Seminários em Fitopatologia II - Rudolf Schuiling

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Johnson, D. A., and Atallah, Z. K. 2006. Timing fungicide applications for managing Sclerotinia stem rot of potato. Plant Dis. 90:755-758.

Fungicides were applied to potato foliage at row closure (between rows) and at full bloom of
primary inflorescences to control Sclerotinia stem rot during replicated trials in 2003, 2004, and
2005. Application at row closure followed labeled recommendations from manufacturers. Incidence
of Sclerotinia stem rot did not vary significantly among fungicides when full labeled rates
of thiophanate-methyl, fluazinam, and boscalid were applied at full bloom of primary inflorescences.
Incidence of Sclerotinia stem rot was significantly less when fungicides thiophanatemethyl,
fluazinam, or boscalid were applied to potato foliage at full bloom of primary inflorescences
than at row closure or when fungicides were not applied in 2004 and 2005, and when
thiophanate-methyl or fluazinam was applied to potato foliage at full bloom of primary inflorescences
than at row closure or when fungicides were not applied in 2003. Mean percentage of
control for the fungicides combined, relative to the nontreated control, was 43, 48, and 20% in
2003, 2004, and 2005, respectively, when application was made at row closure; whereas, it was
77, 83, and 80% in 2003, 2004, and 2005, respectively, when application was at full bloom of
primary inflorescences. Mean disease incidences of infected stem were significantly less when
fluazinam was applied at 100% bloom of primary inflorescences than at 20% drop of blossoms
from primary inflorescences in 2004 and 2005. In summary, control of Sclerotinia stem rot was
significantly better when fungicides were applied at full bloom of primary inflorescences than at
row closure during all 3 years of the study.

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Seminários em Fitopatologia II - Rudolf Schuiling

  1. 1. Manejo de fungicidas para controle da podridão-de- esclerotinia da batata JOHNSON,D.A.,eATALLAH,Z.K.2006.TimingfungicideapplicationsformanagingSclerotiniastemrotofpotato.PlantDis.90:755-758. Instituto Federal Goiano câmpusUrutaí. Curso de Agronomia Disciplina de Fitopatologia II Apresentador: Rudolf Schuiling 1
  2. 2. 2
  3. 3. Introdução: •Sclerotinia sclerotiorum é o agente causal da podridão de Sclerotinia ou mofo branco na cultura da batata. •É um fungo ascomiceto de distribuição global que infecta mais de 400 espécies em 75 famílias de plantas. •Culturas comuns cultivados suscetíveis a S.sclerotiorum incluem batata, feijão, ervilha, cenoura, cucurbitáceas, e Brassicaspp. •O aumento da Incidência da doença têm sido associados a arquitetura e morfologia do cultivar, alta densidade de plantio, espaçamento entre linhas estreito, permanente umidade da superfície da planta e excesso de adubação nitrogenada na cultura de batata e outras culturas. 3
  4. 4. Introdução: •Um a três aplicações de fungicidas são feitos geralmente em uma tentativa para controlar o mofo branco da batata. •Os ascósporos de S. sclerotiorum são incapazes de infecção direta de folhas verdes intactas e tecidos do caule de batata e outras culturas, mas colonizam flores e outros tecidos senescentes para usá-los como fontes de energia para infectar tecidos verdes. •Ascósporos lançados ao ar são depositados sobre as flores de batata abertos ligados ao dossel 4
  5. 5. Introdução •Um tiro batata é composto por uma haste principal e ramos. Ele pode produzir uma ou mais inflorescências paniculadas ao longo do tempo. •O tronco principal de uma sessão de batata termina em uma inflorescência, que é chamado de inflorescência primária. •A aplicação de fungicida em plena floração de inflorescências primárias não foi diretamente comparado à aplicação no fechamento da linha para controle de Sclerotinia. 5
  6. 6. Objetivo: •O principal objetivo deste estudo foi avaliar a eficácia de aplicações CIDE fungicidas para o controle de Sclerotinia no fechamento da linha e em plena floração de inflorescências primárias. 6
  7. 7. Materiais e Métodos •Os experimentos foram conduzidos em campos de batata comerciais. •Norte de Pasco, WA, em 2003, 2004 e 2005. •Campos diferentes foram usados a cada ano. •Os campos eram 53 ha de área irrigada com sistema de pivô central. •Batata semente certificada foi plantada de 23, até 25 cm de espaçamento dentro de linhas e em 86 centímetros de espaçamento entre linhas em meados de março de cada ano. •As cultivares foram Shepody em 2003 e 2005, e da guarda florestal Russet em 2004. •Ambas as cultivares produzir copas densas e são suscetíveis a S. sclerotiorum. •Tamanho da parcela foi de três linhas (2,6 m) de largura e 9,1 m de comprimento. 7
  8. 8. Materiais e Métodos •O produtor irrigou, manejou ervas daninhas e insetos, e cultivou a cultura de acordo com as práticas comerciais normais. No entanto, o produtor não aplicou fungicidas para controle de Sclerotinia à seção do campo que continha as parcelas experimentais. •Fungicidas tiofanato-metilo em 1,176 kg ia / ha, fluazinam em 0,280 kg ia / ha, e boscalid em 0,336 kg ia / ha foram usados . 8
  9. 9. Materiais e Métodos •Os fungicidas e épocas de aplicação de fungicidas foram dispostos em um delineamento em blocos casualizados com quatro repetições. •Fungicidas foram aplicados com um pulverizador pressurizado de CO2 a uma taxa de 281 litros de água / ha. •A incidência da doença foi avaliada na linha do meio de cada parcela pela contagem do número de hastes com lesões 15 dias após a doença ser evidente nas parcelas. 9
  10. 10. Materiais e Metodos •Porcentagem de controle foi calculada -[(número médio de hastes com lesões do tratamento fungicida / número médio de hastes com lesões de controle não tratado) ×100]. •Dados de incidência da doença foram analisados por uma de duas vias de análise fatorial de variância em um delineamento em blocos casualizados utilizando PROC GLM em SAS. •Os dados de cada um dos 3 anos de idade foram analisados separadamente. •Protegido diferença mínima significativa de Fisher em α = 0,05 foi utilizado para comparar as médias dos tratamentos. Interações podem não ter sido detectado pelo programa SAS porque os tratamentos com fungicidas não foram equilibrados dentro de épocas de aplicação. 10
  11. 11. Resultados: •Sintomas da doença em hastes, presumivelmente de inóculo aéreo, foram evidentes em 17 de junho de 2003, em 22 de junho de 2004 e em 23 de Junho de 2005. •A média de incidência da doença no controle não tratado foi de 44, 29 e 59 hastes infectadas por 9,1 m em 2003, 2004 e 2005, respectivamente. •Tratamentos com fungicidas e de épocas de aplicação de fungicida teve uma variação significativa em cada um dos três anos. •A eficácia dos fungicidas variou, em 2003 e 2005, dependendo do tempo de aplicação. Incidência de esclerodermia rotinia podridão foi menor (P <0,05), quando lotes foram tratados com fluazinam que com tiofanato-metilo no fechamento de linha em 2003, e com boscalid que com tio-phanate-metil em 10% de floração em 2003 ; e com boscalid no fechamento da linha, 10% de floração, e 70% de floração em 2005. 11
  12. 12. 12
  13. 13. Resultados: •A incidência da doença não variou entre os três fungicidas, quando aplicado a 100% de floração em 2003, 2004 e 2005 ou quando aplicado no fechamento da linha. •A incidência da podridão de Sclerotinia foi menos quando metil Tiofanato- ou fluazinam foi aplicado na folhagem da batata em plena floração do que quando aplicado no fechamento da linha ou não aplicada em 2003, e quando phanate tio-metil, fluazinam, ou boscalid foi aplicada à folhagem em plena floração do que quando aplicado no fechamento da linha ou não aplicadas em 2004 e 2005. •Porcentagem de controle significa para os fungicidas combinados, em relação ao controle não tratado, foi de 43, 48 e 20% em 2003, 2004 e 2005, respectivamente, quando a aplicação foi feita no fechamento da linha. •Incidência da doença para os fungicidas combinados não diferiu quando as aplicações foram feitas em 10% de floração, 100% de floração, e 10% de queda das inflorescencias em 2003. 13
  14. 14. Discussão: •Controle da podridão Sclerotinia foi significativamente melhorada quando fungicidas foram aplicados em plena floração , em comparação com aplicações ao fechamento da linha. •Uma redução significativa de Sclerotinia foi observado no presente estudo quando aplicações foram feitas após a plena floração em comparação com a testemunha não tratada. •Inóculo de S. sclerotiorum é abundante em plena floração de inflorescências primárias em muitos campos de batata na Bacia de Columbia. •Apotecios imaturos geralmente começam a surgir em ou logo após o fechamento da linha na batata e campos vizinhos plantados para outras culturas na Bacia de Columbia, e o maior número de ascósporos de S. esclerotiorum foram capturados após o fechamento da linha e cerca de uma semana antes e alguns dias após o pleno florescimento. 14
  15. 15. Discussão: •Osfungicidasusados nesteestudo,quandoaplicadoemplenafloração,nãovariaramemeficácia,etodosostrêsefetivamentereduziramapodridãodaSclerotinia; •EscleródiosdeS.sclerotiorumnosolopodemcontaminarpróximoahastespelasuperfíciedosoloantesdaquedadaflor,eosfungicidasfoliarestestadasnesteestudonãoseriameficazesparaconterestasinfecções. •Ofluazinamfungicidafoiregistradaparaabatataparaatemporadade2003,eboscalidfoiregistradaparaabatataem2004,eestesprodutostêmajudadonaeficáciadocontrole.Noentanto,aépocadeaplicaçãodefungicidaéparticularmentecrucialparaocontroleefetivo. 15
  16. 16. Referencias: 1.Abawi,G.S.,andGrogan,R.G.1974.Asco-sporesofWhetzeliniasclerotiorumasprimaryinoculumcausingwhitemoldofbeansinNewYork.(Abstr.)Phytopathology64:578. 2.Abawi,G.S.,Polach,F.J.,andMolin,W.T.1975.InfectionbyascosporesofWhetzeliniasclerotiorum. Phytopathology65:673-678. 3.Atallah,Z.K.,andJohnson,D.A.2004.De-velopmentofSclerotiniastemrotinpotatofieldsinsouth- centralWashington.PlantDis.88:419-423. 4.Atallah,Z.K.,Larget,B.,Chen,X.,andJohn-son,D.A.2004.Highgeneticdiversity,pheno-typicuniformity,andevidenceofoutcrossinginSclerotiniasclerotiorumintheColumbiaBasinofWashingtonState.Phytopathology94:737-742. 5.Boland,G.J.,andHall,R.1988.Epidemiol-ogyofSclerotiniastemrotofsoybeaninOn-tario. Phytopathology78:1241-1245. 6.Grau,C.R.,andRadke,V.L.1984.EffectsofcultivarsandculturalpracticesonSclerotiniastemrotofsoybeans.PlantDis.68:56-58. 7.Keary,M.A.1939.AstudyofcertainspeciesofthegenusSclerotinia.Ann.Appl.Biol.26:227-246. 8.Miller,T.D.,andMiller,J.S.2001.Sclerotiniawhitemoldofpotato.Pages185-186in:Proc.2001IdahoWinterCommoditySchools,Aber-deen,ID. 9.Morton,J.G.,andHall,R.1989.Factorsdeterminingtheefficacyofchemicalcontrolofwhitemoldinwhitebean.Can.J.PlantPathol.11:297-302. 10.Natti,J.J.1971.Epidemiologyandcontrolofbeanwhitemold.Phytopathology61:699-674. 16
  17. 17. Referencias: 11. Partyka, R. E., andMai, W. F. 1962. Effectsofenvironmentandsome chemicalsonScle- rotiniasclerotiorumin laboratoryandpotatofield. Phytopathology52:766-770. 12. Pscheidt, J. W., andOcamb, C. M., eds. 2002. PacificNorthwestPlantDiseaseManagement Handbook. OregonStateUniversity, Corvallis. 13. Schwartz, H. F., Steadman, J. R., andCoyne, D. P. 1978. InfluenceofPhaseolusvulgarisblossomingcharacteristicsandcanopystruc-tureuponreactionto Sclerotiniasclerotiorum. Phytopathology68:465-470. 14. Steadman, J. R. 1983. White mold–A seriousyield-limitingdiseaseofbean. PlantDis. 67:346-350. 15. Struik, P C., andWiersema, S. G. 1999. SeedPotatoTechnology. WageningenPers, Wagen-ingen, TheNetherlands. 17
  18. 18. OBRIGADO! 18

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