está compuesto anatómicamente por dos
testículos, una uretra y el órgano copulador (pene). Las funciones principales
de dicho sistema es la excreción de orina y la espermatogénesis quien
garantiza que una especie determinada se perpetúe en el ambiente. La
testosterona (hormona masculina) producida principalmente en los testículos
por las células intersticiales de Leydig, genera alteraciones en el metabolismo
del individuo, produce una serie de variaciones en las características físicas
además, acompañado a ello, cambios en el comportamiento Una pequeña
porción de la producción se le atribuye a la corteza adrenal.
La castración y la criptorquidia son técnicas quirúrgicas donde el macho queda
en condición de esterilidad, dichas técnicas se emplearan con animales de
laboratorio con el propósito de determinar los cambios que se producen a nivel
hormonal, debido a la descompensación de andrógenos testiculares. La
actividad androgénica estimula el crecimiento y función de los órganos
genitales, confiriendo caracteres sexuales secundarios de especial importancia
en la atracción sexual, facilitando el libido en el macho.
La finalidad de la investigación es observar los efectos que tiene la ausencia de
testosterona dentro del organismo animal, para ello se utilizaron especimenes
de la cepa Sprayed Dowley provenientes de un centro de cría, realizando un
seguimiento durante dos semanas continuas de estudio

2. 1
1.- CONCEPTOS Y GENERALIDADES DEL SISTEMA REPRODUCTOR DEL
MACHO
Para entender la funcionalidad del sistema reproductor del macho es necesario
describir ciertos conceptos histofisiológicos que se hacen indispensables para
ubicarnos en el animal. Cabe destacar que cada especie posee características
especiales, dependiendo de la necesidad metabólica que posea.
1.1.- Pene:
Actúa como un órgano excretorio para la orina y como el órgano masculino de
la cópula para el depósito de espermatozoos en el aparato reproductor
femenino.
1.2.- Testículos:
Son las gónadas masculinas productoras de espermatozoides y hormonas
sexuales (testosterona) que se encuentran suspendidas en el interior del
escroto, una bolsa fuera de la cavidad corporal. Esta disposición anatómica es
necesaria en la medida en que la producción normal de espermatozoides
requiere una temperatura de alrededor 2 °C inferior a la corporal interna.
Los espermatozoides se producen en los túbulos seminíferos espiralados que
conforman la mayor parte del tejido testicular. Los túbulos seminíferos se
fusionan para desembocar en el epidídimo, un tubo espiralado que forma un
casquete por fuera de la cápsula testicular. El epidídimo se continúa con el
conducto deferente, que desemboca en la uretra.
Cada túbulo seminífero está compuesto por una capa única de células de
Sertoli las cuales apoyan, protegen y nutren las células espermatógenas;
fagocitan remantes citoplasmáticos de espermátides; secretan la proteína
fijadora de andrógenos, hormonas y un medio nutritivo, y establecen la barrera
hematotesticular. Tenemos otras células dispersas entre elementos de tejido
conectivo de la túnica vascular, las cuales secretan un andrógeno
(testosterona) llamadas células de Leydig.
1.3.- Uretra:

3. 2
Conducto por el que pasa la orina desde la vejiga urinaria hasta el exterior del
cuerpo durante la micción. También permite el paso del semen durante la
eyaculación. El epitelio que recubre el interior de la uretra es un epitelio
transicional cuando se inicia de la vejiga urinaria, después se transforma en un
epitelio pseudoestratificado y cerca del meato urinario se transforma en epitelio
estratificado escamoso.
1.4.- Glándulas genitales accesorias:
1.4.1.- Vesículas seminales: Son dos cuerpos glandulares compactos de
superficie lobulada situados dorsolateralmente al cuello de la vejiga urinaria;
cranealmente quedan englobadas en el pliegue urogenital, situándose entre
ambas la terminación de los conductos eferentes. El conducto excretor se
asienta bajo la próstata y termina junto a los conductos deferentes en una
invaginación de la membrana mucosa al lado del colículo seminal. El conducto
de las glándulas vesiculares y los conductos deferentes comparten un conducto
eyaculador que se abre hacia la uretra. Secretan un líquido viscoso que
constituye alrededor del 70% del eyaculado.
1.4.2.- Próstata: Se trata de una glándula lobulada que está localizada sobre el
cuello de la vejiga y comienzo de la uretra, ventral al recto. Está formada por
dos lóbulos laterales y un istmo que los conecta. La próstata elabora una
proteína conjugada llamada antiglutinina cefálica que previene la aglutinación
de los espermatozoides, secreta fosfatasa ácida, fibrinolisina y ácido cítrico
directamente a la luz de la uretra. Algunas especies producen prostaglandinas
que favorecen las contracciones uterinas en las hembras.
1.5.- Andrógenos:
Los andrógenos son esteroides y derivados del núcleo del Androstano de 19
carbonos, sintetizados a partir del núcleo del colesterol. El andrógeno
predominante es la testosterona la cual se biosintetiza en el retículo
endoplasmático a partir del colesterol del propio testículo utilizando como
productos intermediarios el ácido mavelónico y el escualeno. La secreción de
testosterona está controlada por la horma luteinizante (LH), y el mecanismo por
el cual ésta estimula a las células de Leydig incluye un incremento en la
formación del AMP cíclico. Una pequeña parte de la testosterona también es

4. 3
formada en la corteza adrenal, estando el 97% de ella en el plasma unida a
proteína, así mismo, una escasa cantidad de la testosterona circulante es
convertida en estrógenos en alguna parte del cuerpo.
Además de sus acciones durante el desarrollo, la testosterona y otros
andrógenos ejercen un efecto inhibidor retroactivo sobre la secreción de LH
hipofisiaria, producen y mantienen los caracteres sexuales secundarios
masculinos y ejercen un efecto anabólico proteínico importante, promotor del
crecimiento. Junto con la hormona folículo estimulante (FSH) la testosterona
conserva la gametogénesis.
1.6.- Criptorquidia:
Puede ser natural o quirúrgica. Fallo en el descenso de uno o ambos testículos
hasta el escroto. Aunque el testículo criptórquido es capaz de producir
andrógenos, es incapaz de producir espermatozoides normales, por lo que un
macho con criptorquidia bilateral es estéril. Estos testículos son más
susceptibles de sufrir una torsión del cordón espermático y tienen diez veces
más probabilidades de ser neoplásicos. La criptorquidia parece tener una base
genética, aunque el mecanismo no se conoce en totalidad y puede variar entre
las distintas especies. En la criptorquidia unilateral, la fertilidad disminuye al 50
por 100. Debido a la alta temperatura abdominal, los espermatozoides y otros
constituyentes del epitelio germinal degeneran rápidamente, sin embargo; la
producción de testosterona es normal o casi normal, y las glándulas genitales
accesorias siguen su desarrollo.
1.7.- Castración:
Tras la castración, los mamíferos quedan totalmente estériles. Los conductos
genitales y glándulas genitales accesorias sufren una involución, sí la
castración es prepuberal, ni siquiera llegan a desarrollarse. En la castración no
existe espermatogénesis ni tampoco hormogénesis.
1.8.- Factores hormonales que estimulan la espermatogénesis:
Existen cinco hormonas que desempeñan funciones absolutamente esenciales
en el proceso de la espermatogénesis, como son: testosterona, luteinizante
(LH), folículo estimulante (FSH), estrógenos y hormona del crecimiento.

5. 4
1.8.1.- La testosterona es secretada por las células de Leydig que se
encuentran en el intersticio testicular, y resulta esencial para una o más etapas
básicas de la división de las células germinales hasta formar los
espermatozoides.
1.8.2.- La hormona LH, secretada por la adenohipófisis, estimula a las células
de Leydig para que elaboren testosterona.
1.8.3.- La hormona FSH secretada también por la adenohipófisis estimula las
células de Sertoli; sin este estímulo no ocurre la conversión de las
espermátides en espermatozoides.
1.8.4.- Los estrógenos formados por las células de Sertoli, por estímulo de la
FSH, ayudan también al proceso de espermiogénesis.
1.7.5.- La hormona del crecimiento, necesaria para regular las funciones
metabólicas básicas de los testículos, fomenta de manera específica la división
temprana de las propias espermatogonias; en su ausencia, hay deficiencia
grave o incluso carencia absoluta de espermatogénesis.

6. 5
2.- MATERIALES Y MÉTODOS
2.1.- Materiales:
2.1.1.- Equipo básico de disección: Pinza Adson-Hudson (diente de ratón),
tijera quirúrgica, pinzas hemostáticas, porta agujas Mayo-Hegar, mango de
bisturí N° 4 con hojilla de bisturí.
2.1.2.- Hilo de sutura.
2.1.3.- Jeringa para insulina (1ml).
2.1.4.- Materiales para afeitar (afeitadora, solución jabonosa).
2.1.5.- Guantes.
2.1.6.- Gasas.
2.1.7.- Camilla de cirugía.
2.1.8.- Tabla de inmovilización.
2.1.9.- Balanza.
2.1.10.- Cajas apropiadas para el mantenimiento y observación de las ratas.
2.1.11.- Cama, alimento y agua para los animales.
2.1.12.- Antibiótico de amplio espectro (Benzetacil).
2.1.13.- Medicamento anestésico: Diazepam, Ketamina y Xilacina.
2.2.- Métodos:
2.2.1.- Pesaje de las ratas macho, cálculo de la dosis de anestésico y
administración de la dosis:
Se utilizaron tres ratas de sexo macho, cepa Sprayed Dowley. Con la ayuda de
una balanza se procedió a pesar a los animales para posteriormente inocular la
dosis correcta de acuerdo a la condición corporal de cada animal. Siendo los
pesos iniciales, los señalados a continuación:

7. 6
Tabla 01
Animal Rata 01 Rata 02 Rata 03
Peso (grs) 241 255 249
Tabla 01: Pesos iniciales de los animales
Seguidamente con los pesos obtenidos se realizó el cálculo de dosis de
anestésico correspondiente:
Diazepam: 2.5 mg/ kg
10 mg/ 2ml
Ejemplo para rata 01
2.5 mg ---------- 1.000 grs
X ---------- 241 grs
X= 0.602 mg
0.602 mg ----------- X
10 mg ------------- 2 ml
X= 0.120 ml
Ketamina: 80 mg/ kg
50 mg/ ml
80 mg ----------- 1.000 grs
X ----------------- 241 grs
X= 19.28 mg
50 mg ----------- 1ml
19.28 mg ------- X
X= 0.385 ml
Xilacina: 10 mg/ kg
20 mg/ ml

8. 7
10 mg ---------- 1.000 grs
X ---------------- 241 grs
X= 2.41 mg
20 mg ---------- 1ml
2.41 mg ------- X
X= 0.120 ml
Tabla 02:
Rata 01 Rata 02 Rata 03
Diazepam (ml) 0.12 0.12 0.12
Ketamina (ml) 0.38 0.40 0.39
Xilacina (ml) 0.12 0.12 0.12
Tabla 02: Cálculo de dosis de anestésicos.
Al tener los cálculos se procedió a sujetar a cada uno de los animales de la
forma adecuada, inmovilizándolos con la ayuda de un guante grueso. En primer
lugar se le aplicó el tranquilizante (Diazepam) vía intramuscular, esperando que
actúe en un lapso de cinco minutos. Cumplido el tiempo y siguiendo las mismas
normas para manejo de animales de laboratorio se inocularon anestésicos
(Ketamina y Xilacina) ambos juntos en una misma jeringa por vía
intraperitoneal, esperando que surtieran efecto en los animales para continuar
con el siguiente paso.
2.2.2.- Preparación pre-quirúrgica:
Anestesiados los animales se procedió a colocarlos en tablas de inmovilización,
en posición decúbito dorsal para realizar el afeitado correspondiente en la zona
escrotal, posteriormente se realizó las técnicas de asepsia oportunas,
aplicando solución antiséptica en el lugar de afeitado, con el propósito de
eliminar los microorganismos comensales de la piel.

9. 8
2.2.3.- Técnicas quirúrgicas:
2.2.3.1.- Castración u Orquiectomía:
Con los guantes quirúrgicos ya colocados, palpando ambos testículos en el
área inguinal se realizó una incisión en la línea media del escroto de
aproximadamente 3 cm de longitud, quedando expuesta la túnica albugínea del
testículo e incidiendo sobre ella, hasta visualizar el cordón espermático.
Seguidamente se colocó una ligadura sobre el mismo, con la ayuda de un
bisturí se cortó el testículo, al mismo tiempo se revisó la ausencia de puntos
sangrantes. Posteriormente se procedió de la misma forma con el otro
testículo.
Luego de retirados ambos testículos se cerró la incisión con puntos
interrumpidos simples. Finalmente se le aplicó una solución antiséptica.
2.2.3.2.- Criptórquido abdominal:
Se colocó al animal en experimentación en posición decúbito dorsal sobre la
tabla de trabajo. Al palpar ambas gónadas en la bolsa escrotal se llevaron
hasta cavidad abdominal, con la ayuda de una aguja e hilo se cerró el canal
inguinal con el propósito de evitar el descenso testicular y poder evaluar el
efecto de las hormonas masculinas. De igual forma se le aplicó una solución
antiséptica en el área incidida.
2.3.- Tratamiento post-operatorio:
Luego de haber realizado las cirugías correspondientes, las tres ratas macho
(castrada, criptórquida y control) fueron colocadas en observación en un
período de catorce (14) días, en una caja con comida y agua. Durante este
lapso se le colocó diariamente una dosis de 0,1 ml de antibiótico (Benzetacil)
por vía intramuscular, haciendo el cambio de la cama cada dos (2) días. Del
mismo modo, se pesaron a los animales diariamente con el propósito de
obtener conclusiones más precisas acerca de la actividad metabólica de cada
uno.

10. 9
Tabla 03
DÍA
1
21/7/09
2
22/7
3
23/7
4
24/7
5
25/7
6
26/7
7
27/7
RATA N°01
(CASTRADA)
241 gr 230 gr 231,5
gr
237,3
gr
240,5
gr
243 gr 246,3
gr
RATA N°02
(CRIPTORQ
UIDA)
255 gr 248 gr 249 gr 259 gr 263 gr 263,5
gr
264
gr
RATA N°03
(CONTROL)
249 gr 249 gr 250 gr 258,5
gr
260 gr 263 gr 263
gr
Tabla 03: Control de pesos (Primera semana)
Tabla 04:
DÍA 1
28/7
2
29/7
3
30/7
4
31/7
5
01/8
6
02/8
7
03/8
RATA N°01
(CASTRADA)
242,8
gr
253 gr 257 gr 277 gr 279 gr 279 gr 279 gr
RATA N°02
(CRIPTORQUIDA)
254,8
gr
261 gr 265 gr 280 gr 284 gr 289 gr 292 gr
RATA N°03
(CONTROL)
267 gr 276 gr 281 gr 298 gr 298 gr 304 gr 304 gr
Tabla 04: Control de pesos (Segunda semana)

11. 10
3.- RESULTADOS
3.1.- Castrado:
Transcurridos los catorce (14) días bajo observación y cuidado, los animales se
sometieron a una sobredosis de anestésicos para sacrificarlos e inspeccionar la
cavidad abdominal. Los medicamentos utilizados para este proceso fueron:
Ketamina y Xilacina. En el caso del macho castrado se observó la apariencia
de las glándulas anexas al sistema reproductor: vesículas seminales y próstata,
las cuales se pesaron y examinaron, percibiendo que ambas glándulas se
habían atrofiado debido al desequilibrio hormonal atravesado. Al estudiar los
pesos expuestos en las tablas 03 y 04 se puede percibir claramente que el
animal castrado experimentó una ganancia de peso corporal, ello debido a que
los testículos son los principales productores de testosterona y al retirarlos el
metabolismo se ve afectado, traduciéndose esto en ganancia de peso puesto
que parte de la energía consumida no tendría que ir a la formación de dicho
andrógeno. Los esteroides con actividad androgénica tienen un efecto
anabólico proteico y miotrófico al incrementar la síntesis de proteína y disminuir
la velocidad de descomposición de los aminoácidos, lo que lleva a un
incremento de la masa muscular, una redistribución de la grasa y un retraso del
cierre hipofisiario. A partir de esto se infiere que ante la ausencia de
andrógenos, los animales no reubican esa grasa y por ende ella se almacena,
también recordando que el precursor de la testosterona es el colesterol y este
se almacenaría en el organismo, representando una ganancia lípidica adicional.
Tabla 05
Vesícula seminal Próstata
Rata 01 Peso
0.122 grs
Medida
1 cm
Peso
0.080 grs
Medida
0.5 cm
Tabla 05: Peso y medida de glándulas anexas al sistema reproductor
(castrada).

12. 11
Posteriormente de hacer un examen macroscópico de cada una de las
glándulas, estas fueron enviadas a un laboratorio de histología, con el fin de
hacer un corte histológico y observar características microscópicas. (Ver
anexos).
3.2.- Criptórquido:
De igual modo que se hizo con el animal castrado, al criptórquido también se le
inoculó una sobredosis de anestesia para realizar una laparotomía media,
localizando los testículos que se encontraban en cavidad abdominal,
observando así el aspecto macroscópico (pesos, medidas) de las glándulas
accesorias (vesícula seminal y próstata), arrojando los siguientes datos:
Tabla 06
Vesícula seminal Próstata
Rata 02 Peso
0.43 grs
Medida
2 cm
Peso
0.24 grs
Medida
2 cm
Tabla 06: Peso y medida de glándulas anexas al sistema reproductor
(criptórquida)
Los testículos se encuentran naturalmente fuera de cavidad abdominal debido
a que ellos requieren para el proceso de espermatogénesis una temperatura
inferior a la corporal, y al encontrarse en cavidad los espermatozoides no eran
viables, sin embargo; la producción hormonal continuaba en menor cantidad.
Se observó los pesos de la última semana y comparándolos con el animal
castrado se percibió que la condición corporal de la criptórquida era mucho
mejor. Los andrógenos le dotaban de una mayor ganancia muscular.
3.3.- Control:
Al extraer las gónadas y las glándulas sexuales del animal control, se observó
macroscópicamente que tanto vesículas seminales como próstata poseían
mayor tamaño con respecto a los animales anteriores, e incluso se observó la

13. 12
presencia de semen en ambas estructuras (ver anexos de cortes histológicos).
Al comparar pesos se puede notar que el peso de este último animal es mayor
con respecto a los demás. Obteniendo los siguientes resultados:
Tabla 07
Vesícula seminal Próstata
Rata 03 Peso
0.63 grs
Medida
2.5 cm
Peso
0.36 grs
Medida
2.1 cm
Tabla 07: Peso y medida de glándulas anexas al sistema reproductor (control)

14. 13
Anexo 01: Corte histológico de testículo de animal control.
Nótese que en la luz del epidídimo se observa claramente una gran cantidad de
espermatozoides. (Comparar con anexo 02)
Anexo 02: Corte histológico de testículo de animal criptórquido.
Obsérvese que en el animal con criptorquidia el epidídimo no posee en la luz
espermatozoides. Estando también más dispersas entre sí cada una de las
estructuras.

15. 14
Anexo 03: Vesícula seminal de animal control
Véase que el epitelio glandular está bien desarrollado debido a que la
producción hormonal de este individuo fue normal.
Anexo 04: Vesícula seminal de animal castrado.
Nótese que las glándulas se han dispersado, observando escasa secreciones
dentro de las mismas.

16. 15
Anexo 05: Próstata de animal control.
Obsérvese la secreción y la disposición del tejido. Aquí la actividad prostática
es totalmente normal.

17. 16
BIBLIOGRAFÍA
ANNIS, J. Atlas de cirugía canina. Editorial Hispanoamericana, México.
CUNNIGHAM, J. Fisiología veterinaria. Editorial ELSEVIER, 2003, España.
GANONG, W. Fisiología médica. Editorial El manual moderno, 1990, México.
GARCÍA, A. Fisiología veterinaria. Editorial Mc Graw Hill Interamericana, 1996,
España.
GARTNER, L. Texto atlas de histología. Editorial Mc Graw Hill, 2002,
Colombia.
GUYTON, A. Tratado de fisiología médica. Editorial Mc Graw Hill
Interamericana, 1997, México.
HILL, R. Fisiología animal. Editorial panamericana, 2006, España.

18. 17
UNIVERSIDAD CENTRAL DE VENEZUELA
FACULTAD DE CIENCIAS VETERINARIAS
CÁTEDRA DE FISIOLOGÍA ANIMAL
Stephanie J. Fuenmayor A.
18.206.957
Maracay, Octubre de 2009-

19. 18
TABLA DE CONTENIDO
INTRODUCCIÓN 04
CAPÍTULO I
1.- CONCEPTOS Y GENERALIDADES DEL SISTEMA REPRODUCTOR DEL
MACHO
1.1.- Pene 05
1.2.- Testículos 05
1.3.- Uretra 05
1.4.- Glándulas genitales accesorias 06
1.4.1.- Vesículas seminales 06
1.4.2.- Próstata 06
1.5.- Andrógenos 06
1.6.- Criptorquidia 07
1.7.- Castración 07
1.8.- Factores hormonales que estimulan la espermatogénesis 07
CAPÍTULO II
2.- MATERIALES Y MÉTODOS
2.1.- Materiales 09
2.2.- Métodos:
2.2.1.- Pesaje de las ratas macho, cálculo de la dosis de anestésico y
administración de la dosis 09
2.2.2.- Preparación pre-quirúrgica 11
2.2.3.- Técnicas quirúrgicas:
2.2.3.1.- Castración u orquiectomía 12
2.2.3.2.- Criptórquido abdominal 12
2.3.- Tratamiento post-operatorio 12

20. 19
CAPÍTULO III
3.- RESULTADOS
3.1.- Castrado 14
3.2.- Criptórquido 15
3.3.- Control 15
Anexos 17
CONCLUSIÓN 20
BIBLIOGRAFÍA 21

21. 20
CONCLUSIONES
La testosterona es una prohormona, en realidad la forma activa es la 5-alfa-
dihidrotestosterona. Este andrógeno producido en los testículos posee una
notable actividad dentro del metabolismo de un individuo. Al alterar la condición
natural de un individuo por métodos quirúrgicos ya sea castración o
criptorquidia se generan grandes cambios que posteriormente se traducen en
una serie de trastornos fisiológicos.
Al realizar cualquiera de las dos técnicas de cirugía se elimina parcial o
totalmente la producción del andrógeno. Transcurrido el lapso de dos semanas
continuas de investigación los animales experimentaron cambios en sus
condiciones corporales, viéndose afectadas las glándulas anexas (vesícula
seminal y próstata) en las cuales mermó la producción de enzimas y
compuestos necesarios para el enriquecimiento de los espermatozoides. Así
podemos decir, que la Hormona Gonadotropina (GnRH) se produce en el
hipotálamo, estimulando a la hipófisis para la producción de LH (Hormona
Luteinizante) quien actuará sobre las células intersticiales de Leydig,
localizadas en el tejido conectivo de los túbulos seminíferos, y FSH (Hormona
Folículo Estimulante) quien ejerce acción sobre las células de sertoli para la
producción de una enzima llamada inhibina. La testosterona generada en el
testículo actúa sobre las glándulas (vesiculares y próstata) para la producción
de enzimas enriquecedoras para los espermatozoides.
La brusca descompensación hormonal generó cambios en el metabolismo de
los lípidos y aminoácidos, lo que se vio evidenciado en la acelerada ganancia
diaria de peso, y la atrofia de las glándulas vesiculares y próstata. Así se puede
discernir que la testosterona en su forma activa posee múltiples funciones
importantes dentro de un organismo vivo.