SlideShare uma empresa Scribd logo
1 de 10
Baixar para ler offline
http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 1/10
Espermatogénesis en invertebrados (ortópteros).
Aplastados y secciones histológicas de testículo de ortóptero. Espermatogénesis.
Existe un proceso celular destinado a producir
células idénticas genéticamente: la mitosis. Por el contrario,
la mayoría de los organismos vivos utilizan parte de su vida
o tejidos especializados para producir células esencialmente
diferentes de las progenitoras en cuanto a las
combinaciones posibles de su material hereditario. Este
mecanismo celular está enclavado en un proceso especial de
división celular: la meiosis.
En organismos superiores la meiosis tiene lugar en
los órganos sexuales tanto masculinos como femeninos, dentro de un proceso general que se
denomina respectivamente espermatogénesis y ovogénesis. Tanto uno como otro no sólo
producen células diferentes genéticamente, sino que reducen el número de cromosomas de
las células a la mitad y las modifica para poder ser fecundadas o fecundar dependiendo del
sexo donde se realice.
ESPERMATOGÉNESIS
Ham, discípulo de Leuwenhoek, observa por primera vez en 1677 en el semen
humano la presencia de unos "animáculos" móviles que muchos científicos de la época
consideraron como parásitos o simbiontes. En 1780 Spallanzani comprueba que si del semen
eran eliminados estos cuerpos móviles, éste perdía su capacidad fertilizante. Pero fue en la
segunda mitad del siglo XIX cuando se concluyó que estos "animáculos" eran los gametos
masculinos, y se les denominó espermatozoides. De esta forma se estableció que los
espermatozoides se originaban en los testículos y que poseían núcleo y citoplasma: eran
células.
Desde este momento y hasta nuestros días la morfología de los espermatozoides y
de las células que les dan origen ha sido ampliamente estudiada. En una primera etapa de la
citología clásica, empleando cortes en parafina, no sólo se describen gran cantidad de
formas distintas de espermatozoides, sino que también se pone gran interés en el estudio
de los tejidos en los que se originan. Posteriormente, con el avance de la técnica y la
aparición del microscopio electrónico, se determina la ultraestructura de los
espermatozoides y de las células intermedias en su formación.
Figura 2. Reconstrucción fotográfica de una sección de un túbulo seminífero de saltamontes en el que se observa
la disposición secuencial de las células que cursan la espermatogénesis.
Figura 1. El señor y la señora de
Eyprepocnemis plorans.
Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados
http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 2/10
La introducción de nuevas técnicas de estudio como pueden ser las citoquímicas
para microscopía óptica y electrónica, la aplicación de microscopía de barrido, el empleo de
anticuerpos marcados a nivel morfológico y ultraestructural, la microscopía confocal o
metodologías puramente bioquímicas han ayudado a un mejor conocimiento del proceso de
formación de los gametos masculinos, la espermatogénesis.
Desde antiguo recibió gran atención el proceso de cómo se formaban estas células,
ya que a partir de una célula prácticamente indiferenciada, la espermatogonia, se produce
una complicada y a veces dramática serie de cambios morfofuncionales que desembocan en
la formación del espermatozoide: la espermatogénesis. Podríamos definir la
espermatogénesis como el conjunto de cambios que ocurren en una célula prácticamente
indiferenciada, espermatogonia, y que tienen como final la formación de una célula
altamente especializada, con un número “n” de cromosomas recombinados, una carga “c” de
ADN y que es capaz de fecundar: el espermatozoide.
Teniendo en cuenta los cambios que se producen en la espermatogonia, y por tanto
los nuevos tipos celulares y los procesos en los que participan, podemos dividir a la
espermatogénesis como proceso en las siguientes etapas:
a) Proliferación.
b) Crecimiento y meiosis: recombinación, división y reducción.
c) Espermiogénesis o histodiferenciación.
a) Proliferación. Este período comprende el desarrollo de las espermatogonias, las
cuales se dividen no sólo aumentando la población celular sino manteniendo la población
troncal existente. Las divisiones de población espermatogonial llegan en algunas especies
hasta ocho. Así, partiendo de una espermatogonia inicial, van surgiendo por divisiones
sucesivas grupos de ellas que, normalmente, se encuentran interconectadas por sus
citoplasmas. El número final de gonias presentes en un cisto, indicará por lo tanto las veces
que se han dividido a partir de la espermatogonia primordial. De esta forma un cisto con
doscientas cincuenta y seis gonias revela la existencia previa de ocho divisiones mitóticas.
En esta fase de divisiones rápidas y continuas es fácil observar el cariotipo de la especie.
b) Crecimiento y meiosis. La meiosis se caracteriza por presentar dos divisiones
sucesivas del material hereditario (División I y División II) precedidas por un único período
S (de síntesis de ADN). La profase de la primera división meiótica es extremadamente
larga pudiendo durar desde días (en machos) hasta años (generalmente en hembras). Para
su estudio, se ha dividido en base a la morfología del núcleo celular en varias etapas:
leptotene, cigotene, paquitene, diplotene y diacinesis.
PRIMERA DIVISIÓN MEIÓTICA INTERCINESIS SEGUNDA DIVISIÓN MEIÓTICA
PROFASE I: PROFASE II
- LEPTOTENE PROMETAFASE II
- CIGOTENE METAFASE II
- PAQUITENE ANAFASE II
- DIPLOTENE TELOFASE II
- DIACINESIS
PROMETAFASE I
METAFASE I
ANAFASE I
TELOFASE I
Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados
http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 3/10
Durante la prometafase los bivalentes experimentan movimientos de congresión
hasta alinearse finalmente en placa en la metafase. En la primera anafase meiótica los
cromosomas homólogos, que previamente se han recombinado, migran completos a polos
opuestos. Tras una interfase muy corta y a veces inexistente denominada intercinesis, se
efectúa la segunda división meiótica. Ésta es esencialmente igual que una división mitótica
convencional con la excepción de que cada célula solamente posee un complemento
cromosómico de la especie ya recombinado. El resultado final es la formación, por cada una
de las células que entró en la profase I, de cuatro células con “n” cromosomas y una carga
"c" de ADN: las espermátidas.
Figura 3. Espermatogénesis de Locusta migratoria en cortes de testículo teñidos con tricrómico de Masson (I). A.-
Detalle de un túbulo seminífero en el que se aprecia la estructura celular en cistos. B.- Espermatogonia. El
cromosoma sexual aparece marcado (X). C.- Espermatocito en división (telofase I) en el que se observa el huso de
microtúbulos (cabeza de flecha).
Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados
http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 4/10
Figura 4. Espermatogénesis de Locusta migratoria en cortes de testículo teñidos con tricrómico de Masson (II).
Espermátidas en distintos estados de maduración. Obsérvese la paulatina condensación de la cromatina y
modificación del núcleo y los adjuntos centriolares (cabezas de flecha). A.- Espermátidas tempranas, en las que
aún no se detecta el adjunto centriolar. La que se encuentra a la derecha es diploide, aberrante. B.- Espermátida
aberrante, poliploide, con dos adjuntos centriolares. C y D.-Espermátidas redondas y lanceoladas en las que se
observa el adjunto centriolar en la base de la cabeza (cabezas de flecha). Con esta técnica de tinción se aprecian
los flagelos (flechas).
c) Espermiogénesis. Se conoce con este nombre a toda la serie de cambios tanto
citoplásmicos como nucleares que sufren las espermátidas hasta convertirse en
espermatozoides. Estos cambios morfofuncionales son muy variables y dependen de la
especie estudiada. No obstante, y como rasgos generales, podemos decir que se centran en
Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados
http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 5/10
la compactación de la cromatina en el núcleo, la pérdida de casi la totalidad del citoplasma,
la génesis de una vesícula acrosómica y la adquisición de un aparato locomotor por parte de
la célula.
Figura 5. Espermatóforos de Locusta migratoria en aplastados teñidos con la técnica de Feulgen. A.- Campo claro,
donde únicamente se ven teñidos los núcleos. B.- Contraste de fase, que permite ver los flagelos de las
espermátidas (cabezas de flecha).
DESARROLLO DE LA PRÁCTICA
En esta práctica se utilizarán dos tipos diferentes de material de trabajo así como
dos metodologías completamente distintas. Por una parte se analizarán las diferentes fases
de la espermiogénesis en preparaciones obtenidas mediante la técnica de aplastado a partir
de testículos de ortópteros fijados en etanol y ácido acético en proporción 3:1. Por otra,
estudiaremos la organización de las células que cursan la espermatogénesis y el túbulo
seminífero en cortes de testículo de saltamontes fijado con Bouin e incluido en parafina.
1.- Aplastados de testículo de ortóptero teñidos con Feulgen.
Seleccionamos testículos de ortópteros fijados en etanol y ácido acético 3:1 al menos
con una semana de antelación y los colocamos en agua destilada para su hidratación durante
10 minutos. A partir de este momento conviene realizar todo el proceso en el mismo
recipiente, preferiblemente plástico y no vidrio. No utilizar ningún elemento metálico.
Hidrolizar los testículos en HCl 5N durante 30 min. Transcurrido este tiempo se
lavan abundantemente en agua destilada. Posteriormente se introducen en reactivo de
Schiff durante 30 minutos a temperatura ambiente. Este proceso es preferible realizarlo
Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados
http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 6/10
en oscuridad. Se lavan los testículos, que tendrán un color fucsia, en agua sulfurosa y
posteriormente en agua del grifo, donde se almacenarán hasta la confección de los
aplastados.
Separamos un par de túbulos seminíferos del testículo y los colocamos sobre un
portaobjetos. Sobre ellos se coloca inmediatamente una gota de ácido acético al 50% en
agua destilada y se deja un par de minutos (¡Cuidado, no dejar secar el material!).
Se coloca sobre el túbulo un cubreobjetos y utilizando la punta de un lápiz y con
presión muy suave se dispersa el material.
Con un trozo de papel de filtro se elimina el acético que ha rebosado por los laterales
del cubreobjetos y, con cuidado de no moverlo, se realiza el aplastado presionando
fuertemente con el dedo pulgar sobre una superficie completamente plana.
Observar los aplastados en el microscopio tratando de determinar las diferentes
etapas del proceso meiótico, así como las espermátidas en los diferentes estadíos de la
espermiogénesis.
2.- Secciones de testículo de ortóptero teñido con tricrómico de Masson.
El análisis de cortes de parafina supone la realización de tres procesos: la inclusión
del material en un medio sólido, el corte y desparafinado del mismo y la tinción de los
cortes (ver el anexo).
Las secciones de testículo se observarán en el microscopio determinando la
disposición de los túbulos seminíferos en el conjunto, así como las zonas apicales y basales
de los túbulos.
Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados
http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 7/10
Figura 6. Células del testículo del saltamontes Chorthippus jucundus teñidas con orceína lacto-propiónica. A.-
Núcleo de una espermatogonia en interfase. El cromosoma sexual ha sido señalado con una X. B.- Metafase
espermatogonial. C.- Núcleo prepaquiténico. Posiblemente corresponde a un núcleo en leptotene. D.- Paquitene
medio. E.- Paquitene tardío. F.- Diplotene. Se ha señalado la posición de los quiasmas (cabezas de flecha) en un
bivalente monoquiasmático (M7), en uno con dos quiasmas (M4) y en un tercero que presenta cuatro (L1).
Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados
http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 8/10
Figura 7. Espermatocitos de Chorthippus jucundus teñidos con orceína lacto-propiónica. A.- Diplotene
tardío-diacinesis. B.- Metafase-I. C.- Anafase-I. El cromosoma sexual X migra completo al polo superior de esta
célula. D.- Telofase-I. E.- Intercinesis/Profase-II. La célula de la parte superior de la fotografía posee el
cromosoma X, mientras que la de la parte inferior carece de él.
Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados
http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 9/10
Figura 8. Células del testículo de Chorthippus jucundus teñidas con orceína lacto-propiónica. A.- Metafase-II. Se
observa la disposición radial de los cromosomas. B.- Anafase-II. Las cromátidas están comenzando a separarse. C.-
Anafase-II. D.- Telofase-II. E.- Espermátidas tempranas. La situada en la parte superior de la fotografía posee el
cromosoma sexual (X), mientras que la de la parte inferior carece de él. F,G,H- Espermátidas en diferentes
estados de maduración: redondeada, lanceolada, alargada…
Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados
http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 10/10
Cuestiones.
1.- ¿Qué es una espermatogonia? ¿Dónde se localiza y qué dotación genética presenta?
¿Qué carga de ADN tiene?
2.- Realizar el dibujo de una espermatogonia de saltamontes e indicar cuál es la
característica morfológica que la diferencia del resto de células en un aplastado de
testículo de ortóptero en el que se ha teñido preferencialmente el núcleo. Dibuja una
espermatogonia en un corte de túbulo seminífero de ortóptero. ¿Cuál es su posición en el
túbulo?
3.- Dibujar los núcleos de espermátidas de saltamontes en distintas etapas de maduración
tal y como se observan en un aplastado de testículo teñido con la técnica de “Feulgen”.
Explica los cambios morfológicos que observas experimentan y cómo eres capaz de
determinar cuál es más madura y cuál menos.
4.- Dibujar y rotular un túbulo seminífero completo de saltamontes indicando las
diferencias entre los extremos proximal y distal.
5.- ¿Qué es un cisto? Dibujar uno y determinar en qué etapa se encuentran los
espermatocitos que lo integran. ¿Cómo has llegado a esa conclusión?
6.- A partir de un corte de testículo de saltamontes, dibujar un cisto en el que estén
presentes espermátidas tanto normales como aberrantes. ¿Por qué eres capaz de
determinar que no son normales?
7.- ¿Qué es un espermatóforo? Dibuja uno de saltamontes.

Mais conteúdo relacionado

Mais procurados

Microbiología Práctica #3 - Aislamiento de microorganismos por estría cruzada.
Microbiología Práctica #3 - Aislamiento de microorganismos por estría cruzada.Microbiología Práctica #3 - Aislamiento de microorganismos por estría cruzada.
Microbiología Práctica #3 - Aislamiento de microorganismos por estría cruzada.Kary Argeneau
 
Tinciones selectivas
Tinciones selectivasTinciones selectivas
Tinciones selectivasIPN
 
Tinción azul d metileno....
Tinción azul d metileno....Tinción azul d metileno....
Tinción azul d metileno....Lauren Surí
 
DETERMINACION DEL TIEMPO DE PROTROMBINA Y TROMBOPLASTINA.
DETERMINACION DEL TIEMPO DE PROTROMBINA Y TROMBOPLASTINA.DETERMINACION DEL TIEMPO DE PROTROMBINA Y TROMBOPLASTINA.
DETERMINACION DEL TIEMPO DE PROTROMBINA Y TROMBOPLASTINA.José Bustamante
 
Conocimientos básicos para la tinción de citología cérvico
Conocimientos  básicos  para  la tinción  de   citología cérvicoConocimientos  básicos  para  la tinción  de   citología cérvico
Conocimientos básicos para la tinción de citología cérvicoclaus12
 
Practica n 2 metodos de siembra y aislamiento
Practica n 2 metodos de siembra y aislamientoPractica n 2 metodos de siembra y aislamiento
Practica n 2 metodos de siembra y aislamientoAndres Gonzalez De Vivero
 
Ácido peryodico schiff (PAS)
Ácido peryodico schiff (PAS)Ácido peryodico schiff (PAS)
Ácido peryodico schiff (PAS)Liliana Agresott
 
Tema 2. Procesamiento citológico y tisular
Tema 2. Procesamiento citológico y tisularTema 2. Procesamiento citológico y tisular
Tema 2. Procesamiento citológico y tisularJOAQUINGARCIAMATEO
 
2.5.morfologia colonial
2.5.morfologia colonial2.5.morfologia colonial
2.5.morfologia colonialArianita Ayón
 
Técnicas citoquímicas de identificación leucocitaria
Técnicas citoquímicas de identificación leucocitariaTécnicas citoquímicas de identificación leucocitaria
Técnicas citoquímicas de identificación leucocitariaAleJandra Ceja Silva
 

Mais procurados (20)

Microbiología Práctica #3 - Aislamiento de microorganismos por estría cruzada.
Microbiología Práctica #3 - Aislamiento de microorganismos por estría cruzada.Microbiología Práctica #3 - Aislamiento de microorganismos por estría cruzada.
Microbiología Práctica #3 - Aislamiento de microorganismos por estría cruzada.
 
Coloración pap
Coloración papColoración pap
Coloración pap
 
Tecnicas de histoquimica
Tecnicas de histoquimicaTecnicas de histoquimica
Tecnicas de histoquimica
 
Tinciones selectivas
Tinciones selectivasTinciones selectivas
Tinciones selectivas
 
Tinción azul d metileno....
Tinción azul d metileno....Tinción azul d metileno....
Tinción azul d metileno....
 
Hongos
HongosHongos
Hongos
 
TINCIÓN GRAM
TINCIÓN GRAMTINCIÓN GRAM
TINCIÓN GRAM
 
Electroforesis capilar
Electroforesis capilarElectroforesis capilar
Electroforesis capilar
 
DETERMINACION DEL TIEMPO DE PROTROMBINA Y TROMBOPLASTINA.
DETERMINACION DEL TIEMPO DE PROTROMBINA Y TROMBOPLASTINA.DETERMINACION DEL TIEMPO DE PROTROMBINA Y TROMBOPLASTINA.
DETERMINACION DEL TIEMPO DE PROTROMBINA Y TROMBOPLASTINA.
 
Conocimientos básicos para la tinción de citología cérvico
Conocimientos  básicos  para  la tinción  de   citología cérvicoConocimientos  básicos  para  la tinción  de   citología cérvico
Conocimientos básicos para la tinción de citología cérvico
 
Electroforesis
ElectroforesisElectroforesis
Electroforesis
 
Informe electroforesis
Informe electroforesisInforme electroforesis
Informe electroforesis
 
Tinciones microbianas
Tinciones microbianasTinciones microbianas
Tinciones microbianas
 
Practica n 2 metodos de siembra y aislamiento
Practica n 2 metodos de siembra y aislamientoPractica n 2 metodos de siembra y aislamiento
Practica n 2 metodos de siembra y aislamiento
 
Ácido peryodico schiff (PAS)
Ácido peryodico schiff (PAS)Ácido peryodico schiff (PAS)
Ácido peryodico schiff (PAS)
 
Tema 2. Procesamiento citológico y tisular
Tema 2. Procesamiento citológico y tisularTema 2. Procesamiento citológico y tisular
Tema 2. Procesamiento citológico y tisular
 
La orina al microscopio
La orina al microscopioLa orina al microscopio
La orina al microscopio
 
Tecnica benedict
Tecnica benedictTecnica benedict
Tecnica benedict
 
2.5.morfologia colonial
2.5.morfologia colonial2.5.morfologia colonial
2.5.morfologia colonial
 
Técnicas citoquímicas de identificación leucocitaria
Técnicas citoquímicas de identificación leucocitariaTécnicas citoquímicas de identificación leucocitaria
Técnicas citoquímicas de identificación leucocitaria
 

Destaque

Citogenética cromosomas politénicos y chapulín
Citogenética cromosomas politénicos y chapulínCitogenética cromosomas politénicos y chapulín
Citogenética cromosomas politénicos y chapulínCiberGeneticaUNAM
 
Barroso. Hipertroffia muscular
Barroso. Hipertroffia muscularBarroso. Hipertroffia muscular
Barroso. Hipertroffia muscularCiberGeneticaUNAM
 
Trabajando con más de un gen color ojos drosophila
Trabajando con más de un gen color ojos drosophilaTrabajando con más de un gen color ojos drosophila
Trabajando con más de un gen color ojos drosophilaCiberGeneticaUNAM
 
The genetics eye color drosohila 15 pollock
The genetics eye color drosohila 15 pollockThe genetics eye color drosohila 15 pollock
The genetics eye color drosohila 15 pollockCiberGeneticaUNAM
 
Revista de la SECA no 1. Pág. 17-23. Las moscas de la fruta por Miguel Guerre...
Revista de la SECA no 1. Pág. 17-23. Las moscas de la fruta por Miguel Guerre...Revista de la SECA no 1. Pág. 17-23. Las moscas de la fruta por Miguel Guerre...
Revista de la SECA no 1. Pág. 17-23. Las moscas de la fruta por Miguel Guerre...CiberGeneticaUNAM
 
Eye color mutations chromatography drosophila
Eye color mutations chromatography drosophilaEye color mutations chromatography drosophila
Eye color mutations chromatography drosophilaCiberGeneticaUNAM
 
Aportaciones drosophila modelo y proyecto de clase
Aportaciones drosophila modelo y proyecto de claseAportaciones drosophila modelo y proyecto de clase
Aportaciones drosophila modelo y proyecto de claseCiberGeneticaUNAM
 
Moscas drosophilas
Moscas drosophilasMoscas drosophilas
Moscas drosophilasAlejhuve
 

Destaque (10)

Citogenética cromosomas politénicos y chapulín
Citogenética cromosomas politénicos y chapulínCitogenética cromosomas politénicos y chapulín
Citogenética cromosomas politénicos y chapulín
 
Pendientes grupo 5182
Pendientes grupo 5182Pendientes grupo 5182
Pendientes grupo 5182
 
Barroso. Hipertroffia muscular
Barroso. Hipertroffia muscularBarroso. Hipertroffia muscular
Barroso. Hipertroffia muscular
 
Trabajando con más de un gen color ojos drosophila
Trabajando con más de un gen color ojos drosophilaTrabajando con más de un gen color ojos drosophila
Trabajando con más de un gen color ojos drosophila
 
The genetics eye color drosohila 15 pollock
The genetics eye color drosohila 15 pollockThe genetics eye color drosohila 15 pollock
The genetics eye color drosohila 15 pollock
 
Revista de la SECA no 1. Pág. 17-23. Las moscas de la fruta por Miguel Guerre...
Revista de la SECA no 1. Pág. 17-23. Las moscas de la fruta por Miguel Guerre...Revista de la SECA no 1. Pág. 17-23. Las moscas de la fruta por Miguel Guerre...
Revista de la SECA no 1. Pág. 17-23. Las moscas de la fruta por Miguel Guerre...
 
Eye color mutations chromatography drosophila
Eye color mutations chromatography drosophilaEye color mutations chromatography drosophila
Eye color mutations chromatography drosophila
 
Aportaciones drosophila modelo y proyecto de clase
Aportaciones drosophila modelo y proyecto de claseAportaciones drosophila modelo y proyecto de clase
Aportaciones drosophila modelo y proyecto de clase
 
Moscas drosophilas
Moscas drosophilasMoscas drosophilas
Moscas drosophilas
 
30 vegetales con sus cromosomas
30 vegetales con sus cromosomas30 vegetales con sus cromosomas
30 vegetales con sus cromosomas
 

Semelhante a Citogenética chapulín Universidad Autónoma de Madrid

Semelhante a Citogenética chapulín Universidad Autónoma de Madrid (20)

Celula
CelulaCelula
Celula
 
Division Celular Imagenes
Division Celular  ImagenesDivision Celular  Imagenes
Division Celular Imagenes
 
Tipo de reproduccion
Tipo de reproduccionTipo de reproduccion
Tipo de reproduccion
 
Tipo de reproduccion
Tipo de reproduccionTipo de reproduccion
Tipo de reproduccion
 
Tipo de reproduccion
Tipo de reproduccionTipo de reproduccion
Tipo de reproduccion
 
Tipo de reproduccion
Tipo de reproduccionTipo de reproduccion
Tipo de reproduccion
 
Tipo de reproduccion
Tipo de reproduccionTipo de reproduccion
Tipo de reproduccion
 
Ciclo celular
Ciclo celularCiclo celular
Ciclo celular
 
Tipo de reproduccion
Tipo de reproduccionTipo de reproduccion
Tipo de reproduccion
 
División celular
División celularDivisión celular
División celular
 
Tipo de reproduccion
Tipo de reproduccionTipo de reproduccion
Tipo de reproduccion
 
Tipo de reproduccion
Tipo de reproduccionTipo de reproduccion
Tipo de reproduccion
 
Tipo de reproduccion
Tipo de reproduccionTipo de reproduccion
Tipo de reproduccion
 
PRACTICA N°12:CICLO CELULAR: DIVISIÓN CELULAR: LA MITOSIS
PRACTICA N°12:CICLO CELULAR: DIVISIÓN CELULAR: LA MITOSISPRACTICA N°12:CICLO CELULAR: DIVISIÓN CELULAR: LA MITOSIS
PRACTICA N°12:CICLO CELULAR: DIVISIÓN CELULAR: LA MITOSIS
 
MITOSIS
MITOSISMITOSIS
MITOSIS
 
Embriologia 1 2008
Embriologia 1 2008Embriologia 1 2008
Embriologia 1 2008
 
Embriologia 1 2008
Embriologia 1 2008Embriologia 1 2008
Embriologia 1 2008
 
Célula Eucarionte, Vegetal y Animal III: ADN, Ciclo Celular, Mitosis (BC09 - ...
Célula Eucarionte, Vegetal y Animal III: ADN, Ciclo Celular, Mitosis (BC09 - ...Célula Eucarionte, Vegetal y Animal III: ADN, Ciclo Celular, Mitosis (BC09 - ...
Célula Eucarionte, Vegetal y Animal III: ADN, Ciclo Celular, Mitosis (BC09 - ...
 
Biologia+Meio+Repr+Gene
Biologia+Meio+Repr+GeneBiologia+Meio+Repr+Gene
Biologia+Meio+Repr+Gene
 
Biologia+Meio+Repr+Gene
Biologia+Meio+Repr+GeneBiologia+Meio+Repr+Gene
Biologia+Meio+Repr+Gene
 

Mais de CiberGeneticaUNAM

Convocatoria CONCURSO GENÉTICA I 2021
Convocatoria CONCURSO GENÉTICA I 2021Convocatoria CONCURSO GENÉTICA I 2021
Convocatoria CONCURSO GENÉTICA I 2021CiberGeneticaUNAM
 
El nuevo horizonte del alzheimer
El nuevo horizonte del alzheimerEl nuevo horizonte del alzheimer
El nuevo horizonte del alzheimerCiberGeneticaUNAM
 
Presentación Intersemestral Genética 2020 Ciencias. UNAM.
Presentación Intersemestral Genética 2020 Ciencias. UNAM.Presentación Intersemestral Genética 2020 Ciencias. UNAM.
Presentación Intersemestral Genética 2020 Ciencias. UNAM.CiberGeneticaUNAM
 
TOXICIDAD Y RESISTENCIA A PESTICIDAS EN Drosophila melanogaster
TOXICIDAD Y RESISTENCIA A PESTICIDAS EN Drosophila melanogasterTOXICIDAD Y RESISTENCIA A PESTICIDAS EN Drosophila melanogaster
TOXICIDAD Y RESISTENCIA A PESTICIDAS EN Drosophila melanogasterCiberGeneticaUNAM
 
¿Quién es Antonio Lazcano Araujo?
¿Quién es Antonio Lazcano Araujo?¿Quién es Antonio Lazcano Araujo?
¿Quién es Antonio Lazcano Araujo?CiberGeneticaUNAM
 
Regulación de la expresióngénica en procariontes
Regulación de la expresióngénica en procariontesRegulación de la expresióngénica en procariontes
Regulación de la expresióngénica en procariontesCiberGeneticaUNAM
 
Conferencia frida-diaz-barriga-arceo
Conferencia frida-diaz-barriga-arceoConferencia frida-diaz-barriga-arceo
Conferencia frida-diaz-barriga-arceoCiberGeneticaUNAM
 
Presentacion genetica i_2017-1 (gpo 5347)
Presentacion genetica i_2017-1 (gpo 5347)Presentacion genetica i_2017-1 (gpo 5347)
Presentacion genetica i_2017-1 (gpo 5347)CiberGeneticaUNAM
 
Presentacion genetica i_américa_horacio
Presentacion genetica i_américa_horacioPresentacion genetica i_américa_horacio
Presentacion genetica i_américa_horacioCiberGeneticaUNAM
 
Olimpiada Metropolitana de Biología 2015
Olimpiada Metropolitana de Biología 2015Olimpiada Metropolitana de Biología 2015
Olimpiada Metropolitana de Biología 2015CiberGeneticaUNAM
 
Convocatoria de Especializaciones Facultad de Ciencias UNAM
Convocatoria de Especializaciones Facultad de Ciencias UNAMConvocatoria de Especializaciones Facultad de Ciencias UNAM
Convocatoria de Especializaciones Facultad de Ciencias UNAMCiberGeneticaUNAM
 
Especialización en Biología para el Bachillerato
Especialización en Biología para el BachilleratoEspecialización en Biología para el Bachillerato
Especialización en Biología para el BachilleratoCiberGeneticaUNAM
 
Ejercicio sobre el grupo sanguíneo ABO
Ejercicio sobre el grupo sanguíneo ABOEjercicio sobre el grupo sanguíneo ABO
Ejercicio sobre el grupo sanguíneo ABOCiberGeneticaUNAM
 
Gametas que puede formar un triple heterocitogo
Gametas que puede formar un triple heterocitogoGametas que puede formar un triple heterocitogo
Gametas que puede formar un triple heterocitogoCiberGeneticaUNAM
 
Modelo formación de gametas 5469
Modelo formación de gametas 5469Modelo formación de gametas 5469
Modelo formación de gametas 5469CiberGeneticaUNAM
 

Mais de CiberGeneticaUNAM (20)

Convocatoria CONCURSO GENÉTICA I 2021
Convocatoria CONCURSO GENÉTICA I 2021Convocatoria CONCURSO GENÉTICA I 2021
Convocatoria CONCURSO GENÉTICA I 2021
 
El nuevo horizonte del alzheimer
El nuevo horizonte del alzheimerEl nuevo horizonte del alzheimer
El nuevo horizonte del alzheimer
 
Genes y ambiente
Genes y ambienteGenes y ambiente
Genes y ambiente
 
Presentación Intersemestral Genética 2020 Ciencias. UNAM.
Presentación Intersemestral Genética 2020 Ciencias. UNAM.Presentación Intersemestral Genética 2020 Ciencias. UNAM.
Presentación Intersemestral Genética 2020 Ciencias. UNAM.
 
TOXICIDAD Y RESISTENCIA A PESTICIDAS EN Drosophila melanogaster
TOXICIDAD Y RESISTENCIA A PESTICIDAS EN Drosophila melanogasterTOXICIDAD Y RESISTENCIA A PESTICIDAS EN Drosophila melanogaster
TOXICIDAD Y RESISTENCIA A PESTICIDAS EN Drosophila melanogaster
 
Presentacion genetica 2017
Presentacion genetica 2017Presentacion genetica 2017
Presentacion genetica 2017
 
¿Quién es Antonio Lazcano Araujo?
¿Quién es Antonio Lazcano Araujo?¿Quién es Antonio Lazcano Araujo?
¿Quién es Antonio Lazcano Araujo?
 
Regulación de la expresióngénica en procariontes
Regulación de la expresióngénica en procariontesRegulación de la expresióngénica en procariontes
Regulación de la expresióngénica en procariontes
 
ALAG 2016
ALAG 2016ALAG 2016
ALAG 2016
 
Conferencia frida-diaz-barriga-arceo
Conferencia frida-diaz-barriga-arceoConferencia frida-diaz-barriga-arceo
Conferencia frida-diaz-barriga-arceo
 
Presentacion genetica i_2017-1 (gpo 5347)
Presentacion genetica i_2017-1 (gpo 5347)Presentacion genetica i_2017-1 (gpo 5347)
Presentacion genetica i_2017-1 (gpo 5347)
 
Milpa ritual imprescindible
Milpa ritual imprescindibleMilpa ritual imprescindible
Milpa ritual imprescindible
 
Presentacion genetica i_américa_horacio
Presentacion genetica i_américa_horacioPresentacion genetica i_américa_horacio
Presentacion genetica i_américa_horacio
 
Olimpiada Metropolitana de Biología 2015
Olimpiada Metropolitana de Biología 2015Olimpiada Metropolitana de Biología 2015
Olimpiada Metropolitana de Biología 2015
 
Especialidad presentación
Especialidad presentaciónEspecialidad presentación
Especialidad presentación
 
Convocatoria de Especializaciones Facultad de Ciencias UNAM
Convocatoria de Especializaciones Facultad de Ciencias UNAMConvocatoria de Especializaciones Facultad de Ciencias UNAM
Convocatoria de Especializaciones Facultad de Ciencias UNAM
 
Especialización en Biología para el Bachillerato
Especialización en Biología para el BachilleratoEspecialización en Biología para el Bachillerato
Especialización en Biología para el Bachillerato
 
Ejercicio sobre el grupo sanguíneo ABO
Ejercicio sobre el grupo sanguíneo ABOEjercicio sobre el grupo sanguíneo ABO
Ejercicio sobre el grupo sanguíneo ABO
 
Gametas que puede formar un triple heterocitogo
Gametas que puede formar un triple heterocitogoGametas que puede formar un triple heterocitogo
Gametas que puede formar un triple heterocitogo
 
Modelo formación de gametas 5469
Modelo formación de gametas 5469Modelo formación de gametas 5469
Modelo formación de gametas 5469
 

Último

MODELO DE INFORME DE INDAGACION CIENTIFICA .docx
MODELO DE INFORME DE INDAGACION CIENTIFICA .docxMODELO DE INFORME DE INDAGACION CIENTIFICA .docx
MODELO DE INFORME DE INDAGACION CIENTIFICA .docxRAMON EUSTAQUIO CARO BAYONA
 
Manejo del Dengue, generalidades, actualización marzo 2024 minsa
Manejo del Dengue, generalidades, actualización marzo 2024 minsaManejo del Dengue, generalidades, actualización marzo 2024 minsa
Manejo del Dengue, generalidades, actualización marzo 2024 minsaLuis Minaya
 
Mapa Mental de estrategias de articulación de las areas curriculares.pdf
Mapa Mental de estrategias de articulación de las areas curriculares.pdfMapa Mental de estrategias de articulación de las areas curriculares.pdf
Mapa Mental de estrategias de articulación de las areas curriculares.pdfvictorbeltuce
 
Fichas de matemática DE PRIMERO DE SECUNDARIA.pdf
Fichas de matemática DE PRIMERO DE SECUNDARIA.pdfFichas de matemática DE PRIMERO DE SECUNDARIA.pdf
Fichas de matemática DE PRIMERO DE SECUNDARIA.pdfssuser50d1252
 
Uses of simple past and time expressions
Uses of simple past and time expressionsUses of simple past and time expressions
Uses of simple past and time expressionsConsueloSantana3
 
Estas son las escuelas y colegios que tendrán modalidad no presencial este lu...
Estas son las escuelas y colegios que tendrán modalidad no presencial este lu...Estas son las escuelas y colegios que tendrán modalidad no presencial este lu...
Estas son las escuelas y colegios que tendrán modalidad no presencial este lu...fcastellanos3
 
libro para colorear de Peppa pig, ideal para educación inicial
libro para colorear de Peppa pig, ideal para educación iniciallibro para colorear de Peppa pig, ideal para educación inicial
libro para colorear de Peppa pig, ideal para educación inicialLorenaSanchez350426
 
PROGRAMACION ANUAL DE MATEMATICA 2024.docx
PROGRAMACION ANUAL DE MATEMATICA 2024.docxPROGRAMACION ANUAL DE MATEMATICA 2024.docx
PROGRAMACION ANUAL DE MATEMATICA 2024.docxEribertoPerezRamirez
 
Estrategias de enseñanza - aprendizaje. Seminario de Tecnologia..pptx.pdf
Estrategias de enseñanza - aprendizaje. Seminario de Tecnologia..pptx.pdfEstrategias de enseñanza - aprendizaje. Seminario de Tecnologia..pptx.pdf
Estrategias de enseñanza - aprendizaje. Seminario de Tecnologia..pptx.pdfAlfredoRamirez953210
 
Fichas de Matemática DE SEGUNDO DE SECUNDARIA.pdf
Fichas de Matemática DE SEGUNDO DE SECUNDARIA.pdfFichas de Matemática DE SEGUNDO DE SECUNDARIA.pdf
Fichas de Matemática DE SEGUNDO DE SECUNDARIA.pdfssuser50d1252
 
SIMULACROS Y SIMULACIONES DE SISMO 2024.docx
SIMULACROS Y SIMULACIONES DE SISMO 2024.docxSIMULACROS Y SIMULACIONES DE SISMO 2024.docx
SIMULACROS Y SIMULACIONES DE SISMO 2024.docxLudy Ventocilla Napanga
 
4º SOY LECTOR PART2- MD EDUCATIVO.p df PARTE
4º SOY LECTOR PART2- MD  EDUCATIVO.p df PARTE4º SOY LECTOR PART2- MD  EDUCATIVO.p df PARTE
4º SOY LECTOR PART2- MD EDUCATIVO.p df PARTESaraNolasco4
 
Técnicas de grabado y estampación : procesos y materiales
Técnicas de grabado y estampación : procesos y materialesTécnicas de grabado y estampación : procesos y materiales
Técnicas de grabado y estampación : procesos y materialesRaquel Martín Contreras
 
cuadernillo de lectoescritura para niños de básica
cuadernillo de lectoescritura para niños de básicacuadernillo de lectoescritura para niños de básica
cuadernillo de lectoescritura para niños de básicaGianninaValeskaContr
 
Secuencia didáctica.DOÑA CLEMENTINA.2024.docx
Secuencia didáctica.DOÑA CLEMENTINA.2024.docxSecuencia didáctica.DOÑA CLEMENTINA.2024.docx
Secuencia didáctica.DOÑA CLEMENTINA.2024.docxNataliaGonzalez619348
 

Último (20)

MODELO DE INFORME DE INDAGACION CIENTIFICA .docx
MODELO DE INFORME DE INDAGACION CIENTIFICA .docxMODELO DE INFORME DE INDAGACION CIENTIFICA .docx
MODELO DE INFORME DE INDAGACION CIENTIFICA .docx
 
Manejo del Dengue, generalidades, actualización marzo 2024 minsa
Manejo del Dengue, generalidades, actualización marzo 2024 minsaManejo del Dengue, generalidades, actualización marzo 2024 minsa
Manejo del Dengue, generalidades, actualización marzo 2024 minsa
 
Mapa Mental de estrategias de articulación de las areas curriculares.pdf
Mapa Mental de estrategias de articulación de las areas curriculares.pdfMapa Mental de estrategias de articulación de las areas curriculares.pdf
Mapa Mental de estrategias de articulación de las areas curriculares.pdf
 
Fichas de matemática DE PRIMERO DE SECUNDARIA.pdf
Fichas de matemática DE PRIMERO DE SECUNDARIA.pdfFichas de matemática DE PRIMERO DE SECUNDARIA.pdf
Fichas de matemática DE PRIMERO DE SECUNDARIA.pdf
 
Uses of simple past and time expressions
Uses of simple past and time expressionsUses of simple past and time expressions
Uses of simple past and time expressions
 
recursos naturales america cuarto basico
recursos naturales america cuarto basicorecursos naturales america cuarto basico
recursos naturales america cuarto basico
 
Estas son las escuelas y colegios que tendrán modalidad no presencial este lu...
Estas son las escuelas y colegios que tendrán modalidad no presencial este lu...Estas son las escuelas y colegios que tendrán modalidad no presencial este lu...
Estas son las escuelas y colegios que tendrán modalidad no presencial este lu...
 
libro para colorear de Peppa pig, ideal para educación inicial
libro para colorear de Peppa pig, ideal para educación iniciallibro para colorear de Peppa pig, ideal para educación inicial
libro para colorear de Peppa pig, ideal para educación inicial
 
PROGRAMACION ANUAL DE MATEMATICA 2024.docx
PROGRAMACION ANUAL DE MATEMATICA 2024.docxPROGRAMACION ANUAL DE MATEMATICA 2024.docx
PROGRAMACION ANUAL DE MATEMATICA 2024.docx
 
Estrategias de enseñanza - aprendizaje. Seminario de Tecnologia..pptx.pdf
Estrategias de enseñanza - aprendizaje. Seminario de Tecnologia..pptx.pdfEstrategias de enseñanza - aprendizaje. Seminario de Tecnologia..pptx.pdf
Estrategias de enseñanza - aprendizaje. Seminario de Tecnologia..pptx.pdf
 
Fichas de Matemática DE SEGUNDO DE SECUNDARIA.pdf
Fichas de Matemática DE SEGUNDO DE SECUNDARIA.pdfFichas de Matemática DE SEGUNDO DE SECUNDARIA.pdf
Fichas de Matemática DE SEGUNDO DE SECUNDARIA.pdf
 
TL/CNL – 2.ª FASE .
TL/CNL – 2.ª FASE                       .TL/CNL – 2.ª FASE                       .
TL/CNL – 2.ª FASE .
 
VISITA À PROTEÇÃO CIVIL _
VISITA À PROTEÇÃO CIVIL                  _VISITA À PROTEÇÃO CIVIL                  _
VISITA À PROTEÇÃO CIVIL _
 
PPTX: La luz brilla en la oscuridad.pptx
PPTX: La luz brilla en la oscuridad.pptxPPTX: La luz brilla en la oscuridad.pptx
PPTX: La luz brilla en la oscuridad.pptx
 
SIMULACROS Y SIMULACIONES DE SISMO 2024.docx
SIMULACROS Y SIMULACIONES DE SISMO 2024.docxSIMULACROS Y SIMULACIONES DE SISMO 2024.docx
SIMULACROS Y SIMULACIONES DE SISMO 2024.docx
 
Sesión La luz brilla en la oscuridad.pdf
Sesión  La luz brilla en la oscuridad.pdfSesión  La luz brilla en la oscuridad.pdf
Sesión La luz brilla en la oscuridad.pdf
 
4º SOY LECTOR PART2- MD EDUCATIVO.p df PARTE
4º SOY LECTOR PART2- MD  EDUCATIVO.p df PARTE4º SOY LECTOR PART2- MD  EDUCATIVO.p df PARTE
4º SOY LECTOR PART2- MD EDUCATIVO.p df PARTE
 
Técnicas de grabado y estampación : procesos y materiales
Técnicas de grabado y estampación : procesos y materialesTécnicas de grabado y estampación : procesos y materiales
Técnicas de grabado y estampación : procesos y materiales
 
cuadernillo de lectoescritura para niños de básica
cuadernillo de lectoescritura para niños de básicacuadernillo de lectoescritura para niños de básica
cuadernillo de lectoescritura para niños de básica
 
Secuencia didáctica.DOÑA CLEMENTINA.2024.docx
Secuencia didáctica.DOÑA CLEMENTINA.2024.docxSecuencia didáctica.DOÑA CLEMENTINA.2024.docx
Secuencia didáctica.DOÑA CLEMENTINA.2024.docx
 

Citogenética chapulín Universidad Autónoma de Madrid

  • 1. http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 1/10 Espermatogénesis en invertebrados (ortópteros). Aplastados y secciones histológicas de testículo de ortóptero. Espermatogénesis. Existe un proceso celular destinado a producir células idénticas genéticamente: la mitosis. Por el contrario, la mayoría de los organismos vivos utilizan parte de su vida o tejidos especializados para producir células esencialmente diferentes de las progenitoras en cuanto a las combinaciones posibles de su material hereditario. Este mecanismo celular está enclavado en un proceso especial de división celular: la meiosis. En organismos superiores la meiosis tiene lugar en los órganos sexuales tanto masculinos como femeninos, dentro de un proceso general que se denomina respectivamente espermatogénesis y ovogénesis. Tanto uno como otro no sólo producen células diferentes genéticamente, sino que reducen el número de cromosomas de las células a la mitad y las modifica para poder ser fecundadas o fecundar dependiendo del sexo donde se realice. ESPERMATOGÉNESIS Ham, discípulo de Leuwenhoek, observa por primera vez en 1677 en el semen humano la presencia de unos "animáculos" móviles que muchos científicos de la época consideraron como parásitos o simbiontes. En 1780 Spallanzani comprueba que si del semen eran eliminados estos cuerpos móviles, éste perdía su capacidad fertilizante. Pero fue en la segunda mitad del siglo XIX cuando se concluyó que estos "animáculos" eran los gametos masculinos, y se les denominó espermatozoides. De esta forma se estableció que los espermatozoides se originaban en los testículos y que poseían núcleo y citoplasma: eran células. Desde este momento y hasta nuestros días la morfología de los espermatozoides y de las células que les dan origen ha sido ampliamente estudiada. En una primera etapa de la citología clásica, empleando cortes en parafina, no sólo se describen gran cantidad de formas distintas de espermatozoides, sino que también se pone gran interés en el estudio de los tejidos en los que se originan. Posteriormente, con el avance de la técnica y la aparición del microscopio electrónico, se determina la ultraestructura de los espermatozoides y de las células intermedias en su formación. Figura 2. Reconstrucción fotográfica de una sección de un túbulo seminífero de saltamontes en el que se observa la disposición secuencial de las células que cursan la espermatogénesis. Figura 1. El señor y la señora de Eyprepocnemis plorans.
  • 2. Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 2/10 La introducción de nuevas técnicas de estudio como pueden ser las citoquímicas para microscopía óptica y electrónica, la aplicación de microscopía de barrido, el empleo de anticuerpos marcados a nivel morfológico y ultraestructural, la microscopía confocal o metodologías puramente bioquímicas han ayudado a un mejor conocimiento del proceso de formación de los gametos masculinos, la espermatogénesis. Desde antiguo recibió gran atención el proceso de cómo se formaban estas células, ya que a partir de una célula prácticamente indiferenciada, la espermatogonia, se produce una complicada y a veces dramática serie de cambios morfofuncionales que desembocan en la formación del espermatozoide: la espermatogénesis. Podríamos definir la espermatogénesis como el conjunto de cambios que ocurren en una célula prácticamente indiferenciada, espermatogonia, y que tienen como final la formación de una célula altamente especializada, con un número “n” de cromosomas recombinados, una carga “c” de ADN y que es capaz de fecundar: el espermatozoide. Teniendo en cuenta los cambios que se producen en la espermatogonia, y por tanto los nuevos tipos celulares y los procesos en los que participan, podemos dividir a la espermatogénesis como proceso en las siguientes etapas: a) Proliferación. b) Crecimiento y meiosis: recombinación, división y reducción. c) Espermiogénesis o histodiferenciación. a) Proliferación. Este período comprende el desarrollo de las espermatogonias, las cuales se dividen no sólo aumentando la población celular sino manteniendo la población troncal existente. Las divisiones de población espermatogonial llegan en algunas especies hasta ocho. Así, partiendo de una espermatogonia inicial, van surgiendo por divisiones sucesivas grupos de ellas que, normalmente, se encuentran interconectadas por sus citoplasmas. El número final de gonias presentes en un cisto, indicará por lo tanto las veces que se han dividido a partir de la espermatogonia primordial. De esta forma un cisto con doscientas cincuenta y seis gonias revela la existencia previa de ocho divisiones mitóticas. En esta fase de divisiones rápidas y continuas es fácil observar el cariotipo de la especie. b) Crecimiento y meiosis. La meiosis se caracteriza por presentar dos divisiones sucesivas del material hereditario (División I y División II) precedidas por un único período S (de síntesis de ADN). La profase de la primera división meiótica es extremadamente larga pudiendo durar desde días (en machos) hasta años (generalmente en hembras). Para su estudio, se ha dividido en base a la morfología del núcleo celular en varias etapas: leptotene, cigotene, paquitene, diplotene y diacinesis. PRIMERA DIVISIÓN MEIÓTICA INTERCINESIS SEGUNDA DIVISIÓN MEIÓTICA PROFASE I: PROFASE II - LEPTOTENE PROMETAFASE II - CIGOTENE METAFASE II - PAQUITENE ANAFASE II - DIPLOTENE TELOFASE II - DIACINESIS PROMETAFASE I METAFASE I ANAFASE I TELOFASE I
  • 3. Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 3/10 Durante la prometafase los bivalentes experimentan movimientos de congresión hasta alinearse finalmente en placa en la metafase. En la primera anafase meiótica los cromosomas homólogos, que previamente se han recombinado, migran completos a polos opuestos. Tras una interfase muy corta y a veces inexistente denominada intercinesis, se efectúa la segunda división meiótica. Ésta es esencialmente igual que una división mitótica convencional con la excepción de que cada célula solamente posee un complemento cromosómico de la especie ya recombinado. El resultado final es la formación, por cada una de las células que entró en la profase I, de cuatro células con “n” cromosomas y una carga "c" de ADN: las espermátidas. Figura 3. Espermatogénesis de Locusta migratoria en cortes de testículo teñidos con tricrómico de Masson (I). A.- Detalle de un túbulo seminífero en el que se aprecia la estructura celular en cistos. B.- Espermatogonia. El cromosoma sexual aparece marcado (X). C.- Espermatocito en división (telofase I) en el que se observa el huso de microtúbulos (cabeza de flecha).
  • 4. Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 4/10 Figura 4. Espermatogénesis de Locusta migratoria en cortes de testículo teñidos con tricrómico de Masson (II). Espermátidas en distintos estados de maduración. Obsérvese la paulatina condensación de la cromatina y modificación del núcleo y los adjuntos centriolares (cabezas de flecha). A.- Espermátidas tempranas, en las que aún no se detecta el adjunto centriolar. La que se encuentra a la derecha es diploide, aberrante. B.- Espermátida aberrante, poliploide, con dos adjuntos centriolares. C y D.-Espermátidas redondas y lanceoladas en las que se observa el adjunto centriolar en la base de la cabeza (cabezas de flecha). Con esta técnica de tinción se aprecian los flagelos (flechas). c) Espermiogénesis. Se conoce con este nombre a toda la serie de cambios tanto citoplásmicos como nucleares que sufren las espermátidas hasta convertirse en espermatozoides. Estos cambios morfofuncionales son muy variables y dependen de la especie estudiada. No obstante, y como rasgos generales, podemos decir que se centran en
  • 5. Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 5/10 la compactación de la cromatina en el núcleo, la pérdida de casi la totalidad del citoplasma, la génesis de una vesícula acrosómica y la adquisición de un aparato locomotor por parte de la célula. Figura 5. Espermatóforos de Locusta migratoria en aplastados teñidos con la técnica de Feulgen. A.- Campo claro, donde únicamente se ven teñidos los núcleos. B.- Contraste de fase, que permite ver los flagelos de las espermátidas (cabezas de flecha). DESARROLLO DE LA PRÁCTICA En esta práctica se utilizarán dos tipos diferentes de material de trabajo así como dos metodologías completamente distintas. Por una parte se analizarán las diferentes fases de la espermiogénesis en preparaciones obtenidas mediante la técnica de aplastado a partir de testículos de ortópteros fijados en etanol y ácido acético en proporción 3:1. Por otra, estudiaremos la organización de las células que cursan la espermatogénesis y el túbulo seminífero en cortes de testículo de saltamontes fijado con Bouin e incluido en parafina. 1.- Aplastados de testículo de ortóptero teñidos con Feulgen. Seleccionamos testículos de ortópteros fijados en etanol y ácido acético 3:1 al menos con una semana de antelación y los colocamos en agua destilada para su hidratación durante 10 minutos. A partir de este momento conviene realizar todo el proceso en el mismo recipiente, preferiblemente plástico y no vidrio. No utilizar ningún elemento metálico. Hidrolizar los testículos en HCl 5N durante 30 min. Transcurrido este tiempo se lavan abundantemente en agua destilada. Posteriormente se introducen en reactivo de Schiff durante 30 minutos a temperatura ambiente. Este proceso es preferible realizarlo
  • 6. Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 6/10 en oscuridad. Se lavan los testículos, que tendrán un color fucsia, en agua sulfurosa y posteriormente en agua del grifo, donde se almacenarán hasta la confección de los aplastados. Separamos un par de túbulos seminíferos del testículo y los colocamos sobre un portaobjetos. Sobre ellos se coloca inmediatamente una gota de ácido acético al 50% en agua destilada y se deja un par de minutos (¡Cuidado, no dejar secar el material!). Se coloca sobre el túbulo un cubreobjetos y utilizando la punta de un lápiz y con presión muy suave se dispersa el material. Con un trozo de papel de filtro se elimina el acético que ha rebosado por los laterales del cubreobjetos y, con cuidado de no moverlo, se realiza el aplastado presionando fuertemente con el dedo pulgar sobre una superficie completamente plana. Observar los aplastados en el microscopio tratando de determinar las diferentes etapas del proceso meiótico, así como las espermátidas en los diferentes estadíos de la espermiogénesis. 2.- Secciones de testículo de ortóptero teñido con tricrómico de Masson. El análisis de cortes de parafina supone la realización de tres procesos: la inclusión del material en un medio sólido, el corte y desparafinado del mismo y la tinción de los cortes (ver el anexo). Las secciones de testículo se observarán en el microscopio determinando la disposición de los túbulos seminíferos en el conjunto, así como las zonas apicales y basales de los túbulos.
  • 7. Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 7/10 Figura 6. Células del testículo del saltamontes Chorthippus jucundus teñidas con orceína lacto-propiónica. A.- Núcleo de una espermatogonia en interfase. El cromosoma sexual ha sido señalado con una X. B.- Metafase espermatogonial. C.- Núcleo prepaquiténico. Posiblemente corresponde a un núcleo en leptotene. D.- Paquitene medio. E.- Paquitene tardío. F.- Diplotene. Se ha señalado la posición de los quiasmas (cabezas de flecha) en un bivalente monoquiasmático (M7), en uno con dos quiasmas (M4) y en un tercero que presenta cuatro (L1).
  • 8. Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 8/10 Figura 7. Espermatocitos de Chorthippus jucundus teñidos con orceína lacto-propiónica. A.- Diplotene tardío-diacinesis. B.- Metafase-I. C.- Anafase-I. El cromosoma sexual X migra completo al polo superior de esta célula. D.- Telofase-I. E.- Intercinesis/Profase-II. La célula de la parte superior de la fotografía posee el cromosoma X, mientras que la de la parte inferior carece de él.
  • 9. Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 9/10 Figura 8. Células del testículo de Chorthippus jucundus teñidas con orceína lacto-propiónica. A.- Metafase-II. Se observa la disposición radial de los cromosomas. B.- Anafase-II. Las cromátidas están comenzando a separarse. C.- Anafase-II. D.- Telofase-II. E.- Espermátidas tempranas. La situada en la parte superior de la fotografía posee el cromosoma sexual (X), mientras que la de la parte inferior carece de él. F,G,H- Espermátidas en diferentes estados de maduración: redondeada, lanceolada, alargada…
  • 10. Práctica 1. Espermatogénesis en invertebrados http://www.uam.es/departamentos/ciencias/biologia/citologia/practica1.htm 10/10 Cuestiones. 1.- ¿Qué es una espermatogonia? ¿Dónde se localiza y qué dotación genética presenta? ¿Qué carga de ADN tiene? 2.- Realizar el dibujo de una espermatogonia de saltamontes e indicar cuál es la característica morfológica que la diferencia del resto de células en un aplastado de testículo de ortóptero en el que se ha teñido preferencialmente el núcleo. Dibuja una espermatogonia en un corte de túbulo seminífero de ortóptero. ¿Cuál es su posición en el túbulo? 3.- Dibujar los núcleos de espermátidas de saltamontes en distintas etapas de maduración tal y como se observan en un aplastado de testículo teñido con la técnica de “Feulgen”. Explica los cambios morfológicos que observas experimentan y cómo eres capaz de determinar cuál es más madura y cuál menos. 4.- Dibujar y rotular un túbulo seminífero completo de saltamontes indicando las diferencias entre los extremos proximal y distal. 5.- ¿Qué es un cisto? Dibujar uno y determinar en qué etapa se encuentran los espermatocitos que lo integran. ¿Cómo has llegado a esa conclusión? 6.- A partir de un corte de testículo de saltamontes, dibujar un cisto en el que estén presentes espermátidas tanto normales como aberrantes. ¿Por qué eres capaz de determinar que no son normales? 7.- ¿Qué es un espermatóforo? Dibuja uno de saltamontes.