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2.1 estreptococcos y enterococcus

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CLASIFICACION DE LOS GENEROS ESTREPTOCOCCOS Y ENTEROCOCCUS

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2.1 estreptococcos y enterococcus

  1. 1. Clasificación Propiedades serológicas  Grupos de Lancefield A-V Patrones de hemólisis  Incompleta (α)  Completa (β)  Nula (γ) Propiedades bioquímicas
  2. 2. Clasificación de patógenos Clasificación serológica Microorganismo Patrones de hemólisis A S. pyogenes β B S. agalactiae β C S. anginosus, S. equisimilis β o no hemólisis D S. bovis, Enterococcus spp. α,γ, β F, G S. anginosus β -- S. pneumoniae α
  3. 3. Streptococcus  Cocos Gram positivos  Aerobios facultativos, algunos capnofílicos  Catalasa negativos  No móviles  No tienen esporas
  4. 4. Streptococcus  Agrupamiento en cadena en medios líquidos  Crecimiento y la hemólisis se favorecen con 10% de CO2 a 35ºC  Los cultivos “viejos” pueden ser Gram (-)
  5. 5. Manifestaciones Clínicas  Streptococcus pyogenes: faringitis, amigdalitis, escarlatina, impétigo, secuelas no supurativas: fiebre reumática y glomerulonefritis  Streptococcus agalactiae: meningitis en neonatos  Streptococcus pneumoniae: principal causa de neumonía, sinusitis, meningitis y otitis media.
  6. 6. Enterococcus Cocos Gram positivos Catalasa negativos Aerobios facultativos Crecen en CTS NaCl 6,5% Algunos móviles
  7. 7. Enterococcus  Agrupamiento en pares o cadenas  Hidrolizan esculina en presencia de sales biliares  Capaces de crecer a pH 9,6  Temperatura oscila 10°C - 45ºC
  8. 8. Enterococcus  Enterococcus faecalis: 80 a 90% de aislamientos  Enterococccus faecium: mayor incidencia como agente nosocomial y se han detectado cepas multirresistentes a antimicrobianos de uso común contra G+
  9. 9. Manifestaciones clínicas  Endocarditis  Infección de tracto urinario  Mediastinitis: infección de herida postoperatoria a nivel del mediastino
  10. 10. Muestras clínicas        Hisopados faríngeos Aspirado pleural Sangre LCR Exudado bronquial Muestra de oído medio Lesiones de piel
  11. 11. Pruebas de identificación           Muestra Aislamiento y tinción de Gram Catalasa Hemólisis Resistencia a bacitracina Resistencia al optoquín Resistencia a SXT Factor CAMP Bilis esculina Crecimiento en CTS 6.5% NaCl
  12. 12. Tinción de Gram Streptococcus Enterococcus
  13. 13. Hemólisis  En medios nutritivos enriquecidos con sangre o suero.     Patrón de hemólisis Alfa hemólisis (parcial) H2O2 Beta hemólisis (completa) Estreptolisinas O y S Gamma hemólisis
  14. 14. Catalasa  Para diferenciar Streptococcus y Enterococcus de Staphylococcus y Micrococcus
  15. 15. Resistencia a antibióticos  Se realiza en agar sangre  Bacitracina: cualquier halo permite considerar a la bacteria como Streptococcus pyogenes  Optoquín: halo de inhibición de 14mm o más es presuntivo de Streptococcus pneumoniae.  Trimetropín sulfa: Sensibles grupo C, F y G.
  16. 16. Prueba de CAMP  Streptoccocus β-hemolíticos S. agalactiae (grupo B) Positiva
  17. 17. Prueba de Hidrólisis de Esculina  Agar Bilis-Esculina  Identificación presuntiva de grupo D y Enterococcus  Hidrólisis de esculina: libera glucosa y esculetina  Esculetina en presencia de Fe3+ forma complejo coloración negra cuando la prueba es positiva
  18. 18. Crecimiento en 6.5% NaCl  Diferenciación de Streptococcus grupo D con respecto a Enterococcus:   Enterococcus (+) Streptococcus grupo D (-)
  19. 19. Esquema de clasificación Cocos G+ Catalasa Streptococcus Enterococcus + Staphylococcus Hemólisis β α γ Bacitracina Optoquín Bilis esculina S Grupo A (S. pyogenes) R CAMP + Grupo B (S. agalactiae) S S.pneumoniae Bilis esculina + 6.5%NaCl + Enterococcus spp. Streptococcus β No A, B o D Grupo D R Bilis esculina + 6.5%NaCl + Enterococcus spp. Grupo Viridans Grupo D + 6.5%NaCl + Enterococcus spp. Streptococcus No hemolíticos Grupo D
  20. 20.  Paciente femenino 72 años Mieloma múltiple Varias neumonías  24/04/09    14 años Bolo de Dexametasona
  21. 21. 04/05/09 Ingresa Síntomas y signos Tos  Sensación febril Expectoración Adinamia 38°C Murmullo vesicular asimétrico Crepitaciones : mayor en pulmón derecho Sibilancias
  22. 22. Infiltrado Paracardíaco derecho NEUMONÍA Cefotaxima y Levofloxacina
  23. 23. Hemograma Parámetro Resultado Valores normales Leucocitos 1500 cel/mm3 4.000 / 10.000 Neutrófilos 40% 40 – 70 Linfocitos 20% 20 – 40 Monocitos 4% 2 – 10 Plaquetas 69 000 cel/mm3 150.000 – 400.000 Hemoglobina 8.7 g/dL 14 – 18 Hematocrito 27% 41 – 51 Bandas 24% 5 – 15
  24. 24. Química Parámetro Resultado Valores normales Creatinina 2,4 mg/dL 0,7 – 1,5 Nitrógeno ureico 53 mg/dL 20 – 40 Na 127 mEq/L 135 – 145 K 4.5 mEq/L 3,5 – 5,0 Cl 104 mEq/L 100 – 106 Ca 7.9 mg/dL 8,5 – 10,5
  25. 25. Gases Parámetro Resultado Valores normales pH 7.43 7.35 - 7.45 PO2 49 mmHg 75 - 100 PCO2 33 mmHg 35 - 45 Saturación O2 79% 94 - 100 Bicarbonato 21 - 26 21 mEq/litro
  26. 26. Identificación ANÁLISIS RESULTADO Antibioterapia Sí recibe Muestra clínica Sangre Tipo examen Hemocultivo Fecha recepción 04/05/09 Fecha finalización 06/05/09
  27. 27. Identificación
  28. 28. Identificación  VITEK 2 Y PSA Aislamiento: Streptococcus pneumoniae Antibiótico Resultado Bencilpenicilina S Cefotaxima (Meningitis) S Cefotaxima (No Meningitis) S Ceftriaxona (Meningitis) S Ceftriaxona (No Meningitis) S Cloranfenicol S Eritromicina R Levofloxacino S Linezoid S Moxifloxacino S Ofloxacino S Tetraciclina S Trimetoprima/Sulfametoxazol R Vancomicina S
  29. 29. Esputo o aspirado bronquial
  30. 30. Al obtener crecimiento colonial realizar pruebas como: Catalasa Pruebas especiales como: Sensibilidad al Optoquín Sensibilidad a la Bacitracina
  31. 31. Si no hacemos previamente un gram, debemos montar en los siguientes medios: Agar Sangre Agar Chocolate Mac Conkey Agar Manitol Sal*** ***Importante correlacionar con la clínica e historia del paciente. (Staphylococcus aureus y algunos del grupo viridans)
  32. 32. Procedemos a montar la respectiva tarjeta para el VITEK
  33. 33.   Descripción de la muestra. Celularidad >10 Leucos Gram Cultivo Diferencial. BacT-Alert 3D

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