O documento descreve o agente causador da difilobotriase, Diphyllobothrium latum. O ciclo de vida do parasita envolve crustáceos e peixes como hospedeiros intermediários e humanos como hospedeiros definitivos. A infecção pode causar sintomas como desconforto abdominal, náuseas e anemia ou ser assintomática. O diagnóstico é feito por exame de fezes e o tratamento envolve medicamentos como praziquantel.

1. Faculdade de Ciências Biomédicas do Espirito
Santo
Diphyllobothrium latum e
Difilobotríase
Componentes: Bruna Moara
Jéssica Viegas
Jéssica P. Marques
Juliana Araújo
Renan Valiati
Renato Tadeu Padilha

2. Introdução
Agente Etiológico
 Reino: Animalia
 Filo: Platyhelminthes
 Classe: Cestodas
 Ordem: Cyclophyllidea
 Família: Taeniidae
 Gênero: Dyphyllobothrium Figura 1: Verme Adulto
Fonte: Centro de Vigilância Epidemiológica (CVE)
 Espécie: Diphyllobothrium latum

3. Introdução
Heteroxênico
 Hospedeiros intermediários:
 Pequenos crustáceos (copépodes, dos Gêneros Cyclops e
Diaptomus);
 Peixes de água doce.
 Hospedeiros definitivo:
 Homem, cão, gato, onça, urso.
Figura 2: Copépode Cyclops
Fonte: CDC

4. Formas Evolutivas
 Pequenos crustáceos
 Embrião – Coracídeo
 Larva do primeiro estágio – Procercóide
 Peixes de água doce ou anádromo
 Larva do segundo estágio – Plerocercóide
 Homem
 Verme Adulto

5. Ovo
Morfologia
Cilíndrico;
Tem aproximadamente 70µm de comprimento e 50µm
de largura;
Sua casca e lisa, de espessura mediana e cor
castanho amarelada;
Em uma das extremidades observa-se um opérculo e
na outra um tubérculo;
Ovos liberados não são embrionados.
Figura 3: Ovo
Fonte: CDC

6. Morfologia
Coracídeo
Espessa camada ciliada.
Figura 4: Coracídeo
Fonte: CDC
Larva do primeiro estágio – Procercóide
Figura 5: Larva Procercóide
Fonte: CDC

7. Morfologia
 Larva do segundo estágio – Plerocercóide
Figura 6: Larva Plerocercóide
Fonte: CDC

8. Morfologia
 Verme adulto
 O parasito alcança até 15 metros;
 O escólex é pequeno, com 2 sulcos bilateralmente para
fixação do verme no tubo digestivo;
 O corpo contém 3.000 a 4.000 anéis. As proglotes grávidas
constituem 4/5 do seu estróbilo.Tanto os anéis grávidos como os
ovos podem ser encontrados nas fezes humanas;
 Um único verme pode eliminar um milhão de ovos/dia.
Figura 8: Proglote grávida
Figura 7: Verme Adulto e Visão microscópica de seu escólex
Fonte: CDC
Fonte: Centro de Vigilância Epidemiológica (CVE)

9. Ciclo Biológico
 Ovos imaturos liberados na água;
 Coracídio se desenvolve em larva procercóide;
 A larva procercóide é liberada do crustáceo e migra
para a musculatura do peixe onde se desenvolve em
larva plerocercóide;
 Após a ingestão, a larva plerocercóide se
desenvolve em verme adulto imaturo, localizando-se
no intestino delgado. Os vermes adultos do D. latum
aderem à mucosa intestinal.

10. Ciclo Biológico
Figura 8: Ciclo Biológico do Dyphillobothrium latum
Fonte: CDC

11. Difilobotríase e
Manifestações Clínicas
 80% dos casos são assintomáticos;
 Desconforto abdominal;
 Náuseas, vômitos e diarréia;
 Perda de apetite e de peso;
 Anemia Perniciosa.

12. Diagnóstico e Tratamento
 O diagnóstico é feito por meio do exame de fezes,
onde os ovos são visualizados à microscopia.
Certas vezes pode acontecer das proglótes saírem
junto com as fezes, podendo ser vistas a olho nu.
 Injeção de ácido diatrizóico no duodeno (Tratamento
da parasitose);
 Praziquantel e Niclosamida (Desintegração do
verme inteiro).

13. Profilaxia
 A profilaxia dessa doença é feita da seguinte forma:
 Evitar a ingestão de peixe de água doce cru ou mal cozido.
 Cozinhar os peixes de água doce adequadamente;
 Congelar previamente os peixes de água doce a 20º C por
sete dias. (Mata as larvas desse parasita);
 Praticar hábitos saudáveis (Defecar em local apropriado);
 Implementar sistema de saneamento nas comunidades
residenciais.

14. Epidemilogia
 Até o ano de 2003, não havia registro de casos
autóctones da difilobotríase no Brasil;
 44 casos notificados ao CVE (Centro de Vigilância
Epidemiológica);
 Endêmica em alguns países.
 Brasil.

15. Casos clínicos
 Emmel, V.E. et.all, 2006
 Capuano, D.M. et.all, 2007
 Llaguno, M.M. et.all, 2008

16. Referências
 CAPUANO DM, Okino MHT, Mattos HRM e Torres DMAGV. Diphyllobothriasis: a
case report of a human infection in Ribeirão Preto, SP, Brazil. Revista Brasileira
de Análises Clínicas, vol. 39(3): 163-164, 2007.
 EMMEL VE, Inamine E, Secchi C, Brodt TCZ, Amaro MCO, Cantarelli VV e Spalding
S. Diphyllobothrium latum: case report in Brazil. Revista da Sociedade Brasileira
de Medicina Tropical 39(1):82-84, jan-fev, 2006
 LLAGUNO MM, Cortez-Escalante J, Waikagul J, Faleiros ACG, Chagas F e Castro C.
Diphyllobothrium latum infection in a non-endemic country: case report. Revista
da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 41(3):301-303, mai-jun, 2008.
 Figura 1 e 7: Disponível em:
http://bio390parasitology.blogspot.com/2011/01/diphyllobothrium-latum-very-
macroscopic.html acessado em: 24/10/11 às 9:00 horas
 Figura 2,3,4,5,6,8 e 9: Disponível em: http://www.dpd.cdc.gov/ Acessado em: 24/10/11
às 9:00 horas
 NEVES, DP – Parasitologia Dinâmica, 2ªEdição. Rio de Janeiro, Editora Atheneu,
2006.
 REY, L – Parasitologia, 3ª Edição. Rio de Janeiro, Guanabara Koogan, 2001.

17. Faculdade de Ciências Biomédicas do Espirito
Santo
Diphyllobothrium latum e
Difilobotríase
Componentes: Bruna Moara
Jéssica Viegas
Jéssica P. Marques
Juliana Araújo
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Renato Tadeu Padilha