1. AREA DE HEMATOLOGIA Y
COAGULACION

2. AREA DE HEMATOLOGÍA Y COAGULACIÓN
El área de hematología está
dedicada a la cuantificación y
diferenciación de los
elementos celulares que
forman la sangre y a la
cuantificación de los
mecanismos de coagulación.

3. AREA DE HEMATOLOGÍA Y COAGULACIÓN
 El hemograma se procesa en un analizador electrónico
denominado XT 1800i, que cuenta automáticamente
poblaciones de eritrocitos, leucocitos y plaquetas y
realiza 60 hemogramas en una hora con 18 parámetros,
guardando gran reproducibilidad.

4. AREA DE HEMATOLOGÍA Y COAGULACIÓN
 Las pruebas de coagulación se procesan en un
analizador automatizado para tal fin: SYSMEX CA-500
donde se realizan estudios de usuarios con trastornos
congénitos y adquiridos de la coagulación.

5. ERITROSEDIMENTACION POR METODO DE WINTROBE

6. CORRECCION DE GLOBULOS BLANCOS
Se debe tener en cuenta que esto
incluye eritrocitos nucleados los
cuales se deben descontar del reporte

7. FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
Definición:
Es un examen de sangre que brinda información acerca
del número y forma de las células sanguíneas y para ello
se estudian tres lineas celulares

8. LINEA ROJA: VARIACION EN EL TAMAÑO DE LOS
ERITROCITOS

9. LINEA ROJA: VARIACION EN LA FORMA DE
LOS ERITROCITOS

10. LINEA ROJA: VARIACION EN LA FORMA DE
LOS ERITROCITOS

11. LINEA ROJA: VARIACION EN LA FORMA DE LOS
ERITROCITOS

12. LÍNEA ROJA: VARIACIÓN EN EL COLOR DE LOS
ERITROCITOS

13. LÍNEA BLANCA: ALTERACIONES NUCLEARES

14. LÍNEA BLANCA: ALTERACIONES CITOPLASMATICAS

15. LÍNEA BLANCA: ALTERACIONES CITOPLASMATICAS

16. LINEA BLANCA: INMADUREZ

17. LINEA PLAQUETARIA: TAMAÑO

18. M. TUBERCULOSIS
CARACTERÌSTICAS
EL CULTIVO DE MYCOBACTERIUM
TUBERCULOSIS

19. M. TUBERCULOSIS
CARACTERÌSTICAS
 Bacilo delgado, ligeramente curvado, de
1 – 4 u.
 Bacilo ácido- alcohol-resistente
 Resistente al frío, congelación y desecación
 Muy sensible al calor, luz solar y radiación U.V.
 Aerobio estricto
 Muy lenta capacidad de división.
 To óptima: 35 – 37oC
 pH óptimo: 6.7 – 6.9

20. TÉCNICAS MICROBIOLÓGICAS CONVENCIONALES EN EL
DIAGNOSTICO DE LA TUBERCULOSIS
BACILOSCOPIA CULTIVO

21. BACILOSCOPÍA
 Fundamento: Las micobacterias poseen una envoltura lipídica
que impide la acción del decolorante alcohol-ácido
 Es la primera evidencia de la presencia de micobacterias en una
muestra clínica
 Técnica de elección en el dx de la TB
 Ventajas: rápida, económica, equipo sencillo, poco personal,
bajo costo
 Desventajas: Poca sensibilidad y especificidad

23. NUMERO DE BACILOS
ENCONTRADOS
CAMPOS DE INMERSIÓN
OBSERVADOS
REPORTE
No se observan BAAR en 100 campos Negativo
De 1 a 9 BAAR en 100 Campos Número exacto de bacilos
observados en los 100
campos *
DE 0 -1 BAAR por campo en 100 campos **
+
DE 1 –10 BAAR por campo en 50 campos ++
Más de10 BAAR por campo en 20 campos +++

24. CULTIVO DE MYCOBACTERIUM
TUBERCULOSIS
Es el método bacteriológico más sensible y
específico para detectar la presencia de
micobacterias y, en particular de M. tuberculosis,
en una muestra determinada

25. INDICACIONES DEL CULTIVO
 Pacientes con alta sospecha de TBP cuya baciloscopìa
seriada es persistentemente negativa.
 Diagnóstico de Tuberculosis infantil.
 Confirmación diagnóstica de TB extrapulmonar.
 Sospecha de fracasos o abandono recuperado
 Paciente que recae por tratamiento

26. INDICACIONES DEL CULTIVO
 Pacientes VIH (+) y sospecha de TB.
 Contacto de tuberculosis MDR confirmado
 Antecedentes de estancias previas en centros
penitenciarios.
 Para estudios epidemiológicos de resistencia primaria y
secundaria.

27. LA MUESTRA
Difieren en su grado de contaminación
 En algunas puede prescindirse de la descontaminaciòn
previa siempre que la muestra haya sido tomada
asépticamente y recolectada en un frasco estèril. Estos
casos son:
Muestras tomadas por punción. (médula ósea, LCR,
líquido pleural, peritoneal y articulares)
Muestras de sangre.
Materiales de biopsia
 Requieren de descontaminaciòn:
Muestras de esputo, muestras de orina y lavado
gàstrico.

28. TIPOS DE MUESTRAS
 Muestra de expectoración (esputo)
 Aspirado gástrico
 Lavado gástrico (10 – 15 ml)
 Orina (50 ml)
 Líquido cefaloraquídeo (LCR)
 Líquidos pleural, ascìtico, pericárdico, articular.
 Biopsias (No agregar formol)
 Pus

29. TRANSPORTE DE LAS MUESTRAS PARA CULTIVO
 Para que el cultivo de las muestras tenga éxito,
debe reducirse al mínimo el tiempo transcurrido
entre la toma de la muestra y el inicio del cultivo.
 Las muestras deben despacharse con el menor
retraso posible
 Si la muestra de esputo no va a ser enviada el
mismo día que se toma debe guardarse en
refrigeración

30.  Las muestras extrapulmonares deben enviarse
cuanto antes después de recogerlas
 Las muestras enviadas para cultivos deben ser
transportadas en termos con sus respectivos
refrigerantes (cadena de frío) y protegidas de la luz
solar
 Embaladas en posición vertical para evitar
derrames.
 Las tapas de los envases deben estar
perfectamente ajustadas.

31. HOJA DE REFERENCIA DE CEPAS
ESTABLECIMIENTO QUE ENVIA: _________________________________________
FECHA DE ENVIO: __________________ No. DE MUESTRA: ___________
CULTIVO DE: DIAGNOSTICO ( ) FRACASO ( ) ABANDONO RECUPERADO ( )
RECAIDA ( )
NOMBRE: ___________________________________ No REGISTRO: _____________
EDAD: ______ SEXO: _____ VIH: _________
TIPO DE MUESTRA: ____________________ FECHA DE SIEMBRA: ___________
FECHA DE CRECIMIENTO: ________________________________________________
RESPONSABLE: __________________________________________________________
--------------------------------------------------------------------------------------------------------------
HOJA DE REFERENCIA DE CEPAS
ESTABLECIMIENTO QUE ENVIA: _________________________________________
FECHA DE ENVIO: __________________ No. DE MUESTRA: ___________
CULTIVO DE: DIAGNOSTICO ( ) FRACASO ( ) ABANDONO RECUPERADO ( )
RECAIDA ( )
NOMBRE: ___________________________________ No REGISTRO: _____________
EDAD: ______ SEXO: _____ VIH: _________
TIPO DE MUESTRA: ____________________ FECHA DE SIEMBRA: ___________
FECHA DE CRECIMIENTO: ________________________________________________
RESPONSABLE: __________________________________________________________

32. MUESTRA EXAMINADA
PARA:
TOMADA DE UN PTE ENCAMINAR LA
MUESTRA
PARA:
Esputo Diagnostico Síntomas respiratorios
y dos o mas mx
anteriores con BK(-)
Cultivo
Cualquiera
BK(-) ò (+)
Diagnóstico Inmunodeprimido Cultivo e
identificación
Cualquiera
BK(-)
Diagnóstico Niño Cultivo e
identificación
Lav bronquial
Cont gástrico
BK(-) ò BK(+)
Diagnóstico Cualquiera Cultivo e
identificación

33. MUESTRA EXAMINADA
PARA:
TOMADA DE UN
PTE:
ENCAMINAR LA
MUESTRA
PARA:
Cualquiera
BK(+)
Diagnóstico -Con antecedentes
de TX.
-Contacto de pte
MDR.
-Expuesto a
infección
hospitalaria o en
cárceles donde se
asisten/internan
casos resistentes a
las drogas
Cultivo
Sensibilidad
Tipificación
Esputo
BK(+)
Control de tx -Que finalizó dos o
mas meses de tx
-Que convirtió su
BK de (-) a (+)
Cultivo
Sensibilidad
Tipificación

34. COLONIAS EN MEDIO DE LOWENSTEIN -
JENSEN