DESCRIPCIÓN DE LAS ETAPAS DEL CICLO DE VIDA DE LA ABEJA EUROPEA (Apis mellifera)..

1. Fernández Aguilar Mónica Guadalupe

2. • Clase: Insecta
• Orden: Hymenoptera
• Familia: Apidae
• Género: Apis
• Especie: mellifera

3. Origen: Europa, África y América
Distribución: Todo el mundo
La Abeja de miel (Apis mellifera) es uno de los insectos más estudiados. Esto se
debe a su importancia económica como productora de miel, ya que es una de las
fuentes de carbohidratos naturales. Además de que esta especie se utiliza como
polinizador comercial principalmente en cultivos agrícolas (Rallo, 1986).
Las abejas como insectos holometábolos presentan etapas en su desarrollo. Huevo,
larva (de varias edades) pupa y adulto (Winston 1987).

4. • 3 días como huevo.
No se alimenta.
• 6 días como larva
en celdilla abierta.
Durante los tres
primeros días se
alimenta de jalea
real y los restantes
de pan de abeja.
• 12 días en celdilla
operculada. No se
alimenta.
Nárdiz 2011

5. obrera
Long. Del cuerpo en
mm
12-13
Anchura del tórax
en mm
4
Posición de los ojos separados
Long. De la lengua
en mm
5-7
aguijón Recto y dentado
Duración del
desarrollo
21 días
Comparación de los caracteres entre obrera, reina y zánganos
Nárdiz 2011

6. - 3 días como huevo. No
se alimenta.
- - 5 ½ días como larva
en celdilla abierta.
Durante los cuales se
alimenta únicamente de
jalea real
- - 7 ½ días en celdilla
operculada. No se
alimenta
Nárdiz 2011

7. - 3 días como huevo.
No se alimenta.
- 6 ½ días como
larva en celdilla
abierta. Durante los
3 primeros días se
alimenta de jalea real
y los restantes de
pan de abeja.
- 14 ½ días en
celdilla operculada.
No se alimenta.
Nárdiz 2011

8. reina
Long. Del cuerpo en
mm
18-20
Anchura del tórax
en mm
4-2
Posición de los ojos separados
Long. De la lengua
en mm
Corta
aguijón Curvo y liso
Duración del
desarrollo
16 días
Nárdiz 2011

9. zángano
Long. Del cuerpo en
mm
15
Anchura del tórax
en mm
5
Posición de los ojos contiguos
Long. De la lengua
en mm
Muy corta
aguijón ausente
Duración del
desarrollo
24 días
Nárdiz 2011

10. • Las abeja de miel juega un papel en el incremento en la producción de
frutos y semillas por la vía de la polinización manteniendo la biodiversidad
en los ecosistemas (Zamora et. al 2008).
• Esta abeja es de fácil manipulación es por eso que en los últimos años
muchos apicultores se han dedicado a la producción de miel, jalea, entre
otros productos generándoles grandes ingresos (Dewey 2010).

11. • Describir el ciclo de vida, desarrollo y crecimiento de la abeja de miel (Apis
mellifera).
Objetivos Particulares.
Colectar muestras durante todo el ciclo de vida.
Comparar los estadios del ciclo de vida de Apis mellifera.

12. Consistirá de 4 etapas y son las siguientes:
1er. Etapas: En esta se revisara literatura:
 Del ciclo de vida de Apis mellifera, así como sus características morfológicas de
cada estadio.
 De métodos o técnicas de preservación.
2da. Etapa: Se hará en campo:
 Se tomaron muestras de todo su ciclo de vida del ejemplar. Estas se obtendrán de
las colmenas que se encuentran en las instalaciones del ICA.
 Las muestras pasaron por los siguientes pasos:
– Las muestras de larva se sumergieron en agua caliente por 15 seg.
– Posteriormente se colocaron en frascos con las siguientes preparaciones (Luna
2005):

13. Alcohol etílico al
70%
95 ml 47,5 ml
Glicerina 5 ml 2,5 ml
Alcohol etílico
al 95%
30 ml 15ml
Formaldehído 12 ml 6ml
Acido acético
glacial
4 ml 2ml
Agua 60 ml 30mlAG
AFAA
(Luna 2005)

15. 3era. Etapa: Se llevara a cabo en el laboratorio:
 Una vez obteniendo las muestras, se observaran (en estereoscopio) a detalle
las características morfológicas y compararan con la literatura encontrada en
la 1er etapa.
4ta. Etapa: En esta etapa se recopilarán los registros fotográficos obtenidos de las
anteriores etapas.

16. micrópilo
1.4 mm
aprox.
Fig. 1(Huevo): Forma cilíndrica, mide
aproximadamente 1.4 mm, es de color
blanquecino, no tiene segmentaciones.
Huevo
(Cabello 2006-2007)

17. Larvas Características:
• Ápoda, (carente de
patas) acéfala (carente
de cabeza). Pero con
segmentos distinguibles.
• Color blanquecino, no
presenta ni ojos ni
antenas.
• Única función de
alimentación y
crecimiento.
Fig. 2 (Larvas): 2 estadios del huevo (1y 2) y 5 estadios de larva (3,4,5,6 y 7)
1
4
5
6
7
3
2
(Cabello 2006-2007)

18. 1
2
3
4
Fig. 3(Larvas):
La larva 1 y 2 son del estadio del huevo: La larva 1 mide aprox. 1.8 mm y es del día 2.
La larva 2 mide aprox. 2 mm y es del día 3.
Las siguiente larva (3) da paso a la eclosión, esta mide aprox. 2.5 mm y es del día 4.
Larva 4 mide aprox. 3 mm y es del día 5.
(Cabello 2006-2007)

19. 5
6
7
Fig. 4(Larvas):
La larva 5 mide aprox. 5.8 mm y es
del día 6.
La larva 6 mide aprox. 6 mm y es del
día 7.
Fig. 5(Larvas):
Larva 7 mide aprox. 6. 2 mm y es del día 8.
S
S
S= Segmentación
(Cabello 2006-2007)

20. 10 mm
La larva mide aprox. 10 mm.
A los 8 días.
11 mm
La larva mide aprox. 11 mm
A los 9 días.
Fig. 6
Fig. 7
S
En la figura 6 y 7 se sigue
observando la Segmentación=S
S
(Cabello 2006-2007)

21. Metamorfosis. (Pre pupa y pupa)
Fig.8 y 9: La cabeza de la pre-pupa se agranda. Ya presenta diversos cambios:
P= patas o apéndices locomotores
O= ojos
C=cabeza
T= tórax
AB=abdomen
El cambio más visible es en la pigmentación de los ojos (Fig 9). (Pesante 2010)
Día 11-12 mide
aprox. 10.5 mm
Día 13
mide
aprox. 11
mm
Fig. 8 Fig. 9
O
P
C
T
AB
O
P
C
T
AB

22. El cuerpo continúa blanco con matices
amarillentos, pero se observa
pigmentación marrón en día 14-15. Mide
aprox. 11.5 mm
Presenta diversos cambios más
notorios:
P=patas o apéndices
locomotores
O= ojos
C=cabeza
T= tórax
AB=abdomen
Fig. 10
O
P
C
T
AB
(Pesante 2010)

23. O
P
C
T
AB
Fig. 10
O
P
C
T
AB
A
Fig. 10 y 11
P=patas o apéndices locomotores
O= ojos
C=cabeza
T= tórax
AB=abdomen
A=alas (Fig. 11)
Día 16-17 mide
aprox. 12 mm
Día 18-19
mide aprox.
12.8 mm
Fig. 11
(Pesante 2010)

24. Fig. 12
Adulto
Día 21: Abeja recién salida
de la celda.
P
A
O
AB
T
C
A=alas
P= patas o apéndices
locomotores
O= ojos
C=cabeza
T= tórax
AB=abdomen
(Pesante 2010)

25. La temperatura ideal para que la abeja de la miel (Apis mellifera) se adapte y tenga un
adecuado ciclo de vida es de 33 a 34º C esto lo dice A. Martínez (2004), pero D. Caron
(2010) dice que para el buen manejo de las colonias es importante que estas se
familiarizarse con la temperatura del área, pero el alimento si puede influir.
El huevo es de color blanquecino, cilíndrico y alargado oval según J. Rubí (2004) y mide
aproximadamente 1.4 mm lo que concuerda con lo dicho por T. Cabello (2006-2007).
Las larvas son ápodas, acéfalas, pero con segmentos distinguibles, tienen color blanquecino,
no presentan ni ojos, ni antenas según J. Rubí (2004) y midieron de 2 a 11 mm que entran
dentro del parámetro de T. Cabello (2006-2007) y el cual dice que las larvas aumentan de
2.7 a 17 mm.
Aunque las medidas de las larvas varían de 2 mm (observadas) y 2.7 mm (de literatura), a
lo que se piensa que debido a la técnica que se utilizó con el fin de conservarlas como Luna
(2005) nos dice, donde dicha técnica consistía en sumergir las larvas en agua caliente por
15 segundos, en donde se cree que como una forma de defensa estas se encorvaron y por
que está compuesto por una masa protoplasmática rica en vitelo nutritivo (grasa) M. Winston
(1987).

26. Para pupa y pre-pupa la coloración de los ojos fue de tonos purpura, el cuerpo fue
presentando coloración amarillenta a marrón, y finalmente el adulto de abeja presenta
todas las estructuras y al salir de la celda tal y como lo describe J. Rubí (2004) y D.
Pesante (2010).
En las 2 tomas de muestra se utilizaron nuevas técnicas de preservación y/o conservación
para larva, pupa y pre-pupa.
Luna (2005) nos muestra varias técnicas por ejemplo:
Para larvas: Se sumergieron en agua caliente por 15 segundos y se prepararon 2
soluciones.
Para pupa y pre-pupa se pasaron directamente a las soluciones y con respecto a estas
soluciones no fue necesario utilizar el total de las concentraciones y solo se utilizó la mitad
de estas.
Las cuales ambas resultaron buenas para le preservación de los ejemplares.
AFAAAG:
Alcohol etílico al 70% 95 ml 47,5 ml
Glicerina 5 ml 2,5 ml
Alcohol etílico al 95% 30 ml 15ml
Formaldehído 12 ml 6ml
Acido acético glacial 4 ml 2ml
Agua 60 ml 30ml

27. La técnica de fijación y conservación para abejas como para otros insectos está constituida
principalmente por alcohol etílico en diversas concentraciones, la principal es al 70%, pero
esto variara con respecto al ejemplar a fijar.
Pero esta técnica para abejas de solamente alcohol etílico y agua no tuvo buenos
resultados, pues anteriormente fue utilizada y solo provoco que no se pudieran manipular
los ejemplares.
Por tal motivo se optó por buscar otras técnicas, encontrando 3 las cuales fueron las
siguientes:
 Sumergir las larvas en agua caliente por 15 seg.
 Pasar las larvas y pupas por: Alcohol etílico al 70%-Glicerina (AG) y Alcohol etílico al
95%, Formaldehído, Ácido acético glacial y Agua (AFAA).
Logrando muy buenos resultados.

28. Cabello T. 2006/2007. Biología de la abeja. Apicultura. Escuela Politécnica Superior y Facultad de Ciencias
Experimentales (EPS). Universidad de la Almería (UAL). España. Pág.: 1-4
Caron D. M.. 2010. Manual practico de apicultura. Facultad de Apicultura, EEUU.
Luna M., J. 2005. Técnicas de colecta y preservación de insectos. Laboratorio de Sistemática Animal, Centro de
Investigaciones Biológicas, Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo.
Martínez Q., A. 2004. Las abejas y la apicultura. Dpto. Biología de Organismos y Sistemas.
Universidad de Oviedo.
Nárdiz H. J. 2011. Manual formativo retirada de enjambres en los servicios de prevención y extinción de incendios y
salvamento.
Pasante G., D. 2010. Reproducción varroa. Universidad de Puerto Rico, recinto universitario de Mayagüez.
1-13
Rallo G., J.B. 1986. Frutales y Abejas. Publicaciones de Extensión Agraria. Madrid, España. 231 p.
Rubí M., J. 2004. Metamorfosis de la Apis mellifera.
Winston M., L.1987. The biology of the honeybee. Harvard Univ. Press. Londres Inglaterra.
Zamora O, Dominguez R, Alaniz-Gutierrez L, Quezada-Euán J J G (2008) Frequency of European and African-derived
morphotypes and haplotypes in colonies of honeybees (Apis mellifera L.) from NW México. Apidologie 39: 388-396.