Anúncio
Anúncio

Mais conteúdo relacionado

Anúncio

2 validasi metode bioanalitik

  1. Prof. DR. H. Harrizul Rivai. M.S. Guru Besar Kimia Farmasi Fakultas Farmasi Universitas Andalas
  2. Pedoman yang ada  Pedoman Industri dari FDA: Validasi Metode Bioanalitik, September 2013  Pedoman EMA tentang Validasi Metode Bioanalitik, Februari 2012 23/03/2020 Harrizul Rivai 2
  3. Kepatuhan pada GCP / GLP  Studi klinis harus dilakukan dalam kondisi yang sesuai dengan prinsip Good Clinical Practice (GCP), dan untuk metode analisis dan prosedur penanganan data sampel sesuai dengan prinsip Good Lab Practice (GLP).  GCP / GLP diperlukan untuk memastikan Kualitas dan Kredibilitas  Kredibilitas sangat penting karena persetujuan produk berdasarkan hanya 1 atau beberapa studi  Validasi metode bioanalitik meliputi:  pengembangan metode  validasi pra-studi  validasi dalam studi 23/03/2020 Harrizul Rivai 3
  4. Standar pembanding  Analisis obat dan metabolitnya dalam matriks biologis dilakukan dengan menggunakan sampel yang dibubuhi dengan standar kalibrasi (referensi) dan menggunakan sampel kontrol kualitas (QC).  Kemurnian standar pembanding yang digunakan untuk menyiapkan sampel yang dibubuhi dengan standar dapat mempengaruhi data penelitian.  Oleh karena itu, standar pembanding yang otentik dengan identitas dan kemurnian yang diketahui harus digunakan untuk menyiapkan larutan dengan konsentrasi yang diketahui 23/03/2020 Harrizul Rivai 4
  5. Standar pembanding  Nomor sumber dan jumlah, tanggal kedaluwarsa, sertifikat analisis bila tersedia, dan / atau bukti identitas dan kemurnian eksternal atau eksternal harus dilengkapi untuk setiap standar pembanding.  Jika memungkinkan, standar pembanding harus identik dengan analit  Bila hal ini tidak mungkin, bentuk kimia yang telah stabil (basis basa atau asam, garam atau ester) dengan kemurnian yang diketahui dapat digunakan 23/03/2020 Harrizul Rivai 5
  6. Standar pembanding  Tiga jenis standar pembanding yang lazim digunakan: (1) standar pembanding bersertifikasi (misalnya, standar perbandingan USP, BPFI); (2) standar pembanding yang tersedia secara komersial yang diperoleh dari sumber komersial terkemuka; (3) bahan lain dengan kemurnian yang terdokumentasi yang disintesis oleh laboratorium analitik atau lembaga nonkomersial lainnya 23/03/2020 Harrizul Rivai 6
  7. PENGEMBANGAN METODE  Pengembangan metode memuat tentang penjelasan rinci dan spesifik tentang metode bioanalitik yang harus tertulis  Penjelasan ini bisa berupa protokol, rencana studi, laporan, dan/atau standard operational procedure (SOP)  Sesuatu metode yang dikembangkan itu dianggap sah (valid) apabila metode itu telah divalidasi 23/03/2020 Harrizul Rivai 7
  8. VALIDASI METODE 23/03/2020 Harrizul Rivai 8  Validasi metode adalah prosedur yang membuktikan bahwa metode dapat diandalkan dan dapat direproduksi untuk tujuan penggunaan tertentu.  Jenis validasi metode: 1. Validasi penuh: validasi untuk pertama kali, obat baru, atau penambahan metabolit 2. Validasi sebagian: validasi terhadap modifikasi metode yang telah divalidasi 3. Validation silang: validasi untuk perbandingan antar metode
  9. VALIDASI PENDAHULUAN 23/03/2020 Harrizul Rivai 9 Parameter fundamental untuk validasi • Selektif • Sensitif • Tepat • Teliti • Stabil Metode yang digunakan untuk penentuan obat dan/atau metabolit harus:
  10. Selektivitas Selektivitas adalah kemampuan metode analitik untuk membedakan dan mengukur analit dengan adanya komponen lain dalam sampel Untuk selektivitas, analisis sampel blanko dari matriks biologis yang tepat (plasma, urin, atau matriks lainnya) harus diperoleh dari setidaknya enam sumber Setiap sampel blanko harus diuji untuk interferensi, dan selektivitas harus dipastikan di batas bawah kuantifikasi (LLOQ) 23/03/2020 Harrizul Rivai 10
  11. Selektivitas … Substansi yang berpotensi mengganggu dalam matriks biologis meliputi: komponen matriks endogen, metabolit, produk dekomposisi, pengobatan bersamaan dan xenobiotik eksogen lainnya. 23/03/2020 Harrizul Rivai 11
  12. Pencilan  Data validasi metode yang dilaporkan dan penentuan akurasi dan presisi harus mencakup semua pencilan  Namun, perhitungan akurasi dan presisi tidak termasuk nilai-nilai yang secara statistik ditentukan sebagai pencilan juga dapat dilaporkan 23/03/2020 Harrizul Rivai 12
  13. Ketepatan (akurasi)  Keakuratan metode analitis menggambarkan kedekatan hasil uji rata-rata yang diperoleh dengan metode untuk nilai sebenarnya (konsentrasi) dari analit  Akurasi ditentukan dengan mereplikasi analisis sampel yang mengandung jumlah analit (sampel-sampel) yang diketahui  Akurasi harus diukur menggunakan minimal lima determinasi per konsentrasi 23/03/2020 Harrizul Rivai 13
  14. Ketepatan …  Disarankan minimal tiga konsentrasi dalam kisaran konsentrasi yang diharapkan  Nilai rata-rata harus berada dalam 15% dari nilai aktual kecuali di LLOQ, di mana nilai itu tidak boleh menyimpang lebih dari 20%  Penyimpangan rata-rata dari nilai sebenarnya berfungsi sebagai ukuran akurasi 23/03/2020 Harrizul Rivai 14
  15. Presisi (ketelitian)  Ketelitian metode analitik menggambarkan kedekatan ukuran individu analit ketika prosedur tersebut diterapkan berulang kali pada banyak alikuot dari satu volume homogen tunggal matriks biologis  Presisi harus diukur menggunakan minimum lima penentuan per konsentrasi  Disarankan minimal tiga konsentrasi dalam kisaran konsentrasi yang diharapkan 23/03/2020 Harrizul Rivai 15
  16. Presisi (ketelitian) …  Ketelitian yang ditentukan pada setiap tingkat konsentrasi tidak boleh melebihi 15% dari koefisien variasi (CV) kecuali untuk LLOQ, di mana ia tidak boleh melebihi 20% dari CV.  Presisi kemudian dibagi lagi ke dalam run, presisi intra-batch atau pengulangan, yang menilai presisi selama menjalankan analitis tunggal, dan antara-run, presisi atau pengulangan antar-batch, yang mengukur presisi dengan waktu, dan mungkin melibatkan analis, peralatan yang berbeda, reagen, dan laboratorium. 23/03/2020 Harrizul Rivai 16
  17. Presisi: intra-hari dan antar-hari 23/03/2020 Harrizul Rivai 17
  18.  Tanggal 6/2/2020 23/03/2020 Harrizul Rivai 18
  19. Perolehan kembali  Perolehan kembali analit dalam pengujian adalah respons detektor yang diperoleh dari jumlah analit yang ditambahkan dan diekstraksi dari matriks biologis, dibandingkan dengan respons detektor yang diperoleh untuk konsentrasi sebenarnya dari standar otentik murni  Perolehan kembali berkaitan dengan efisiensi ekstraksi metode analitik dalam batas variabilitas 23/03/2020 Harrizul Rivai 19
  20. Perolehan kembali …  Perolehan kembali analit tidak harus 100%, tetapi tingkat perolehan kembali analit dan standar internal harus konsisten, tepat, dan dapat diproduksi ulang  Eksperimen perolehan kembali harus dilakukan dengan membandingkan hasil analitis untuk sampel yang diekstraksi pada tiga konsentrasi (rendah, sedang, dan tinggi) dengan standar yang tidak diekstraksi yang mewakili perolehan kembali 100%. 23/03/2020 Harrizul Rivai 20
  21. Kurva Kalibrasi (Kurva Standar)  Kurva kalibrasi (standar) adalah hubungan antara respons instrumen dan konsentrasi analit yang diketahui  Kurva kalibrasi harus dihasilkan untuk setiap analit dalam sampel  Sejumlah standar yang memadai harus digunakan untuk mendefinisikan secara memadai hubungan antara konsentrasi dan respons.  Kurva kalibrasi harus disiapkan dalam matriks biologis yang sama dengan sampel dalam penelitian yang dimaksudkan dengan penambahan matriks dengan konsentrasi analit yang diketahui. 23/03/2020 Harrizul Rivai 21
  22. Kurva Kalibrasi (Kurva Standar) …  Jumlah standar yang digunakan dalam membuat kurva kalibrasi akan menjadi fungsi dari rentang nilai analitik yang diantisipasi dan sifat hubungan analit / respons  Konsentrasi standar harus dipilih berdasarkan rentang konsentrasi yang diharapkan dalam studi tertentu  Kurva kalibrasi harus terdiri dari sampel kosong (sampel matriks diproses tanpa standar internal), sampel nol (sampel matriks diproses dengan standar internal), dan enam hingga delapan sampel tidak nol mencakup rentang yang diharapkan, termasuk LLOQ. 23/03/2020 Harrizul Rivai 22
  23. Batas Kuantifikasi yang Lebih Rendah (LLOQ)  Standar terendah pada kurva kalibrasi harus diterima sebagai batas kuantifikasi jika kondisi berikut dipenuhi: 1. Respons analit di LLOQ harus setidaknya 5 kali respons dibandingkan dengan respons kosong. 2. Puncak analit (respons) harus dapat diidentifikasi, diskrit, dan dapat direproduksi dengan presisi 20% dan akurasi 80-120%. 23/03/2020 Harrizul Rivai 23
  24. Kurva Kalibrasi/Kurva Standar/ Respons-Konsentrasi  Model paling sederhana yang secara memadai menggambarkan hubungan konsentrasi-respons harus digunakan  Pemilihan pembobotan dan penggunaan persamaan regresi kompleks harus dibenarkan  Kondisi berikut harus dipenuhi dalam mengembangkan kurva kalibrasi: 1. Penyimpangan 20% dari LLOQ dari konsentrasi nominal 2. 15% deviasi standar selain LLOQ dari konsentrasi nominal 23/03/2020 Harrizul Rivai 24
  25. Kurva Kalibrasi/Kurva Standar/ Respons-Konsentrasi ...  Setidaknya empat dari enam standar tidak nol harus memenuhi kriteria di atas, termasuk LLOQ dan standar kalibrasi pada konsentrasi tertinggi (ULLQ)  Tidak termasuk standar tidak boleh mengubah model yang digunakan 23/03/2020 Harrizul Rivai 25
  26. Efek matriks  Dalam kasus prosedur berbasis LC-MS-MS, langkah- langkah yang tepat harus diambil untuk memastikan kurangnya efek matriks selama penerapan metode, terutama jika sifat matriks berubah dari matriks yang digunakan selama validasi metode.  Bila memungkinkan, matriks biologis yang sama dengan matriks dalam sampel yang dimaksudkan harus digunakan untuk tujuan validasi  Untuk jaringan dengan ketersediaan terbatas, seperti sumsum tulang, matriks proksi yang sesuai secara fisiologis dapat diganti 23/03/2020 Harrizul Rivai 26
  27. Pengenceran sampel  Kemampuan untuk mengencerkan sampel yang semula di atas batas atas kurva standar harus ditunjukkan oleh parameter akurasi dan presisi dalam validasi 23/03/2020 Harrizul Rivai 27
  28. Stabilitas  Stabilitas obat dalam cairan biologis adalah fungsi dari kondisi penyimpanan, sifat kimia obat, matriks, dan sistem wadah.  Stabilitas analit dalam matriks dan sistem wadah tertentu hanya relevan dengan sistem matriks dan wadah tersebut dan tidak boleh diekstrapolasi ke matriks lain dan sistem wadah lain.  Stabilitas analit harus ditetapkan sebelum analisis sampel. 23/03/2020 Harrizul Rivai 28
  29. Stabilitas …  Prosedur stabilitas harus mengevaluasi stabilitas analit selama pengumpulan dan penanganan sampel, setelah penyimpanan jangka panjang (beku pada suhu penyimpanan yang dimaksudkan) dan penyimpanan jangka pendek (suhu kamar), dan setelah melalui siklus pembekuan dan pencairan dan proses analitis.  Kondisi yang digunakan dalam percobaan stabilitas harus mencerminkan situasi yang mungkin dihadapi selama penanganan dan analisis sampel actual. 23/03/2020 Harrizul Rivai 29
  30. Stabilitas …  Prosedur juga harus mencakup evaluasi stabilitas analit dalam larutan stok.  Semua penentuan stabilitas harus menggunakan satu set sampel yang disiapkan dari larutan stok analit yang baru dibuat dalam matriks biologis yang sesuai bebas- analit, bebas-interferensi  Larutan stok analit untuk evaluasi stabilitas harus disiapkan dalam pelarut yang sesuai pada konsentrasi yang diketahui 23/03/2020 Harrizul Rivai 30
  31. 1. Stabilitas Pembekuan dan Pencairan  Stabilitas analit harus ditentukan setelah tiga siklus pembekuan dan pencairan  Setidaknya tiga alikuot pada masing-masing konsentrasi rendah dan tinggi harus disimpan pada suhu penyimpanan yang dimaksudkan selama 24 jam dan dicairkan tanpa bantuan pada suhu kamar.  Ketika sepenuhnya dicairkan, sampel harus dibekukan kembali selama 12 hingga 24 jam dalam kondisi yang sama  Siklus beku-cair harus diulang dua kali lagi, kemudian dianalisis pada siklus ketiga  Jika analit tidak stabil pada suhu penyimpanan yang dimaksudkan, sampel stabilitas harus dibekukan pada -70ºC selama tiga siklus pembekuan dan pencairan 23/03/2020 Harrizul Rivai 31
  32. 2. Stabilitas Suhu Jangka Pendek  Tiga alikuot dari masing-masing konsentrasi rendah dan tinggi harus dicairkan pada suhu kamar dan disimpan pada suhu ini dari 4 hingga 24 jam (berdasarkan pada durasi yang diharapkan bahwa sampel akan dipertahankan pada suhu kamar dalam studi yang dimaksudkan) dan dianalisis 23/03/2020 Harrizul Rivai 32
  33. 3. Stabilitas Jangka Panjang  Waktu penyimpanan dalam evaluasi stabilitas jangka panjang harus melebihi waktu antara tanggal pengumpulan sampel pertama dan tanggal analisis sampel terakhir  Stabilitas jangka panjang harus ditentukan dengan menyimpan setidaknya tiga alikuot dari masing-masing konsentrasi rendah dan tinggi dalam kondisi yang sama dengan sampel penelitian. 23/03/2020 Harrizul Rivai 33
  34. 3. Stabilitas Jangka Panjang …  Volume sampel harus cukup untuk analisis pada tiga kesempatan terpisah  Konsentrasi semua sampel stabilitas harus dibandingkan dengan rata-rata nilai yang dihitung kembali untuk standar pada konsentrasi yang sesuai sejak hari pertama pengujian stabilitas jangka panjang. 23/03/2020 Harrizul Rivai 34
  35. 4. Stabilitas Larutan Induk (Stok)  Stabilitas larutan stok obat dan standar internal harus dievaluasi pada suhu kamar selama setidaknya 6 jam  Jika larutan stok didinginkan atau dibekukan untuk periode yang relevan, stabilitasnya harus didokumentasikan  Setelah penyelesaian waktu penyimpanan yang diinginkan, stabilitasnya harus diuji dengan membandingkan respons instrumen dengan larutan yang baru disiapkan 23/03/2020 Harrizul Rivai 35
  36. 5. Stabilitas Pasca Persiapan  Stabilitas sampel yang diproses, termasuk waktu tinggal di autosampler, harus ditentukan  Stabilitas obat dan standar internal harus dinilai selama jangka waktu yang diantisipasi untuk ukuran batch dalam sampel validasi dengan menentukan konsentrasi berdasarkan standar kalibrasi asli. 23/03/2020 Harrizul Rivai 36
  37. APLIKASI UNTUK ANALISIS OBAT RUTIN  Pengujian semua sampel analit dalam matriks biologis harus diselesaikan dalam periode waktu ketersediaan data stabilitas  Sampel dapat dianalisis dengan penentuan tunggal tanpa duplikat atau analisis replikasi jika metode pengujian memiliki variabilitas yang dapat diterima  Apabila presisi dan akurasi tinggi mungkin sulit dicapai, analisis rangkap dua atau bahkan rangkap tiga dapat dilakukan untuk estimasi analisis yang lebih baik. 23/03/2020 Harrizul Rivai 37
  38. Kurva kalibrasi 23/03/2020 Harrizul Rivai 38  Kurva kalibrasi harus dihasilkan untuk setiap analit untuk menguji sampel dalam setiap analitik dan harus digunakan untuk menghitung konsentrasi analit dalam sampel yang tidak diketahui dalam analitik.  Proses analitik dapat terdiri dari sampel QC, standar kalibrasi, dan (1) semua sampel yang diproses untuk dianalisis sebagai satu batch atau (2) batch yang terdiri dari sampel yang diproses tidak diketahui dari satu atau lebih sukarelawan dalam sebuah penelitian. QC QCQC QC QCQC
  39. Kurva kalibrasi … 23/03/2020 Harrizul Rivai 39  Sampel Standar & QC dapat disiapkan dari larutan spiking stock yang sama, jika stabilitas dan akurasi diverifikasi  Satu sumber matriks dapat digunakan, jika selektivitas diverifikasi  Sampel kurva standar, blanko, QC, dan sampel studi dapat diatur sesuai dengan yang dipertimbangkan dalam pelaksanaan.  Penempatan sampel standar dan QC dalam suatu proses analitik harus dirancang untuk mendeteksi pergeseran pengujian selama menjalankan proses analitik. QC QCQC QC QCQC
  40. Calibration curve  The calibration (standard) curve should cover the expected unknown sample concentration range in addition to a calibrator sample at LLOQ  Estimation of concentration in unknown samples by extrapolation of standard curves below LLOQ or above the highest standard is not recommended  Instead, the standard curve should be redefined or samples with higher concentration should be diluted and reassayed 23/03/2020 Harrizul Rivai 40
  41. Calibration curve  A matrix-based standard curve should consist of a minimum of six standard points, excluding blanks (either single or replicate), covering the entire range.  The same curve fitting, weighting, and goodness of fit determined during pre-study validation should be used for the standard curve within the study  Changes in the response function relationship between pre-study validation and routine run validation indicate potential problems 23/03/2020 Harrizul Rivai 41
  42. Acceptance criteria for calibration curves  A matrix-based standard curve should consist of a minimum of six standard points, excluding blanks (either single or replicate), covering the entire range  The same curve fitting, weighting, and goodness of fit 23/03/2020 Harrizul Rivai 42
  43. Acceptance range for calibration standards  Matrix-based standard calibration samples: 75%, or a minimum of six standards, when back-calculated (including ULOQ) should fall within ±15%, except for LLOQ, when it should be ±20% of the nominal value  Values falling outside these limits can be discarded, provided they do not change the established model  Acceptance criteria for accuracy and precision should be provided for both the intra-day and intra-run experiment  Acceptance criteria of pre-study validation (15%) 23/03/2020 Harrizul Rivai 43
  44. Quality Controls to monitor  It is preferable to analyze all study samples from a subject in a single run  Once the analytical method has been validated for routine use, its accuracy and precision should be monitored regularly to ensure that the method continues to perform satisfactorily  To achieve this objective, a number of QC samples prepared separately should be analyzed with processed test samples at intervals based on the total number of samples 23/03/2020 Harrizul Rivai 44
  45. Quality controls (QC)  The QC samples in duplicate at three concentrations (one near the LLOQ (i.e., 3 x LLOQ), one in midrange, and one close to the high end of the range) should be incorporated in each assay run  The number of QC samples (in multiples of three) will depend on the total number of samples in the run  The results of the QC samples provide the basis of accepting or rejecting the run 23/03/2020 Harrizul Rivai 45
  46. Acceptance criteria for QCs  At least 67% (four of every six) QC samples should be within 15% of their respective nominal value  Two of the six (33%) QC samples may be outside the 15% of their respective nominal value, but not both at the same concentration  The minimum number of samples (in multiples of three) should be at least 5% of the number of unknown samples or six total QCs, whichever is greater.  The data from rejected runs need not be documented, but the fact that a run was rejected and the reason for failure should be recorded 23/03/2020 Harrizul Rivai 46
  47. Re-analysis of samples or repeat analyses  The rationale and the reporting should be clearly documented  Documentation should include  the initial and repeat analysis results  the reported result  assay run identification  the reason for the repeat analysis  the requestor of the repeat analysis, and  the manager authorizing reanalysis.  Repeat analysis of a clinical or preclinical sample should be performed only under a predefined SOP. 23/03/2020 Harrizul Rivai 47
  48. Repeat analysis  SOP or guideline for repeat analysis, reasons for repeating and acceptance criteria  Reasons for repeat analyses could include:  Repeat analysis of clinical or preclinical samples for regulatory purposes,  inconsistent replicate analysis,  samples outside of the assay range,  sample processing errors,  equipment failure,  poor chromatography, and  Inconsistent pharmacokinetic data  Reassays should be done in triplicate if sample volume allows 23/03/2020 Harrizul Rivai 48
  49. Sample Data Reintegration  An SOP or guideline for sample data reintegration should be established  This SOP or guideline should explain the reasons for reintegration and how the reintegration is to be performed  The rationale for the reintegration should be clearly described and documented  Original and reintegration data should be reported 23/03/2020 Harrizul Rivai 49
  50. DOCUMENTATION  Documentation of successful completion of validation studies should be provided in the assay validation report  General and specific SOPs and good record keeping are an essential part of a validated analytical method  The data generated for bioanalytical method establishment and the QCs should be documented and available for data audit and inspection 23/03/2020 Harrizul Rivai 50
  51. Documentation to submit  Documentation for submission to the Agency should include:  (1) summary information,  (2) method development and establishment,  (3) bioanalytical reports of the application of any methods to routine sample analysis, and  (4) other information applicable to method development and establishment and/or to routine sample analysis. 23/03/2020 Harrizul Rivai 51
  52. Thank you very much for your attention! 23/03/2020 Harrizul Rivai 52

Notas do Editor

  1. Penelitian klinis harus dilakukan sesuai dengan prinsip-prinsip Praktik Klinik yang Baik (Good Clinical Practice), dan untuk metode analisis dan penanganan data sampel harus sesuai dengan prinsip-prinsip Praktik Laboratorium yang Baik (Good Laboratory Practice).
Anúncio