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Étude des paramètres biotiques
de Plutella xylostella
Florencia PARRAVICINI
N.P.P
Natural Plant Protection
UFR Sciences et Techniques de la Côte Basque
Licence Biologie des Organismes
Plan de l’exposé
1. Présentation de Plutella xylostella
2. Effet de l’antifongique sur le
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3. Détermination des stades larvaires
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• Entreprise de
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Méthode d’élevage de P. xylostella
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semi-synthétique pour
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BUT FINALBUT FINAL
Production en masse du
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MOYENSMOYENS
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Incorporation de Delvocid®
développement
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d’élevage par champignons
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Effet de l’antifongique sur le
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Déterminer la concentration maximale du produit
pouvant être incorporée sans affecter la viabilité des
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BUT DE L’ESSAIBUT DE L’ESSAI
Essai du Delvocid®
sur bécher
• 5 modalités testées: 24, 50, 100, 200 & 400
mg/kg milieu
• 1 bécher/modalité
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PRINCIPE DE L’ESSAIPRINCIPE DE L’ESSAI
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étudié sur la viabilité des
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• 24 & 50  survie et développement larvaire
normaux
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T 24 50 100 200 400
Nombre de larves
dans bécher
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% survie larvaire 78 84 82 68 64 4
CONCLUSIONCONCLUSION
Possibilité d’incorporation du Delvocid®
jusqu’à 50 mg/kg de milieu
RESULTATS ET DISCUSSIONRESULTATS ET DISCUSSION
Permettra d’inoculer la larve par le PxGV
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Détermination du stade larvaire par
mesure de la capsule céphalique
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PRINCIPE DE L’ESSAIPRINCIPE DE L’ESSAI
• 4 “pics” = 4 modes = distribution multimodale
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0
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largeur capsule céphalique (en µm)
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Eude des paramètres biotiques de plutella xylostella

  • 1. Étude des paramètres biotiques de Plutella xylostella Florencia PARRAVICINI N.P.P Natural Plant Protection UFR Sciences et Techniques de la Côte Basque Licence Biologie des Organismes
  • 2. Plan de l’exposé 1. Présentation de Plutella xylostella 2. Effet de l’antifongique sur le développement de P. xylostella 3. Détermination des stades larvaires par mesure de la capsule céphalique 4. Conclusion
  • 3. Natural Plant Protection (N.P.P.) • Entreprise de biotechnologies • Production et commercialisation de biopesticides PRODUITSPRODUITS Carpovirusine® Cydia pomonella
  • 4. Plutella xylostella CARACTERISTIQUESCARACTERISTIQUES PRINCIPALESPRINCIPALES • Ordre des Lépidoptères • Insecte holométabole • Distribué mondialement PROBLEMEPROBLEME • Ravageur des Crucifères • Résistant aux pesticides chimiques
  • 5. Cycle de vie de P. xylostella Oeuf Larve Pupe Adulte
  • 6. Stratégies de lutte Peu efficaces (résistance DDT) CONTROLES CHIMIQUESCONTROLES CHIMIQUES LUTTE BIOLOGIQUELUTTE BIOLOGIQUE • Phéromones sexuelles • Ennemis naturels Diadromus Cotesia plutellae • Micro-organismes : Baculovirus
  • 7. Les Baculovirus • Virus spécifiques aux insectes • N’infectent que les larves • Deux genres: -NPV (Nucleopolyhedrovirus); -GV (Granulovirus) NPV GV Chez Plutella xylostella : PxGV
  • 8. Méthode d’élevage de P. xylostella sur milieu semi-synthétique Mise au point de milieu semi-synthétique pour alimenter les larves BUT FINALBUT FINAL Production en masse du PxGV in vivo MOYENSMOYENS Elevage de masse du ravageur
  • 9. Incorporation de Delvocid® développement mortalité malformations PROBLEMEPROBLEME Contamination du milieu d’élevage par champignons SOLUTIONSOLUTION Effet de l’antifongique sur le développement de P. xylostella Déterminer la concentration maximale du produit pouvant être incorporée sans affecter la viabilité des larves BUT DE L’ESSAIBUT DE L’ESSAI
  • 10. Essai du Delvocid® sur bécher • 5 modalités testées: 24, 50, 100, 200 & 400 mg/kg milieu • 1 bécher/modalité • dépôt de 50 larves néonates/bécher • résultats comparés au T sans Delvocid® PRINCIPE DE L’ESSAIPRINCIPE DE L’ESSAI Effet du Delvocid® étudié sur la viabilité des larves seulement
  • 11. • 24 & 50  survie et développement larvaire normaux • 100 & 200  retard de développement larvaire • 400  augmentation de mortalité larvaire Modalités T 24 50 100 200 400 Nombre de larves dans bécher 0 2 1 9 11 8 % survie larvaire 78 84 82 68 64 4 CONCLUSIONCONCLUSION Possibilité d’incorporation du Delvocid® jusqu’à 50 mg/kg de milieu RESULTATS ET DISCUSSIONRESULTATS ET DISCUSSION
  • 12. Permettra d’inoculer la larve par le PxGV au moment le plus approprié Mesure quotidienne de la largeur de la capsule céphalique de 30 larves au micromètre oculaire Détermination du stade larvaire par mesure de la capsule céphalique BUTBUT Détermination précise du stade larvaire par mesure de la largeur de la capsule céphalique PRINCIPE DE L’ESSAIPRINCIPE DE L’ESSAI
  • 13. • 4 “pics” = 4 modes = distribution multimodale • 4 “populations” dans échantillon  4 stades larvaires Modèle mathématique associant à chacune des 4 largeurs les plus fréquemment retrouvées un stade larvaire Distribution des effectifs en fonction des largeurs des capsules céphaliques de P. xylostella 0 10 20 30 40 50 60 10 12,5 15 17,5 20 22,5 25 27,5 30 32,5 35 37,5 40 42,5 45 47,5 50 52,5 55 largeur capsule céphalique (en µm) effectif RESULTATS et DISCUSSIONRESULTATS et DISCUSSION
  • 14. DISCUSSIONDISCUSSION : Régression modèle exponentiel  R2 proche de 1  forte corrélation entre les 2 variables Nuage de points avec sa droite de régression y = 10,401e 0,4066x R 2 = 0,9908 0 10 20 30 40 50 60 0 1 2 3 4 5 numéro des stades largeurcapsulecéphalique(enµm) CONCLUSIONCONCLUSION Chaque stade est caractérisé par une largeur de capsule déterminée.
  • 15. CONCLUSION RESULTATS PROMETTEURSRESULTATS PROMETTEURS  Détermination de la concentration maximale de Delvocid®  50 mg/kg milieu;  Modèle mathématique valable de la détermination du stade larvaire. PERSPECTIVESPERSPECTIVES  Autres supports Delvocid® ;  Inoculation du PxGV sur larves au moment le plus opportun.
  • 16. Merci de votre attention