1. Hospital general Santiago papasquiaro Mip Angel Oswaldo de Santiago Arreola El liquido cefalorraquídeo

2. Fisiología Formación: Plexos coroideos, a través de procesos de ultrafiltración y secreción activa. Volumen: o Adultos: 90 – 150 mL o Neonatos: 10 – 60 mL

3. Funciones Colchón protector para el tejido nervioso central Recoge de productos de desecho Circulación de nutrientes BHE: Epitelio de plexos coroideos Endotelio de los capilares en contacto con el LCR

4. INTERES CLINICO DEL LCR Infecciones del SNC Procesos vasculares Enfermedades desmielinizantes Tumores del Sistema Nervioso Central Identificar la naturaleza del líquido en fístulas nasales u óticas

5. OBTENCIÓN DE LA MUESTRA La Presión normal del LCR es: Adultos: 90 a 180 mm Hg Niños: 10 -100 mm Hg

7. OBTENCIÓN DE LA MUESTRA Con presiones normales, pueden extraerse hasta 20 mL de LCR sin ningún peligro. Si la presión inicial es >200 mm Hg, no deben extraerse más de 2 mL. Alícuotas Tubo 1: estudios bioquímicos e inmunológicos Tubo 2: exámen microbiológico Tubo 3: recuento de leucocitos y su contaje diferencial.

8. El LCR es claro . En presencia de alteraciones, el líquido puede adquirir diferentes aspectos: TURBIDEZ Presencia de gérmenes: > 10 5 UFC Pleocitosis: más de 200 leucocitos / µL Existencia de hematíes: más de 400 / µL Nivel elevado de proteínas

9. Estudio macroscópico Coágulos por fibrinógeno: Punción traumática o meningitis purulenta. No aparece en Hemorragia Subaracnoidea Viscosidad aumentada: Meningitis criptococcica metástasis meníngea Existencia de glóbulos de grasa de diversos tamaños en el LCR:

10. Embolismo graso en el cerebro Color : Rojizo: hematíes Verdoso: liberación de mieloperoxidasa Amarillo: liberación de bilirrubina Color amarillo, naranja o rosáceo del LCR tras su centrifugación Lisis de hematíes Hemorragia subaracnoidea 4-6 horas 12 h 6-10 días

11. EXAMEN MICROSCÓPICO DEL LCR Células: Escasas, de tipo monocítico. Lisis de 40% en 2 horas a temperatura ambiente. Neonatos: Hasta 20-30 células. Niños y adultos: Hasta 5-10 células. Punción traumática: Corregir en número de células

12. restando un leucocito por cada 700 hematíes. La cifra total de hematíes tiene escaso valor. Su principal aplicación es corregir el recuento leucocitario o la concentración de proteínas (1mg por cada 1000 hematíes)

13. ANALISIS BIOQUÍMICO DEL LCR GLUCOSA Procede de la glucosa sanguínea por mecanismos de transporte activo y difusión por gradiente de concentración. Glucorraquia: 60 % de la concentración plasmática. Neonatos: Cociente: LCR/Sangre 0.4 y 2.5 Hiperglucorraquia: Por hiperglucemia.

14. Hipoglucorraquia: Por meningitis bacteriana cociente < 0.4 LACTATO Es independiente de la concentración plasmática. (Valores: 1-3 mM/L). Refleja el metabolismo cerebral anaerobio por hipoxia. Aumenta: Infarto cerebral,edema, trauma o meningitis.

15. Valores proteicos normales del LCR

16. Causas del aumento de proteinas en el LCR

17. Proteínas del LCR ALBÚMINA Buen marcador marcador del intercambio entre el LCR y el plasma Cuantificable Cuantificable por métodos específicos y con buena calidad metrológica. VR: 120-320 mg/L Síntesis hepática Integridad de la BHE: PREALBÚMINA PREALBÚMINA Origen Origen: plasma y ss. en los plexos coroideos ventriculares. Concentración relativa mayor en el LCR que en plasma u otros líquidos biológicos. Confirmar las pérdidas de LCR las pérdidas de LCR Desplazada por la transferrinatransferrina-τ

18. INMUNOGLOBULINAS Aumento AumentoCIg Ig en LCR en LCR o Aumento Ig en suero o Alteración de la BHE o Aumento de ss. local ORIGEN ORIGEN o Plasma o Ss. intratecal muy baja CONCENTRACIÓN CONCENTRACIÓN o IgG < 40 mg/L o Otras Ig muy inferior PROCEDENCIA : Razón de IgG y diversos índices índices o Permiten conocer si existe un ↑ss. Intratecal de las Ig. IgG: presencia y actividad de LB locales (E. desmielinizantes). IgM: aparición más precoz en la RI: diagnóstico y seguimiento de procesos infecciosos e inflamatorios del SNC. IgA: ofrece poco valor clínico en enfermedades neurológicas.

19. TRANSFERRINA desialisada TRF nativa: TRF nativa: isoforma tetrasializada tetrasializada mayoritaria en suero y en LCR. TRF TRF- τ: isoforma desializadadesializada presente en LCR (C ≈ 15 - 20% del total) Separación por electroforesis o β1 TRF: nativa nativa o β2 TRF: TRF : TRF- τ Secreción: TRF-τ » posible contaminación por LCR. Concentración elevada en ciertas E. neurológicas.

20. OTRAS PROTEÍNAS Prote Proteína naβ-traza traza: diagnóstico diferencial de rinorreas y Otorreas Prote Proteína C reactiva na C reactiva: diagnóstico diferencial de meningitis bacterianas y víricas Cistatina Cistatina (proteína γ-traza)

21. ESPECIMEN La medición debe realizarse de manera inmediata inmediata después de la recepción de la muestra. Si se emplea electroforesis convencional para el estudio cualitativo, el LCR debe concentrarse concentrarse entre 50 y 100 veces

22. (ultrafiltración) hasta C≈25–40 g/L. Conservación: hasta 3 días a 2 – 8 ºC Obtención de muestras simultáneas de suero y LCR : • Investigar la presencia de bandas oligoclonales • Para calcular los distintos índices

23. β2-microglobulina microglobulina: situaciones asociadas con activación o proliferación de linfocitos en SNC (linfoma metastásico) Astroprote Astroproteína na: tumores gliales FibronectinaFibronectina Ferritina Ferritina Prote Proteína precursora del na precursora del amiloideamiloide- β Péptidos

24. RELACIÓN ENTRE LAS PROTEÍNAS ESPECÍFICASDE LCR Y DEL SUERO DE LCR Y DEL SUERO Existen varias fórmulas que permiten evaluar evaluar el estado de la BHE estado de la BHE y la ss. intratecal ss. intratecal de Ig: o Cociente de albúmina. o Razón de IgG o Indice de Link o de IgG o Indice de Tourtellotte

25. Máxima utilidad cuando no no queda demostrada la demostrada la presencia de bandas oligoclonales presencia de bandas oligoclonales en el LCR mediante estudios electroforéticos.

27. GRACIAS